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Etude rŽtrospective des cas dÕinfections dues aux mycobactŽries du complexe abscessus chez les

TRAVAUX PERSONNELS

B. Etude rŽtrospective des cas dÕinfections dues aux mycobactŽries du complexe abscessus chez les

patients mucoviscidosiques suivis au CRCM de

Rouen de 2004 ˆ 2011

1.

Patients

Nous avons rŽalisŽ une Žtude rŽtrospective des cas de colonisations/infections pulmonaires par des mycobactŽries du complexe abscessus chez les patients atteints de mucoviscidose suivis au Centre de Ressources et de CompŽtence pour la Mucoviscidose (CRCM) de Rouen.

Pour cela, nous avons recensŽ lÕensemble des prŽlvements positifs reus au laboratoire des mycobactŽries du CHU de Rouen entre le 1er janvier 2004 et le 31 dŽcembre 2011, soit une pŽriode de 8 ans. Ce recensement a ŽtŽ rŽalisŽ ˆ lÕaide du logiciel MOLIS du laboratoire de bactŽriologie. Celui-ci renseigne sur lÕidentitŽ des patients, la date et la nature des prŽlvements et le rŽsultat des cultures.

Les donnŽes clinico-biologiques concernant notre population ont ŽtŽ collectŽes ˆ partir du dossier patient informatique (CDP2) par consultation des comptes-rendus dÕhospitalisation. De plus, gr‰ce ˆ la consultation des dossiers patients version papier de notre population dÕintŽrt, nous avons pu collecter des informations relatives aux thŽrapeutiques administrŽes et ˆ certaines donnŽes cliniques.

Les donnŽes suivantes ont ŽtŽ recueillies :

- les donnŽes dŽmographiques : sexe, ‰ge

- les donnŽes cliniques : gŽnotype CFTR, comorbiditŽs (insuffisance pancrŽatique externe, diabte, atteinte ORL, reflux gastro-oesophagien),

- les donnŽes anthropomŽtriques : poids, indice de masse corporel (IMC), - les donnŽes fonctionnelles : VEMS, CVF et SaO2,

- les donnŽes thŽrapeutiques : la prescription dÕazithromycine, le nombre de cures dÕantibiotiques per

os ou intraveineuses, la prescription dÕune corticothŽrapie per os ou inhalŽe,

- les donnŽes microbiologiques gŽnŽrales : colonisation/infection ˆ Pseudomonas aeruginosa, ˆ

lÕECBC et dÕune aspergillose broncho-pulmonaire allergique (ABPA) via la prescription dÕun traitement par antifongique de type itraconazole ou voriconazole,

- les donnŽes microbiologiques concernant le diagnostic de colonisation/infection ˆ MNT : espce isolŽe, rŽsultats des examens directs et des cultures, sŽrologie anti-mycobactŽrienne (taux dÕanticorps A60), les rŽsultats de lÕantibiogramme rŽalisŽ par le CNR des MycobactŽries (H™pital de la PitiŽ- SalpŽtrire, Paris)

- le traitement ou non de la colonisation/infection ˆ MABSC.

Certains paramtres (poids, VEMS, CVF, SaO2) ont ŽtŽ suivis sur quatre pŽriodes : - un an avant le diagnostic

- au moment du diagnostic

- pendant le traitement de lÕinfection ˆ MABSC - deux ans aprs le diagnostic

LՎradication Žtait dŽfinie par des cultures devenues nŽgatives pendant au moins un an tandis que la non-Žradication Žtait caractŽrisŽe par la persistance de culture positive ˆ MNT, quel que soit le rŽsultat de lÕexamen direct.

Pour comparer certaines variables qualitatives, nous avons employŽ le test de Fisher exact (utilisŽ pour des effectifs thŽoriques faibles). Tous les calculs ont ŽtŽ rŽalisŽs sur le site internet BiostaTGV.

2.

Typage des souches par Žlectrophorse en champ pulsŽ

Au moins une souche de chaque patient et quand cela a ŽtŽ possible, deux souches dÕun mme patient ont ŽtŽ ŽtudiŽes par Žlectrophorse en champ pulsŽ.

o Culture des souches

A partir de subculture des souches sur milieux Cepacia¨, les diffŽrentes souches ont ŽtŽ cultivŽes dans 10 ml de bouillon 7H9-Tween80-OADC-Sucrose et incubŽes dans une Žtuve ˆ 37¡C sous agitation pendant 72 heures.

86 o PrŽparation des Ç plugs È

Au troisime jour, 8 ml de culture ont ŽtŽ centrifugŽs ˆ 4¡C pendant 20 minutes ˆ 3000 trs/min. Afin de casser la paroi des mycobactŽries, le culot a ŽtŽ repris par un faible volume de tampon froid de Phage Buffer IV (PIV : Tris 10mM, pH 7,6 ; NaCl 1M) puis placŽ dans un mŽlange de carboglace- Žthanol. Aprs dŽcongŽlation dans la glace pilŽe, la suspension bactŽrienne a ŽtŽ mŽlangŽe avec un volume Žgal dÕune solution dÕagarose ˆ 1,3% (Incert¨ agarose) maintenue ˆ 50¡C dans un bloc chauffant. Le mŽlange ainsi prŽparŽ a ŽtŽ immŽdiatement aliquotŽ sous un volume de 200 !l dans une barrette puis incubŽ ˆ +4¡C pendant au moins 30 minutes afin de former les blocs dÕagarose nommŽs Ç plugs È, emprisonnant lÕADN des mycobactŽries.

