• Aucun résultat trouvé

CONCLUSION ET PERSPECTIVES

Dans le document Faculté de Pharmacie (Page 190-200)

CONCLUSION ET PERSPECTIVES

Les principales conclusions des résultats présentés dans ce travail sont résumées ci-dessous :

Les récepteurs purinergiques sont couplés à la production de ROS aussi bien dans les glandes salivaires que dans les cellules phagocytaires. Dans les macrophages, l’ATP stimule la production de ROS via les récepteurs P2X7, et probablement les récepteurs P2X4 et P2Y. Cette réponse est calcium-dépendante et implique la NADPH oxydase. Dans les glandes sous-maxillaires, la production de ROS en réponse à l’ATP est secondaire à l’activation des récepteurs P2X7 et est calcium-indépendante. La voie de signalisation menant à cette production implique la PKC ainsi que ERK1/2 qui activent la NADPH oxydase.

L’expression et la sécrétion de la cytokine IL-1β sont également régulées différemment dans les macrophages et les glandes salivaires. Nous avons montré que l’IL-1β

est exprimée de manière constitutive par les cellules ductales et les acini des glandes sous-maxillaires, à un taux plus élevé que celui trouvé dans les macrophages. Contrairement aux cellules phagocytaires, l’expression de la cytokine n’est pas augmentée suite à la stimulation des récepteurs TLR4 par des LPS. L’IL-1β est également sécrétée de manière constitutive par les glandes salivaires. Cette sécrétion n’est pas régulée par les agonistes des récepteurs P2X7, malgré les variations ioniques secondaires à l’activation de ces récepteurs.

Nous avons finalement montré grâce à un modèle murin (CRAMP, un peptide murin dérivé de la cathélicidine et macrophages murins) que ce peptide antimicrobien et les récepteurs P2X7 interagissent, mais que cette interaction n’est pas toujours positive. Le CRAMP inhibe spécifiquement les réponses couplées à l’activation des récepteurs P2X7

murins, ceci malgré sa capacité de former une hélice α en solution aqueuse. Les récepteurs FPR, dont le CRAMP est un agoniste, n’interviennent pas dans l’inhibition exercée sur l’augmentation de la [Ca2+]i secondaire à l’activation des récepteurs P2X7. Les peptides

antimicrobiens de la famille des cathélicidines ne sont donc pas des agonistes universels des récepteurs P2X7.

Ces résultats confirment l’importance des glandes salivaires dans l’immunologie orale. Dans ces glandes, la production de ROS en réponse à des agonistes purinergiques ainsi que l’expression et la sécrétion constitutives d’IL-1β pourraient contribuer à la protection et au maintien de l’intégrité de la muqueuse buccale (Fig. 7.1). En présence de la lactoperoxydase et du thiocyanate, les ROS sont à l’origine de la production d’hypothiocyanite, à propriétés antimicrobiennes, qui est délivré directement au niveau de la bouche. Suite à la sécrétion constitutive d’IL-1β, la libération de facteurs de croissance par les fibroblastes gingivaux serait stimulée, entraînant la prolifération de cellules épithéliales. La cytokine intervient ainsi dans les processus de cicatrisation et joue un rôle de protection de la muqueuse buccale. Le rôle des macrophages semble différent. Dans ces cellules phagocytaires, les ROS produits en réponse à l’ATP participent à la défense de l’hôte en tuant des micro-organismes invasifs. L’expression d’IL-1β par les macrophages est négligeable en condition basale, mais augmente considérablement en réponse à des dangers ou des agressions tels que des LPS. Suite à un deuxième stimulus, par exemple l’activation des récepteurs P2X7 par l’ATP extracellulaire, la cytokine est clivée en sa forme mature et elle est sécrétée en grande quantité. Les macrophages sont donc activés suite à une invasion bactérienne et sont à l’origine de phénomènes inflammatoires dans le but d’éliminer les pathogènes.

Ces travaux nous permettent de conclure que les récepteurs P2X7 ne sont pas seulement des canaux cationiques, mais sont couplés à diverses voies de signalisations dans les macrophages et dans les glandes exocrines, comme montré par le modèle des glandes sous-maxillaires. Cependant, les voies couplées aux récepteurs P2X7, ainsi que la régulation de ces récepteurs diffèrent en fonction du tissu ainsi que de l’espèce étudiés. Ces données ne sont pas négligeables lors de la mise au point de nouveaux médicaments ayant comme cible les récepteurs P2X7.

