La wilaya de Constantine comprend 12 communes. C’est avec l’accord de certains éleveurs que notre étude s’est déroulée au niveau des 06 communes suivantes : Khroub, Ain A’bid, Ouled Rahmoune, Hamma Bouziane, Zighoud Youcef et Ain S’mara (Figure 09).
Figure 09. Carte de la wilaya de Constantine et de ses 12 communes. (source : http://epautistes.coolbb.net/t2228-morphologie-urbaine )
Pour chaque commune et à raison de 02 élevages par commune, nous avons choisi 02 types de bâtiment « de fortune » : un premier de type « garage » et un second de type « serre », pour un échantillonnage plus représentatif et équilibré d’Escherichia coli aviaire entre ces 12 élevages de poulets de chair situés dans les 06 communes sus citées.
131
B1.1 Paramètres cliniques
Une fiche technique, appelée « Fiche de suivi d’un élevage de poulet de chair », est établie pour assurer un suivi correct et propre à chacun des 12 élevages de poulet de chair (Annexe 28 (a-l)) et sur laquelle figure les paramètres cliniques suivants :
B1.1.1 Aliment – Eau – Poids – Mortalité
Les quantités d’aliment et d’eau consommées, le poids des sujets ainsi que la mortalité sont relevés dans un intervalle de 30 jours, allant de J1 à J30. Ces éléments enregistrés permettent d’apprécier le milieu ambiant dans lequel évoluent les oiseaux à travers leur appétit, leur croissance et leur état de santé (Annexe 28 (a-l)).
B1.1.2 Traitements et vaccins
Tout protocole thérapeutique (à titre préventif ou curatif) et tout protocole vaccinal instaurés sont scrupuleusement enregistrés au cours de ce même intervalle de 30 jours (J1-J30) (Annexe 28 (a-l), Annexe 29).
B1.2 Prélèvements des fientes par écouvillonnage cloacal
Les prélèvements de fientes se font à raison de 05 prélèvements quotidiens : on procède à un écouvillonnage cloacal sur 05 sujets pris au hasard par élevage et par jour, pendant 10 jours (du 21ème au 30ème jour) (Annexe 28 (a-l) ; Annexe 30). Ils sont réalisés de manière identique pour les 12 élevages de poulet de chair (Annexe 31) sur une période de 8 mois, allant de Janvier 2013 à Aout 2013 (Annexe 28 (a-l)).
A l’issus de cette étape, c’est un total de 600 prélèvements qui sont acheminés vers le laboratoire de bactériologie (du Service de Microbiologie du CHU IBN BADIS de Constantine) pour des analyses bactériologiques et antibiotypiques (Annexe 42).
B1.3 Analyses bactériologiques
Comme lors des précédentes analyses bactériologiques effectuées sur le souchier expérimental, c’est à partir d’une culture pure sur Milieu Hektoen (Institut Pasteur d’Algérie) ou Mac Conkey (Biomerieux, Marcy-l’Etoile, France) qu’un E. coli est isolé de chaque prélèvement. Après analyses d’isolement et d’identification des 600 souches d’Escherichia coli aviaires isolées, on effectue une confirmation biochimique (du profil numérique) par la galerie API20E, avant de réaliser leur étude antibiotypique.
B1.4 Antibiogramme
L’Antibiotypage des 600 souches d’E. coli aviaires isolées est réalisé sur milieu de Mueller-Hinton selon la méthode standardisée de diffusion d’antibiotiques en disque sur gélose et interprété selon le « Référentiel Standard » de l’étude (Annexe 12) pour l’évaluation de l’antibiorésistance vs sensibilité.
B1.4.1 Réalisation de l’antibiogramme
Un antibiogramme de contrôle est réalisé en premier, testant Trente six antibiotiques sur la souche de référence E. coli ATCC 25922 du laboratoire de microbiologie du CHU de Constantine : Acide Nalidixique, Amikacine, Amoxicilline+AcideClavulanique, Ampicilline, Aztréonam, Céfalotine, Céfazoline, Céfepime, Céfixime, Céfotaxime, Céfoxitine, Céftazidime, Ceftriaxone, Chloramphénicol, Ciprofloxacine, Colistine, Doxyciline, Enrofloxacine, Ertapeneme, Fosfomycine, Gentamicine, Imipénème, Kanamycine,
132
Minocycline, Nétilmicine, Nitrofurantoines, Norfloxacine, Ofloxacine, Pipéracilline, Streptomycine, Sulfonamides, Tetracycline, Ticarcilline, Tobramycine, Trimethoprime, Trimethoprime+Sulfamethoxazole (Lezzar, 2006).
