"CIPROD"
et"BIO".
Le logiciel CIPROD, réalisé par le Prof. Antoine Morin de I'Université d'Ottawa
au Canada,,ious a
gracieusement été ^misà disposition par
I'auteur. Læscalculs
des méthodesr iuantér
sontréilisables: "Allen
curve methôd", "Removal-summation method","Increment-iummation
method", "Instantaneous growth method", et "size-frequency method". Pour chaque résultat,il
est également possible d'oblenir I'intervalle de confiance.Le
logiciel BIO,
réalisé par leDr.
PeterDall
de I'Université d-e Çopenhlgu.e au Danemark, agr*i"ur."-rnt
été mis à notie disposition p.arl'auteur. Les calculs des méthodes suivantes sontiéalisables: "Removal-summatioi method",
"Increment-summationmethod",
"Instantaneous growth method" et "Size-frequency method".2.3.5.4. Respiration
La respiration des macroinvertébrés peut être estimée de deux manières différentes.
. La
première méthode consiste à estimer la respiration annuelle d'un tax!)n à partir.de la1,,ateut Aeia productivité annuelle. On emplgie-à cet effel la relation empirique définie pour chaque
Srr"p"-ttopitique'qui
quantifie !afrac{on
d9-!3 respiration par rapportaui
auEes composants du 6udgèt énergéûque (cf.figure
11 et tableau 10)..
I.a seconde méttrode consiste à utiliser les formules mathématiques de nrodèles respiratoiresétabliiénlaboratoire.
Un modèle idéal tiendrait compte du taux d'oxygène dissous de I'eau, de lai"-petuirié-à" t'ruu
et dela
biomasseindividuellê
des macroinvértébrés. Ces deux derniers;il;Èr; r*t ptiJ"n
càmpte par ler modèles qropgsés parHamburger&
Dall-(1990) pour des -11ugroinu"nébréilittoraux Ëcuitres. I-es étapes âe làboraioire et procédurg! q.athéry.atiques.pour
itiuUfiJrr.enr
de ces modèles sonrdécriti
dans Hamburger& patt
(1990), et I'exemple-dupièiàpiètu Nemoura
avicularis est développépar.Oertli &-Dall
(à paraître)..Lelogiciel-':llo"
p;;ô;
";e application pratique de
ces- môAetessur
des _ordinateurs (systèmeIBM
ouéà-pâiiUtèi. titi
modèle rêsp_iraioire e,xisle pour les-taxons suiv_ants représentés abondammentffir'Ié1311é
auÈôis-Vieux:'Gasropoda,
Osiracoda, Naididae, Vers, Càenis sp., Chironomidae, insectes.du Bois-Vieux pour lesquels les données collectées sont suffisarites 6iômasses individuelles
dei
indivjdus pour chaque date de prélèvement), et pour lesquels le mocièle respiratoire exisæ.pour
tous les autes taxons, c'est la première méthode qui seraèmployée.2.3.5.5. Ingestion et égestion
Çqs dgux paramètres peuvent être estimés à partir de la valeur de la productivité annuelle. On emploie
alon
la ryJgion empirique définie pourôhaque groupe rophique qui quantifie la fraction de I'inge-stion_oJ l'égestion par rapportauf
autes cômposan:tsduiudget
ènergetique(cf.
figure11 ettableau 10).
. Sçttq
méthode pennet I'estimation de I'ingestion et l'égestion des macrcinvertébnés de l'étang du Bois-Vieux.2.3.5.6. Assimitation
.
.L'assimilation peut être estiméeparl'addition
de la production et de la respiration. Elle peut également être obtenue à la suite d'expériences invitro
ouin
situ.Dans le présent
travail, il
sera déterminé en laboratoire une estimation de I'assimilation de feuilles mort€-s de Quclgusrobur
par le Trichoptera Limncphihts sp. .I-a procédure expérimentale est décrite ci-dèssous.