Notre travail de recherche ouvre plusieurs pistes d’investigations sur les voies de signalisation activées par les récepteurs P2X7. Afin d’obtenir plus d’informations quant aux domaines des récepteurs P2X7 importants dans l’activation ces voies de signalisation, on pourrait envisager d’exprimer des formes tronquées de ces récepteurs dans des cellules en

culture. Il serait également intéressant d’étudier le rôle de la PLA2 dans la production de ROS. En effet, Chetterjee et ses collègues (2011) ont récemment montré que la peroxyrédoxine-6, une enzyme bifonctionnelle avec une activité de glutathion peroxydase et de PLA2, participe dans l’activation de la NADPH oxydase des neutrophiles. Un autre point intéressant serait d’étudier les voies intracellulaires couplées aux récepteurs TLR4 dans les glandes salivaires, afin de déterminer pourquoi la stimulation par les LPS n’entraîne pas d’activation de NF-κB. Des analyses par Western blot permettraient ainsi de mettre en évidence si toutes les protéines impliquées dans l’activation de ce facteur de transcription en réponse aux LPS sont exprimées dans les glandes salivaires.

Figure 7.1 : Modèle montrant le rôle des glandes salivaires dans l’immunologie orale,

notamment par la production de ROS en réponse à l’activation des récepteurs P2X7 et

par la sécrétion constitutive d’IL-1ββββ.

L’ATP, libéré par les acini ou les cellules ductales en réponse à des stimulations mécaniques ou par des agonistes, active des récepteurs P2X7. Ceci est suivi par l’activation de la NADPH oxydase et la production subséquente de ROS. En présence de thiocyanate (SCN-) et de la lactoperoxydase (LPO) il y a formation d’hypothiocyanite (OSCN-), à propriétés antimicrobiennes. La cytokine IL-1β est sécrétée de manière constitutive dans la lumière des glandes salivaires. La salive finale hypotonique contient ainsi divers composants contribuant à la protection et au maintien de l’intégrité de la muqueuse buccale.

BIBLIOGRAPHIE

Abbracchio, M.P., Burnstock, G. Purinoceptors: Are there families of P2X and P2Y purinoceptors? Pharmacol Ther 1994; 64: 445-475.

Abbracchio, M.P., Boeynaems, J.M., Barnard, E.A., Boyer, J.L., Kennedy, C., Miras-Portugal, M.T., King, B.F., Gachet, C., Jacobson, K.A., Weisman, G.A., Burnstock, G. Characterization of the UDP-glucose receptor (re-named here the P2Y14 receptor) adds diversity to the P2Y receptor family. Trends Pharmacol Sci 2003; 24: 52-55.

Abbracchio, M.P., Burnstock, G., Boeynaems, J.M., Barnard, E.A., Boyer, J.L., Kennedy, C., Knight, G.E., Fumagalli, M., Gachet, C., Jacobson, K.A., Weisman, G.A. International Union of Pharmacology LVIII: Update on P2Y G protein-coupled nucleotide receptors: from molecular mechanisms and pathophysiology to therapy. Pharmacol Rev 2006; 58: 281-341. Adriouch, S., Dox, C., Welge, V., Seman, M., Koch-Nolte, F., Haag, F. Cutting edge: a natural P451L mutation in the cytoplasmic domain impairs the function of the mouse P2X7

receptor. J Immunol 2002; 169: 4108-4112.

Adriouch, S., Bannas, P., Schwarz, N., Fliegert, R., Guse, A.H., Seman, M., Haag, F., Koch-Nolte, F. ADP-ribosylation at R125 gates the P2X7 ion channel by presenting a covalent ligand to its nucleotide binding site. FASEB J 2008; 22: 861-869.

Aga, M., Johnson, C.J., Hart, A.P., Guadarrama, A.G., Suresh, M., Svaren, J., Bertics, P.J., Darien, B.J. Modulation of monocyte signaling and pore formation in response to agonists of the nucleotide receptor P2X7. J Leukoc Biol 2002; 72: 222-232.

Agerberth, B., Charo, J., Werr, J., Olsson, B., Idali, F., Lindbom, L., Kiessling, R., Jörnvall, H., Wigzell, H., Gudmundsson, G.H. The human antimicrobial and chemotactic peptides LL-37 and α-defensins are expressed by specific lymphocyte and monocyte populations. Blood 2000; 96: 3086-3093.