Il est suivi d’un second antibiogramme testant Quarante antibiotiques sur les 600 souches d’E. coli aviaires isolées : Acide Nalidixique, Amikacine, Amoxicilline, Amoxicilline+AcideClavulanique, Ampicilline, Aztréonam, Céfalexine, Céfalotine, Céfazoline, Céfepime, Céfixime, Céfotaxime, Céfoxitine, Céftazidime, Ceftriaxone, Chloramphénicol, Ciprofloxacine, Colistine, Doxyciline, Enrofloxacine, Ertapeneme, Flumequine, Fosfomycine, Gentamicine, Imipénème, Kanamycine, Minocycline, Nétilmicine, Nitrofurantoines, Norfloxacine, Ofloxacine, Pefloxacine, Pipéracilline, Streptomycine, Sulfonamides, Tetracycline, Ticarcilline, Tobramycine, Trimethoprime, Trimethoprime+Sulfamethoxazole (Annexe 01).
B1.4.2 Interprétation de l’antibiogramme
De la même manière que pour le précédent souchier, c’est sur la base du « Référentiel standard de l’étude » que l’on interprète les résultats de l’antibiogramme de contrôle et de l’antibiogramme des souches aviaires d’Escherichia coli isolées.
La sensibilité de la souche de référence est évaluée selon les valeurs retenues concernant les « Valeurs limites des diamètres des zones d’inhibition pour la souche de référence E. coli ATCC 25922 utilisée pour le contrôle de qualité » (Annexe 13), alors que la sensibilité des souches d’E. coli aviaires est évaluée selon les valeurs retenues concernant les « Valeurs critiques des diamètres des zones d’inhibition pour les Entérobactéries » (Annexe 12).
Remarque : Comme cela a été rapporté, au tout début de cette partie pratique (cf. II. Elaboration du référentiel standard de l’étude : Remarque 3), seules les souches d’E. coli aviaires présentant une multirésistance « sans valeur intermédiaire » seront retenues et mentionnées dans cette étude. Les souches multirésistantes « avec valeurs intermédiaires » quant à elles, n’y figureront pas (Annexe 42).
B2. RESULTATS
Sur la base des paramètres étudiés ainsi que sur les 600 prélèvements récoltés et les 120 isolats d’E. coli retenus pour l’étude (Annexe 31 ; Annexe 32 ; Annexe 42), nous obtenons les résultats cliniques et bactériologiques suivants :
B2.1 Résultats cliniques
Après avoir enregistré les paramètres cliniques établis au début de l’étude du souchier aviaire, pour chaque élevage de poulet de chair et collectés par commune, nous constatons ce qui suit : B2.1.1 Aliment – Eau – Poids – Mortalité
Ces quatre paramètres cliniques ont été enregistrés selon une méthode et une chronologie propre à chaque élevage et qu’on a ensuite recueilli :
Dans la Commune du Khroub, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E1) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E2) ont enregistré tous leurs paramètres cliniques à raison d’un jour sur deux (chaque 2 jours) à partir de J2. Exception faite pour le poids qui a fait défaut dans les deux bâtiments d’élevages (E1 et E2) (Figure 10, Annexe 28(a), Annexe 28(b)).
133
- Le bâtiment d’élevage (E1) montre une consommation d’aliment qui va de 0.020 kg/sujet à J2 jusqu’à 0.170 kg/sujet à J30 et une consommation d’eau qui va de 0.050 L/sujet à J2 jusqu’à 0.440 L/sujet à J30. La mortalité révèle un pic important de 47 sujets à J2 suivi de trois autres pics de 20, 18 et 21 sujets à J4, J8 et J16 respectivement (Figure 10, Annexe 28(a)).