Huit individus
du-genrqLimnephilus
(3L. rhombicus,et5 L. flavicornis) sont
placésséparément dans
I'un
des seize compartiments de deux aquariums (eâu durobinet,
àeiviron
20oC). Chaque_animal setrouve
alors en présence de2
g-DW defeuilles
mortes de Quercus robur. En parallèle, huit autres lots de 2 gDW de feuilles éiaient exposés aux mêmesc&ditions
expérimentales mais sans Trichoptera (figure
l3).
læs lots de 2 gDW de feuilles mortei consistaient en 148
(t7)
rondelles d'un d.iamètre de 1.5cm découpées au préalable dans des
feuilles
mortes (séchées à 55oC, puisrefroidies
dans un dessiccateur)-provenant d'un même arbre. I-es lotsoni
été immergés zÔ Sours avantle
contact aveclesTrichoptera
et I'eau a été changée entotalité
aprèsl0 j6urs, céci afin d'éliminerles
produits
liMrés
par le lessivage des feuillésL'eau de I'aquarium
est constamment aérée pendant I'expérience,afin de permettre
sa saturation en oxygène.Dans le cas du décès d'un animal, celui-ci est remplacé par un autre animal de
taille
similaire provenant d'un élevage réalisé en parallèle dans des ôonditions semblables. Cette situation s'est prod.triteà cinq
reprises au cours des quinze premiersjours
d'expérience.Les animaux
ne représentant à c-emoment-là
gu'unefaible
bio-masse (pàr rapportà h
biomassefinale),
ces échangepnbnt
alors eu aucune incidence sur la suite de lËxpérièirce.La durée de lbxpérience est de 85 jours.
læs animaux sont mesurés au dé6ut de I'expérience
(HCW),
cequi
permet d'estimer leur biomasseindividuelle
(parles relgio--ns taille-biomasse: BÙleau6f). nia fîn
de I'expérience, les animaux sont séchés et pesés (DY/);il
en va de même pour les feuilies, après undéliiat
nettoyage au pinceau.Figure
13. Aquarium contenant8 lots de 2
gDW de rondellesde
feuilles mortes;4
de ces lots,oit en
présônceile Limnephilus sp.. Dôux aquariums de ce type ont été utilisés
poureffectuer
l'expérience d'assimilation.?
r*:,.* ! T 1.' .;.::t
e
t
3. MISE AU POINT D'UNE STRATÉGIE D'ÉCHANTILLONNAGE
3.1. CAMPAGNE PRÉLIMINAIRE
..La.
mise 3u
point-d'une sratégie
d'échantillonnage est réalisée grâceà une
campagne préliminaire. Les résultats de cette ôampagnepennetteit
de déterminer-le nombre optimùm-de prélèvements à effectuer sur chaque substrat.3. 1.
l. ÉcnnNrrLLoNNAGE
tæq n-ré!èyem€nts ont eu lieu les 20
et2}juin
1988 dans l'étang du Bois-Vieux.Il
fut effectué un total{e
6.t p1éQvgmglts, tépartis de la mânière suivante enrre-les subsrrats: 24 prélèvements 99 tiggtTypla latifofia.(dont
13Tlplajeunes
etLl
Typha vieux), 22 prélèvementshe Chara:, et15 prélèvements de feuilles mortes.
..
LgmpJacgme{l-t despoints de prélèvement dans l'étang a été déterminé au moyen d'un rirage aléatoire simple effectuépou
chaque strate de subsrat.Iæs méthodes de prélèvements choisies sont celles décrites dans la parrie 2.3.2.2. .
3.L.2. RÉswrnrs
ET TRATTENaENTDEsnÉsut rars
Panni les
macroinvertébrés associésà
chaque substrat, seulsles
taxonsles
plus abondants ont été retenus pour le traitement des dônnées; en effet, les taxons rares ne sont d'aucune utilité dans la recherche du nombre optimum et de la tailie des prélèvements..
læ.9pélèvements
dc cette campagnepréliminaire
ont permisd'étâb[r
uneliste
des invertébrés Pjéqe.nts en assez grande abbndânce sur chaque subsnat; pour chacun de ceux-ci,il
a été calculé sa densité moyenne par prélèvement ef la variance (cf. tableau 12).6527
Tableau 12.
Campagnepréliminaire: densité
moyennepar
prélèvement(et variance)
desprincipaux
macroinvèrtébrés associés a'uxTypharChara et
feuilles mortes.par prélèvement
*
démontrant pour ceux-ci une distribution detype co-ntagieus€.Suiæ à ôes résultats, la décision a été
priid
d'utiliser la formule générale proposée parElliott
(1977)pour le calcul du nombre de prélèvements (cf. tableau 6).Calcul
du nombre optimum de prélèvementsenne et la variance permettent decalculer le nombrà de prêlèvemenis