Les barrettes ont ŽtŽ placŽes prŽalablement dans un lit de glace puis conservŽes au rŽfrigŽrateur pour que la prise en masse des plugs dÕagarose soit la plus rapide possible car elle est indispensable ˆ une bonne conservation de lÕADN.

o Lyse cellulaire

Ensuite, ces plugs ont ŽtŽ dŽlicatement dŽmoulŽs de la barrette puis incubŽs sous agitation dans 3 ml de solution de lyse renfermant entre autres de la RNase ˆ 20!g/ml et du lysosyme ˆ 5 mg/ml prŽparŽ extemporanŽment. Le tout a ŽtŽ placŽ dans un bain-marie ˆ 37¡C toute une nuit. Le lendemain, la solution de lyse a ŽtŽ retirŽe dŽlicatement, remplacŽe par 2 mL dÕune solution de protŽinase K ˆ 1mg/ml et dÕEDTA-sarcosine (1%) (Solution ESP) et placŽe ˆ 50¡C dans un bain-marie pendant 24 h afin de digŽrer les protŽines associŽes ˆ lÕADN. Le lendemain, la solution a ŽtŽ remplacŽe par une solution fra”che de protŽinase K et placŽe 24 h supplŽmentaires dans un bain-marie ˆ 50¡C.

o Lavage des plugs

A cette Žtape, il a ŽtŽ important de dŽbarrasser les plugs de toute trace de protŽinase K qui dŽtruirait lÕenzyme de restriction. Pour cela, les plugs ont ŽtŽ lavŽs quatre fois sous agitation et ˆ 37¡C avec une solution de Tris-EDTA (TE): un lavage de 30 minutes, un de 1 heure, un de 2 heures puis enfin un dernier lavage pendant toute une nuit.

o Digestion enzymatique

Une fois lavŽs, les plugs ont ŽtŽ placŽs sŽparŽment dans un c™ne Eppendorf¨ contenant chacun 265 !l dÕeau distillŽe stŽrile, 30 !l de tampon 10x dÕenzyme AseI, 3 !l dÕalbumine bovine 100x (BSA) et 3 !l dÕenzyme de restriction AseI. Les c™nes ont ŽtŽ placŽs dans un bain-marie ˆ 37¡C pendant une nuit.

Aprs digestion, les plugs Žtaient soit utilisŽs directement pour lՎlectrophorse, soit conservŽs ˆ +4¡C dans une solution fra”che dÕESP.

o Electrophorse en champ pulsŽ

Pour chaque souche ŽtudiŽe, un petit morceau de plug a ŽtŽ placŽ au fond dÕun puits dÕun gel dÕagarose ˆ 1 % (Seakem GTG¨), en veillant ˆ le plaquer contre la paroi antŽrieure. Un marqueur de poids molŽculaire (Mid Range I PFG Marker, New England Biolabs) a Žgalement ŽtŽ placŽ dans le gel. Les puits ont ensuite ŽtŽ scellŽs par de lÕagarose ˆ 1% ayant servi ˆ fabriquer le gel. Le gel dŽmoulŽ, a ŽtŽ placŽ dans la cuve de migration de lÕappareil servant ˆ lՎlectrophorse en champ pulsŽ (GenepathTM System, BioRad). La cuve a ŽtŽ prŽalablement remplie par 1,9 litres de TBE 0,5x (Tris 0,45 mM - Borate 0,45 mM Ð EDTA 0,01 mM) et 100!M de thiourŽe. Un systme de rŽfrigŽration a permis dÕassurer une tempŽrature constante de 14¡C. LՎlectrophorse a ŽtŽ lancŽe avec le programme 16 permettant de sŽparer des fragments dÕADN allant jusquՈ 600 kb.

o RŽvŽlation du gel

Aprs 20 heures de migration, le gel a ŽtŽ placŽ 1 heure dans un bain dÕeau distillŽe auquel ont ŽtŽ ajoutŽs 400 !l de bromure dՎthidium (1mg/ml). LÕexcs de bromure dՎthidium a ŽtŽ ŽliminŽ par incubation pendant une heure dans un bain dÕeau distillŽe seule. Le gel a ensuite ŽtŽ photographiŽ sur une table ˆ lumire ultra-violette.

o InterprŽtation des rŽsultats

Les profils obtenus ont alors ŽtŽ comparŽs visuellement selon les critres prŽcŽdemment dŽfinis par Tenover et al. (Chapitre Rappels bibliographiques II B 3b p.58).