- Le bâtiment d’élevage (E2) montre une consommation d’aliment qui va de 0.020 kg/sujet à J2 jusqu’à 0.170 kg/sujet à J30 et une consommation d’eau qui va de 0.050 L/sujet à J2 jusqu’à 0.270 L/sujet à J30. La mortalité révèle un pic important de 35sujets à J2 suivi de quatre autres pics de 18, 27, 25et 19 sujets à J4, J16, J20 et J22 respectivement (Figure 10, Annexe 28(b)).
Ces résultats révèlent une consommation d’aliment satisfaisante pour les deux types de bâtiment et une consommation d’eau assez importante surtout pour le bâtiment E1 de type « Garage ». Concernant la mortalité, les deux premiers pics enregistrés pour les deux bâtiments (47 et 20 sujets pour E1 et 35 et 18 sujets pour E2) font suite au stress du transport et d’installation des poussins, suivi d’autres mortalités importantes survenant après vaccinations (18 et 21 sujets pour E1) ou faisant suite à des épisodes infectieux (27, 25 et 19 sujets pour E2). (Figure 10, Annexe 28(a), Annexe 28(b)).
Figure 10. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau du KHROUB
Dans la Commune de Ain A’bid, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E3) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E4) ont enregistré tous leurs paramètres cliniques (à l’exception de l’eau qui a fait défaut) à raison d’un jour sur dix (chaque 10jours) à partir de J10. Pour E3, le poids et la mortalité ont été relevés à partir de J1. Concernant E4, le poids a
0 0,2 0,4 0,6 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E1
Aliment Eau Poids
0 20 40 60 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E1 Mortalité 0 0,1 0,2 0,3 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E2
Aliment Eau Poids
0 10 20 30 40 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E2 Mortalité
134
été enregistré à raison d’un jour sur sept (chaque semaine) à partir de J1 (Figure 11, Annexe 28(c), Annexe 28(d)).
- Le bâtiment d’élevage (E3) montre une consommation d’aliment qui va de 0.150 kg/sujet à J10 jusqu’à 0.400 kg/sujet à J30 et un poids moyen qui va de 0.050 kg/sujet à J1 jusqu’à 1.600 kg/sujet à J30. La mortalité révèle quatre pics bien distincts de 115, 78, 38 et 22 sujets à J1, J10, J20 et J30 respectivement (Figure 11, Annexe 28(c))
- Le bâtiment d’élevage (E4) montre une consommation d’aliment qui va de 0.210 kg/sujet à J10 jusqu’à 0.750 kg/sujet à J30 et un poids moyen qui va de 0.045 kg/sujet à J1 jusqu’à 0.962 kg/sujet à J30. La mortalité révèle trois pics bien distincts de 62, 96 et 75 sujets à J10, J20 et J30 respectivement (Figure 11, Annexe 28(d)).
Ces résultats indiquent une consommation d’aliment trop importante pour les deux types de bâtiment et un poids satisfaisant pour le bâtiment E3 de type « Garage » et inférieur pour le bâtiment E4 de type « Serre ». Pour ce qui est de la mortalité qui a été enregistrée à des jours bien définis (chaque semaine), elle ne nous permet pas d’en déduire la cause ; seul, le premier pic enregistré pour le bâtiment E3 (115 sujets) fait suite au stress du transport et d’installation des poussins. Pour les autres mortalités enregistrées, c’est sur la base des valeurs obtenues en concordance avec le protocole thérapeutique ou vaccinal que l’on peut comprendre si la mortalité survient après vaccinations (22 sujets pour E3 et 75 sujets pour E4) ou fait suite à des épisodes infectieux (78 et 38 sujets pour E3 et 62 et 96 sujets pour E4). (Figure 11, Annexe 28(c), Annexe 28(d)).
