4. L’hypothalamus, structure ventrale du diencéphale
4.4. Pathologies associées
4.4. Pathologies associées
Des défauts de développement de l’hypothalamus semblent perturber le contrôle de sécrétion des neuropeptides hypothalamiques dans l’organisme. Cela pourrait potentiellement induire des pathologies telles que l’obésité, l’hypertension ou le diabète (Caqueret et al., 2005; Krude et al., 1998; Michaud, 2001; O'Rahilly, 2009). Des dysfonctionnements neuroendocriniens joueraient également un rôle dans des formes d’autisme et autres troubles du comportement (pour revue (Kelemenova and Ostatnikova, 2009).
Cependant, des pathologies du développement du cerveau précoce ont également montré des perturbations ou des malformations de l’hypothalamus. Par exemple, dans le cas d’une dysplasie septooptique, des défauts pituitaires, du nerf optique et de la ligne médiane du prosencéphale sont observés. Dans ce cas, il s’avère que la source hypothalamique de Shh, qui assure le maintien de l’expression génique nécessaire au
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développement pituitaire et des vésicules optiques, est déficiente (Zhao et al., 2010; Zhao et al., 2012). Un des principaux gènes impliqués dans les cas de dysplasie septooptique est le gène à homéoboite HESX1 (McCabe et al., 2011). HESX1 est exprimé au niveau de la ligne médiane de l’hypoblaste et joue un rôle déterminant dans le développement de la région pituitaire.
Chez les patients HPE, les malformations de l’hypothalamus peuvent conduire à une dérégulation du contrôle de la température corporelle et un déséquilibre électrolytique pouvant entrainer des convulsions (Solomon et al., 2010). Parmi les patients HPE vivants, 70% souffrent de diabète insipide en raison d’un déficit de l’hormone antidiurétique, la vasopressine, synthétisée normalement par l’hypothalamus (Hahn et al., 2005). Hahn et collaborateurs (2005) ont montré que la sévérité du diabète insipide était corrélée au degré de nonséparation des lobes de l’hypothalamus chez des patients HPE.
Par ailleurs, plusieurs études chez des patients HPE montrent que lors de mutations perte de fonction du gène GLI2, cible de la voie Shh, les patients pouvaient présenter des anomalies de l’hypophyse antérieure et/ou un hypopituitarisme perturbant alors le système hypothalamohypophysaire (Bertolacini et al., 2010; Franca et al., 2010; Roessler et al., 2003).
D’autre part, de sévères défauts de la ligne médiane sont observés et sont associés à une HPE chez des embryons de souris porteurs de l’allèle hypomorphe ou nul pour Fgf8. Chez ces embryons les anomalies de la fonction endocrinienne de l’hypothalamus résultent d’une diminution des neurones arginine vasopressine et oxytocine dans les noyaux NSO, NSC et NPV (McCabe et al., 2011). Ces derniers travaux ont permis de faire un parallèle avec des patients atteints d’HPE et porteurs de mutation du gène FGF8. En effet, des défauts au niveau de l’hypothalamus sont fréquemment observés dans le spectre de cette pathologie. L’étude anatomique de l’hypothalamus au cours du développement embryonnaire ainsi qu’à la naissance constitue donc un outil diagnostic important pour l’HPE (Hahn and Barnes, 2010; Simon et al., 2000).
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Figure 15. Etapes du développement embryonnaire chez le poulet de 4h à 72h.
Dès les premières heures de la gastrulation le blastoderme s’allonge dans le sens antéropostérieur et permet la formation de la ligne primitive et du nœud de Hensen à son extrémité. La ligne primitive s’allonge de 4h à 18h puis régresse jusqu’à disparaître (72h). A la fin de la gastrulation, une zone de prolifération au niveau du nœud de Hensen va permettre la formation de la notochorde. Au niveau des parois de la ligne primitive se forment les mésodermes latéraux et somitiques de l’embryon. Les plis neuraux permettent la formation du tube neural vers 24h et le neuropore antérieur permet sa fermeture vers 3033h d’incubation isolant le cerveau antérieur. L’embryon va commencer à subir une rotation de sa partie antérieure vers la gauche et les vésicules cérébrales se différencient. L’organogenèse s’intensifie à partir de 72h d’incubation.
D : diencéphale ; Eo : épithélium olfactif ; Epy : épiphyse ; Lp : ligne primitive ; M : mésencéphale ; Mt : métencéphale ; My : myélencéphale ; Na : neuropore antérieur ; NH : nœud de Hensen ; Nt : notochorde ; So : somites ; Vo : vésicules optiques ; Vot : vésicules otiques ; T : télencéphale ; Tn : tube neural (Adapté de (Le Moigne, 1997) et DevBio.net).
5. Modèles animaux
Lors de mes travaux de thèse j’ai principalement utilisé le modèle d’embryon de poulet propice aux études embryologiques fondamentales. En effet, l’embryon de poulet est très accessible et des outils génomiques sont maintenant disponibles. Le développement embryonnaire précoce est très similaire entre les vertébrés. Il est donc judicieux de travailler sur ce modèle où les mécanismes moléculaires étudiés pourront être transposés par la suite au développement embryonnaire humain.
5.1. Modèle d’embryon de poulet
La classification d’Hamburger et Hamilton (Hamburger and Hamilton, 1992) établit dans le temps les stades de développement embryonnaire et les structures associées observables. Cette classification sera utilisée pour nommer les différents stades chez l‘embryon de poulet. Le développement rapide de l’embryon de poulet au cours des stades précoces constitue également un atout important. En effet, après seulement deux jours d’incubation (HH5), les différents axes de symétrie sont en place et la neurulation débute.
Le développement du système nerveux a été très étudié chez le poulet et est très similaire à celui de la souris et de l’homme. Il existe cependant une différence majeure. En effet, c’est l’hypoblaste qui est responsable de l’induction neurale antérieure chez l’embryon de poulet alors que ce rôle est joué par l’EVA chez les mammifères (de Souza and Niehrs, 2000). Alors que l’hypoblaste et l’EVA diffèrent par leur composition cellulaire, l’étude de l’expression des marqueurs moléculaires tels que Nodal et ses antagonistes Lefty et
Cerberus, révèle leur équivalence (Beddington and Robertson, 1999). L’hypoblaste va donc comme l’EVA préserver la plaque neurale antérieure des facteurs caudalisants.
Au cours de la neurulation, le tube neural se referme antérieurement autour de 30 33h de développement (HH10) puis postérieurement après 44h (HH12). L’embryon va ensuite perdre son aspect plan et subir une rotation de la partie antérieure lors du développement des vésicules cérébrales (HH14) (Figure 15).
5.2. Intérêt du modèle d’embryon de poulet
La large taille de l’embryon et sa morphologie plane jusqu'à la segmentation des vésicules cérébrales, font de l’embryon de poulet un modèle facilement observable pour des