Agteresch, H.J., Burgers, S.A., van der Gaast, A., Wilson, J.H., Dagnelie, P.C. Randomized clinical trial of adenosine 5'-triphosphate on tumor growth and survival in advanced lung cancer patients. Anticancer Drugs 2003; 14: 639-644.

Akarsu, E.S., Mamuk, S. Escherichia coli lipopolysaccharides produce serotype-specific hypothermic response in biotelemetered rats. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2007; 292: 1846-1850.

Aksentijevich, I., Nowak, M., Mallah, M., Chae, J.J., Watford, W.T., Hofmann, S.R., Stein, L., Russo, R., Goldsmith, D., Dent, P., Rosenberg, H.F., Austin, F., Remmers, E.F., Balow, J.E.Jr., Rosenzweig, S., Komarow, H., Shoham, N.G., Wood, G., Jones, J., Mangra, N., Carrero, H., Adams, B.S., Moore, T.L., Schikler, K., Hoffman, H., Lovell, D.J., Lipnick, R., Barron, K., O'Shea, J.J., Kastner, D.L., Goldbach-Mansky, R. De novo CIAS1 mutations, cytokine activation, and evidence for genetic heterogeneity in patients with neonatal-onset

multisystem inflammatory disease (NOMID): a new member of the expanding family of pyrin-associated autoinflammatory diseases. Arthritis Rheum 2002; 46: 3340-3348.

Alessi, D.R., Cuenda, A., Cohen, P., Dudley, D.T., Saltiel, A.R. PD098059 is a specific inhibitor of the activation of mitogen-activated protein kinase kinase in vitro and in vivo. J Biol Chem 1995; 270: 27489-27494.

Allam, R., Darisipudi, M.N., Rupanagudi, K.V., Lichtnekert, J., Tschopp, J., Anders, H.J. Cutting edge: Cyclic polypeptide and aminoglycoside antibiotics trigger IL-1β secretion by activating the NLRP3 inflammasome. J Immunol 2011; 186: 2714-2718.

Alzola, E., Pérez-Etxebarria, A., Kabré, E., Fogarty, D.J., Métioui, M., Chaïb, N., Macarulla, J.M., Matute, C., Dehaye, J.P., Marino, A. Activation by P2X7 agonists of two phospholipases A2 (PLA2) in ductal cells of rat submandibular gland. Coupling of the calcium-independent PLA2 with kallikrein secretion. J Biol Chem 1998; 273: 30208-30217.

Alzola, E., Chaïb, N., Pochet, S., Kabré, E., Marino, A., Dehaye, J.P. Modulation by propranolol of the uptake of ethidium bromide by rat submandibular acinar cells exposed to a P2X7 agonist or to maitotoxin. Cell Signal 2001; 13: 465-473.

Amerongen, A.V., Veerman, E.C. Saliva - the defender of the oral cavity. Oral Dis 2002; 8: 12-22.

Ameziane-El-Hassani, R., Morand, S., Boucher, J.L., Frapart, Y.M., Apostolou, D., Agnandji, D., Gnidehou, S., Ohayon, R., Noël-Hudson, M.S., Francon, J., Lalaoui, K., Virion, A., Dupuy, C. Dual oxidase-2 has an intrinsic Ca2+-dependent H2O2-generating activity. J Biol Chem 2005; 280: 30046-30054.

Amsallem, H., Metioui, M., VandenAbeele, A., Elyamani, A., Moran, A., Dehaye, J.P. Presence of a metabotropic and an ionotropic purinergic receptor on rat submandibular ductal cells. Am J Physiol 1996; 271: 1546-1555.

Amstrup, J., Novak, I. P2X7 receptor activates extracellular signal-regulated kinases ERK1 and ERK2 independently of Ca2+ influx. Biochem J 2003; 374: 51-61.

Andrei, C., Margiocco, P., Poggi, A., Lotti, L.V., Torrisi, M.R., Rubartelli, A. Phospholipases C and A2 control lysosome-mediated IL-1β secretion: Implications for inflammatory processes. Proc Natl Acad Sci U S A 2004; 101: 9745-9750.

Antonio, L.S., Stewart, A.P., Xu, X.J., Varanda, W.A., Murrell-Lagnado, R.D., Edwardson, J.M. P2X4 receptors interact with both P2X2 and P2X7 receptors in the form of homotrimers. Br J Pharmacol 2011; doi: 10.1111/j.1476-5381.2011.01303.x.