Figure 11. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau de AIN A’BID
Dans la Commune d’Ouled Rahmoune, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E5) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E6) ont enregistré tous leurs paramètres cliniques (exception faite pour l’eau qui a fait défaut pour E6) de façon hebdomadaire (chaque 7jours) à
0 0,5 1 1,5 2 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E3
Aliment Eau Poids
0 50 100 150 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E3 Mortalité 0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E4
Aliment Eau Poids
0 50 100 150 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E4 Mortalité
135
partir de J7. Pour E5, la mortalité a été enregistrée chaque jour à partir de J1et le poids relevé à partir de J1 au lieu de J7 (Figure 12, Annexe 28(e), Annexe 28(f)).
- Le bâtiment d’élevage (E5) montre une consommation d’aliment qui va de 0.100 kg/sujet à J7 jusqu’à 0.400 kg/sujet à J28, une consommation d’eau qui va de 0.180 L/sujet à J7 jusqu’à 0.890 L/sujet à J28 et un poids moyen qui va de 0.048 kg/sujet à J1 jusqu’à 1.080 kg/sujet à J28. La mortalité révèle un pic important de 70sujets à J1 suivi de cinq autres pics de 20,19, 27, 37et 23 sujets à J2, J4, J8, J13 et J21 respectivement (Figure 12, Annexe 28(e)).
- Le bâtiment d’élevage (E6) montre une consommation d’aliment qui va de 0.116 kg/sujet à J7 jusqu’à 0.461 kg/sujet à J28 et un poids moyen qui va de 0.120 kg/sujet à J7 jusqu’à 0.772 kg/sujet à J28. La mortalité révèle quatre pics bien distincts de 98, 65, 44 et 26 sujets à J7, J14, J21 et J28 respectivement (Figure 12, Annexe 28(f)).
Ces résultats permettent de constater une consommation trop importante d’aliment pour les deux types de bâtiment, et d’eau pour le bâtiment E5 de type « Garage » ainsi qu’un poids de valeur inférieur pour les deux types de bâtiment. En ce qui concerne la mortalité qui a été enregistrée de 2 façons différentes (chaque jour pour E5 et chaque semaine pour E6), elle est aisément interprétée pour E5 et se base sur les valeurs obtenues en concordance avec le protocole thérapeutique ou vaccinal pour E6. Pour E5, les trois premiers pics (70, 20 et 19 sujets) font suite au stress du transport et d’installation des poussins, alors que les trois derniers (27, 37 et 23 sujets) font suite à des épisodes infectieux. Concernant E6, la mortalité survient après vaccinations (65 et 26 sujets) ou fait suite à des épisodes infectieux (98 et 44 sujets). (Figure 12, Annexe 28(e), Annexe 28(f)).
Figure 12. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau de OULED RAHMOUNE
Dans la Commune de Hamma Bouziane, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E7) a enregistré tous ses paramètres cliniques de façon journalière (chaque jour) à partir de J1, alors
0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E5
Aliment Eau Poids
0 50 100 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E5 Mortalité 0 0,5 1 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E6
Aliment Eau Poids
0 50 100 150 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E6 Mortalité
136
que le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E8) a enregistré tous ses paramètres cliniques (à l’exception du poids qui a fait défaut) à raison d’un jour sur deux (chaque 2jours) à partir de J2 (Figure 13, Annexe 28(g), Annexe 28(h)).
- Le bâtiment d’élevage (E7) montre une consommation d’aliment qui va de 0.054 kg/sujet à J1 jusqu’à 0.350 kg/sujet à J30, une consommation d’eau qui va de 0.120 L/sujet à J1 jusqu’à 0.440 L/sujet à J30 et un poids moyen qui va de 0.045 kg/sujet à J1 jusqu’à 0.997 kg/sujet à J30. La mortalité révèle six pics d’importance variable de 41, 30, 46, 62, 39 et 33 sujets à J2, J3, J8, J16, J21 et J22 respectivement (Figure 13, Annexe 28(g)).
- Le bâtiment d’élevage (E8) montre une consommation d’aliment qui va de 0.030 kg/sujet à J2 jusqu’à 0.130 kg/sujet à J30 et une consommation d’eau qui va de 0.050 L/sujet à J2 jusqu’à 0.280 L/sujet à J30. La mortalité révèle cinq pics importants de 29, 20, 27, 20 et 21 sujets à J2, J10, J16, J18 et J26 respectivement (Figure 13, Annexe 28(h)).