88

II. RESULTATS

A. Etude prospective dÕune nouvelle mŽthode de

dŽcontamination des prŽlvements et de lÕapport du

milieu de culture Cepacia

¨

1.

Description gŽnŽrale de la population

Pendant les 5 mois de notre Žtude, 126 prŽlvements ont ŽtŽ ŽtudiŽs : 119 crachats, 6 aspirations bronchiques, un prŽlvement bronchique distale protŽgŽ (PBDP) et un lavage broncho- alvŽolaire (LBA).

Ces prŽlvements provenaient de 73 patients atteints de mucoviscidose et suivis au CRCM de Rouen. Il y avait 40 hommes et 33 femmes, soit un sex ratio de 1,2. Neuf des 73 patients Žtaient des enfants ($16ans). La tranche dՉge sՎtendait de 7 ˆ 66 ans pour une moyenne dՉge de 29 ans.

La quantitŽ de prŽlvements reue nÕa pas toujours permis de tester les deux techniques de dŽcontamination et la mise en culture sur milieu Cepacia¨ (Figure 37).

Seize prŽlvements ont ŽtŽ effectuŽs chez les enfants, soit une moyenne de 1,77 prŽlvements par enfant et un total de 110 prŽlvements chez les 64 adultes, soit une moyenne de 1,72 prŽlvements par adulte.

Sur les 126 prŽlvements, 58 prŽlvements ont ŽtŽ dŽcontaminŽs par les mŽthodes A et B et ensemencŽs sur le milieu Cepacia¨. Pour 55 prŽlvements, seule la mŽthode A et la mise en culture sur milieu Cepacia¨ ont pu tre mises en Ïuvre (Figure 38).

DD : double dŽcontamination (mŽthode A) Ch : dŽcontamination ˆ la chlorhexidine (mŽthode B) CŽ : milieu CŽpacia

Figure 38 : Tests effectuŽs sur les 126 prŽlvements

2.

RŽsultats

o Cultures positives

Sur ces 126 prŽlvements, 19 cultures positives (15%) de mycobactŽrie ont ŽtŽ observŽes gr‰ce ˆ au moins lÕune des trois approches testŽes : 16 (84%) avec une mycobactŽrie du complexe

abscessus et 3 (16%) avec Mycobacterium gordonae.

Les 3 souches de M. gordonae ont ŽtŽ isolŽes de 3 patients diffŽrents et nÕont jamais ŽtŽ retrouvŽes sur milieu Cepacia¨. Nous les avons retrouvŽs une fois dans un milieu MGITTM au 42me jour de culture et les deux autres fois uniquement sur milieu de Lšwenstein-Jensen au 35me jour de culture avec les mŽthodes A et B.

90 Les 16 cultures positives de mycobactŽrie du complexe abscessus provenaient de 6 patients mucoviscidosiques ‰gŽs de 12 ˆ 44 ans (‰ge moyen = 25,3 ans), soit 2 enfants et 8 adultes. Sur cette pŽriode, le taux de prŽvalence dÕinfection ou de colonisation ˆ mycobactŽries du complexe abscessus au sein du CRCM de Rouen est donc de 8,2 %. Neuf patients Žtaient connus et un seul non connu.

La majoritŽ de ces prŽlvements (87,5%) Žtaient des crachats. Le tableau 11 indique les rŽsultats des examens directs et des cultures liquides et solides selon les techniques effectuŽes sur ces 16 prŽlvements.

MŽthode A MŽthode B CŽpacia¨ Patients Nature des

prŽlvements ED Cultures liquides (MGIT) Cultures solides ED Cultures solides Cultures 1 Crachats <1/chp + 3me j +15 me j 50 col ne ne +3me j col R 2 MAH ALE Crachats - + 4me j + 5 me j 100 col - + 5me j 30 col + 2me j col R M. abscessus 3 Crachats - + 4me j + 8 me j 50 col ne ne +3me j col R 4 Crachats 1-10/chp + 2me j + 8 me j 100 col ne ne +3me j col R 5 Crachats ne ne ne <1/chp + 6 me j innombrables +4me j col R 6 GUI ART Crachats 100/chp + 2me j + 4 me j 30 col <1/chp + 4me j 30 col + 3me j ccl R M. abscessus

7 Crachats - + 3me j souillŽes ne ne +3

me j col R 8 Crachats ne ne ne ne ne +3 me j col R 9 LBA <1/chp ne ne ne ne +3 me j col R 10 PBDP - ne ne ne ne +6 me j col R 11 Crachats 1 vu + 5me j - - +3 me j 50 col +3me j col R 12 VAR ARU Crachats <1/chp + 3me j + 10 me j 50 col 10 vus + 6me j 500 col + 4me j col R M. massiliense

13 T.RU DAM Crachats - + 3me j - ne ne - M. abscessus

14 Crachats - - - ne ne +10 me j col R 15 COU DOR Crachats - + 9me j + 7 me j 4 col - + 15me j 50 col - M. bolletii

16 COB LAU Crachats - + 6me j - - + 6

me j

30 col

+ 6me j

col S M. abscessus