Ces résultats révèlent une consommation d’aliment et d’eau très importante pour les deux types de bâtiment et un poids assez faible pour le bâtiment E7 de type « Garage ». Concernant la mortalité, qu’elle soit enregistrée chaque jour (pour E7) ou chaque deux jours (pour E8), elle fait suite au stress du transport et d’installation des poussins lors des premiers pics enregistrés pour les deux bâtiments (41 et 30 sujets pour E7 et 29 sujets pour E8), suivi d’autres mortalités importantes survenant après vaccinations (20 sujets pour E8) ou faisant suite à des épisodes infectieux (46, 62, 39 et 33 sujets pour E7 et 27, 20 et 21sujets pour E8). (Figure 13, Annexe 28(g), Annexe 28(h)).
Figure 13. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau de HAMMA BOUZIANE
Dans la Commune de Zighoud Youcef, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E9) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E10) ont enregistré tous leurs paramètres cliniques de
0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E7
Aliment Eau Poids
0 20 40 60 80 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E7 Mortalité 0 0,1 0,2 0,3 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E8
Aliment Eau Poids
0 10 20 30 40 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E8 Mortalité
137
façon journalière (chaque jour) à partir de J1. Exception faite pour l’aliment qui a été enregistré à partir de J2 pour E10 (Figure 14, Annexe 28(i), Annexe 28(j)).
- Le bâtiment d’élevage (E9) montre une consommation d’aliment qui va de 0.013 kg/sujet à J1 jusqu’à 0.144 kg/sujet à J30, une consommation d’eau qui va de 0.023 L/sujet à J1 jusqu’à 0.245 L/sujet à J30 et un poids moyen qui va de 0.053 kg/sujet à J1 jusqu’à 1.484 kg/sujet à J30. La mortalité révèle un pic important de 103 sujets à J1, suivi de six autres pics d’importance variable de 68, 64, 58, 49, 37 et 28 sujets à J2, J3, J4, J12, J13 et J14 respectivement (Figure 14, Annexe 28(i)).
- Le bâtiment d’élevage (E10) montre une consommation d’aliment qui va de 0.036 kg/sujet à J2 jusqu’à 0.195 kg/sujet à J30, une consommation d’eau qui va de 0.020 L/sujet à J1 jusqu’à 0.350 L/sujet à J30 et un poids moyen qui va de 0.032 kg/sujet à J1 jusqu’à 1.050 kg/sujet à J30. La mortalité révèle huit pics d’importance variable de 20, 22, 24, 24, 21, 20, 24 et 20 sujets à J1, J2, J3, J17, J18, J19, J21 et J28 respectivement (Figure 14, Annexe 28(j)). Ces résultats indiquent une consommation d’aliment satisfaisante pour E9 et assez importante pour E10, contre une consommation d’eau trop importante et un poids assez satisfaisant pour les deux types de bâtiment. Pour ce qui est de la mortalité qui a été enregistrée tous les jours pour E9 et E10, elle fait suite au stress du transport et d’installation des poussins pour les premiers pics enregistrés pour les deux bâtiments (103, 68, 64 et 58 sujets pour E9 et 20, 22 et 24 sujets pour E10), suivi d’autres mortalités importantes survenant après vaccinations (20 sujets pour E10) ou faisant suite à des épisodes infectieux (49, 37 et 28 sujets pour E9 et 24, 21, 20 et 24 sujets pour E10). (Figure 14, Annexe 28(i), Annexe 28(j)).
Figure 14. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau de ZIGHOUD YOUCEF 0
1 2
1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E9
Aliment Eau Poids
0 50 100 150 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E9 Mortalité 0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E10
Aliment Eau Poids
0 10 20 30 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E10 Mortalité
138
Dans la Commune de Ain S’mara, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E11) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E12) ont enregistré tous leurs paramètres cliniques de façon hebdomadaire (chaque 7jours) à partir de J7 (Figure 15, Annexe 28(k), Annexe 28(l)). - Le bâtiment d’élevage (E11) montre une consommation d’aliment qui va de 0.042 kg/sujet à J7 jusqu’à 0.209 kg/sujet à J28, une consommation d’eau qui va de 0.057 L/sujet à J7 jusqu’à 0.410 L/sujet à J28 et un poids moyen qui va de 0.140 kg/sujet à J7 jusqu’à 1.250 kg/sujet à J28. La mortalité révèle quatre pics bien distincts de 98, 34, 72 et 86 sujets à J7, J14, J21 et J28 respectivement (Figure 15, Annexe 28(k)).
- Le bâtiment d’élevage (E12) montre une consommation d’aliment qui va de 0.027 kg/sujet à J7 jusqu’à 0.105 kg/sujet à J28, une consommation d’eau qui va de 0.044 L/sujet à J7 jusqu’à 0.200 L/sujet à J28 et un poids moyen qui va de 0.150 kg/sujet à J7 jusqu’à 1.160 kg/sujet à J28. La mortalité révèle quatre pics bien distincts de 65, 58, 15 et 93 sujets à J7, J14, J21 et J28 respectivement (Figure 15, Annexe 28(l)).
Ces résultats permettent de constater une consommation d’aliment et d’eau importantes pour E11 et faibles pour E12 ainsi qu’un poids de valeur inférieur pour E11 et plus ou moins satisfaisant pour E12. En ce qui concerne la mortalité qui a été enregistrée chaque semaine pour les deux types de bâtiment, c’est sur la base des valeurs obtenues en concordance avec le protocole thérapeutique ou vaccinal que l’on peut comprendre si la mortalité survient après vaccinations (98 et 34 sujets pour E11 et 65et 58 sujets pour E12) ou fait suite à des épisodes infectieux (72 et 86 sujets pour E11 et 15 et 93 sujets pour E12). (Figure 15, Annexe 28(k), Annexe 28(l)).
Figure 15. Paramètres cliniques de deux élevages au niveau de AIN S’MARA 0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E11
Aliment Eau Poids
0 50 100 150 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E11 Mortalité 0 0,5 1 1,5 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Aliment-Eau-Poids de E12
Aliment Eau Poids
0 50 100 1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 Mortalité de E12 Mortalité
139
B2.1.2 Traitements et vaccins
Les protocoles thérapeutique et vaccinal ont été enregistrés pour les 12 élevages au fur et à mesure de leur administration. Ces protocoles, qui étaient préétablis au départ, ont connu des modifications dans leur instauration suite à l’apparition de mortalités importantes au cours de l’élevage. C’est ainsi que certains vaccins ont été décalés dans le programme de vaccination et que certains traitements à base d’antibiotiques à titre préventif ont été prolongés en durée ou associés à un second traitement ou remplacés par un autre traitement dans certains cas pour devenir curatifs, au niveau des élevages suivants :
Dans la Commune du Khroub, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E1) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E2) ont suivi un protocole vaccinal identique en vaccins et en périodes de vaccination, à l’exception du rappel de la New Castle et Bronchite Infectieuse qui n’a pas été administré le même jour (Annexe 28(a), Annexe 28(b), Annexe 29). Pour ce qui est du protocole thérapeutique :
- Dans le bâtiment d’élevage (E1), on administre en début d’élevage un traitement préventif d’Amoxicilline (à J1), mais devant la mortalité enregistrée, on lui associe l’Apramycine sur 4 jours de traitement. Un second traitement préventif d’Oxytetracycline (à J8) sur 3 jours est instauré (après les deux vaccins administrés contre la New Castle à J5 et contre la Bronchite Infectieuse à J7), puis un troisième traitement préventif à base d’Enrofloxacine (à J15) sur 3 jours est administré (juste après une troisième vaccination contre la Gumboro à J14). Ce dernier est achevé par un quatrième traitement curatif de Florfénicol (à J18) sur 3 jours à la suite duquel s’ajoute un cinquième traitement préventif (à J21) associant Sulfonamides, Trimethoprime et anticoccidiens sur 4 jours de traitement. Des compléments vitaminés ou minéralo-vitaminés sont administrés soit seuls ou associés à certains traitements (Annexe 28(a), Annexe 29).
- Dans le bâtiment d’élevage (E2), on administre en début d’élevage un traitement préventif d’Oxytetracycline (à J1) sur 4 jours (avant la vaccination contre la New Castle à J5 et contre la Bronchite Infectieuse à J7), suivi d’un deuxième traitement curatif de Florfénicol (à J16) sur 3 jours (après vaccination contre la Gumboro à J14). Un troisième traitement préventif (à J21) associant Sulfonamides, Trimethoprime et anticoccidiens, se prolonge sur une durée de 6 jours. Des compléments vitaminés ou minéralo-vitaminés sont administrés soit seuls ou associés à certains traitements (Annexe 28(b), Annexe 29).
Ces résultats montrent qu’au niveau du bâtiment d’élevage de type « Garage » (E1),7 molécules différentes d’antibiotiques ont été administrées à travers cinq traitements différents qui ont été instaurés à raison de 3 jours d’intervalle entre les trois premiers et 0 jour entre les deux derniers ; Alors qu’au niveau du bâtiment d’élevage de type « Serre » (E2), 4 molécules différentes d’antibiotiques ont été administrées à travers trois traitements différents qui ont été instaurés à 11 jours d’intervalle entre les deux premiers et 2 jours entre les deux derniers. Pour ces deux élevages, une antibiothérapie préventive à été administrée dès l’installation des poussins dans le bâtiment d’élevage. (Annexe 28(a), Annexe 28(b), Annexe 29).
Dans la Commune de Ain A’bid, le bâtiment d’élevage de type « Garage » (E3) et le bâtiment d’élevage de type « Serre » (E4) ont suivi un protocole vaccinal identique en vaccins et en périodes de vaccination, à l’exception du rappel de la New Castle et de celui de la Bronchite Infectieuse qui n’ont pas été administrés les mêmes jours (Annexe 28(c), Annexe 28(d), Annexe 29). Concernant le protocole thérapeutique :
140
- Dans le bâtiment d’élevage (E3), on instaure un premier traitement préventif d’Amoxicilline (à J1) sur 3 jours qui se poursuit jusqu’à J5 suite à une importante mortalité enregistrée. Un second traitement curatif de Tetracycline (à J9) est administré sur 4 jours (après vaccination contre la New Castle et la Brochite infectieuse à J7 et un peu avant la vaccination contre la Gumboro à J14), suivi d’un troisième traitement préventif (à J21) associant Sulfonamides, Trimethoprime et anticoccidiens sur 4 jours de traitement. Des compléments vitaminés ou minéralo-vitaminés sont administrés soit seuls ou associés à certains traitements (Annexe 28(c), Annexe 29).
- Dans le bâtiment d’élevage (E4), on instaure un premier traitement préventif associant Amoxicilline et Colistine (à J1) sur 4 jours, suivi d’un second traitement curatif de Tetracycline (à J10) sur 3 jours (après vaccination contre la New Castle et la Brochite infectieuse à J7). Un troisième traitement préventif associant Enrofloxacine et hépatoprotecteur (à J15) sur 3 jours est administré (juste après vaccination contre la Gumboro à J14) suivi immédiatement d’un quatrième traitement curatif de Florfénicole (à J18) sur 3 jours (avant le rappel de la New Castle à J21). Un cinquième traitement préventif (à J21) associant Sulfonamides, Trimethoprime et anticoccidiens est donné sur 3 jours de traitement. Des compléments vitaminés ou minéralo-vitaminés sont administrés soit seuls ou associés à certains traitements (Annexe 28(d), Annexe 29).
Ces résultats révèlent qu’au niveau du bâtiment d’élevage de type « Garage » (E3), 4 molécules différentes d’antibiotiques ont été administrées à travers trois traitements différents qui ont été instaurés à raison de 3 jours d’intervalle entre les deux premiers et 8 jour entre les deux derniers ; Alors qu’au niveau du bâtiment d’élevage de type « Serre » (E4), 7 molécules différentes d’antibiotiques ont été administrées à travers cinq traitements différents qui ont été instaurés à 4 puis 3 jours d’intervalle entre les trois premiers et 0 jour entre les deux suivants et 2 jours entre les deux derniers. Pour ces deux élevages, une antibiothérapie préventive à été