Applequist, S.E., Wallin, R.P., Ljunggren, H.G. Variable expression of toll-like receptor in murine innate and adaptive immune cell lines. Int Immunol 2002; 14: 1065-1074.

Asatryan, L., Popova, M., Perkins, D., Trudell, J.R., Alkana, R.L., Davies, D.L. Ivermectin antagonizes ethanol inhibition in purinergic P2X4 receptors. J Pharmacol Exp Ther 2010; 334: 720-728.

Assari, T. Chronic granulomatous disease; fundamental stages in our understanding of CGD. Med Immunol 2006; 5: 4.

Auger, M.J., Ross, J.A. The biology of the macrophage. Dans: The Macrophage. Eds. Lewis, C.E., McGee, J.O. Oxford University Press. 1992; 1-57.

Babior, B.M. NADPH oxidase: an update. Blood 1999; 93: 1464-1476.

Bals, R., Wang, X., Zasloff, M., Wilson, J.M. The peptide antibiotic LL-37/hCAP-18 is expressed in epithelia of the human lung where it has broad antimicrobial activity at the airway surface. Proc Natl Acad Sci U S A 1998; 95: 9541-9546.

Bals, R., Wilson, J.M. Cathelicidins - a family of multifunctional antimicrobial peptides. Cell Mol Life Sci 2003; 60: 711-720.

Bao, L., Locovei, S., Dahl, G. Pannexin membrane channels are mechanosensitive conduits for ATP. FEBS Lett 2004; 572: 65-68.

Barta, A., Tarjan, I., Kittel, A., Horváth, K., Pósa, A., László, F., Kovács, A., Varga, G., Zellesand, Z., Whittle, B.J.R. Endotoxin can decrease isolated rat parotid acinar cell amylase secretion in a nitric oxide-independent manner. Eur J Pharmacol 2005; 524: 169-173.

Barth, K., Weinhold, K., Guenther, A., Young, M.T., Schnittler, H., Kasper, M. Caveolin-1 influences P2X7 receptor expression and localization in mouse lung alveolar epithelial cells. FEBS J 2007; 274: 3021-3033.

Bartosz, G. Use of spectroscopic probes for detection of reactive oxygen species. Clin Chim Acta 2006; 368: 53-76.

Bartosz, G. Reactive oxygen species: Destroyers or messengers? Biochem Pharmacol 2009; 77: 1303-1315.

Bauernfeind, F., Ablasser, A., Bartok, E., Kim, S., Schmid-Burgk, J., Cavlar, T., Hornung, V. Inflammasomes: Current understanding and open questions. Cell Mol Life Sci 2011; 68: 765-783.

Bean, B.P., Williams, C.A., Ceelen, P.W. ATP-activated channels in rat and bullfrog sensory neurons: current-voltage relation and single-channel behavior. J Neurosci 1990; 10: 11-19. Becker, D., Woltersdorf, R., Boldt, W., Schmitz, S., Braam, U., Schmalzing, G., Markwardt, F. The P2X7 carboxyl tail is a regulatory module of P2X7 receptor channel activity. J Biol Chem 2008; 283: 25725-25734.

Bedard, K., Krause, K.H. The NOX family of ROS-generating NADPH oxidases: physiology and pathophysiology. Physiol Rev 2007; 87: 245-313.

Beigi, R.D., Dubyak, G.R. Endotoxin activation of macrophages does not induce ATP release and autocrine stimulation of P2 nucleotide receptors. J Immunol 2000; 165: 7189-7198.

Benham, C.D., Tsien, R.W. A novel receptor-operated Ca2+- permeable channel activated by ATP in smooth muscle. Nature 1987; 238: 275-278.

Bergman, P., Johansson, L., Wan, H., Jones, A., Gallo, R.L., Gudmundsson, G.H., Hokfelt, T., Jonsson, A.B., Agerberth, B. Induction of the antimicrobial peptide CRAMP in the blood-brain barrier and meninges after meningococcal infection. Infect Immun 2006; 74: 6982-6991. Bleasdale, J.E., Thakur, N.R., Gremban, R.S., Bundy, G.L., Fitzpatrick, F.A., Smith, R.J., Bunting, S. Selective inhibition of receptor-coupled phospholipase C-dependent processes in human platelets and polymorphonuclear neutrophils. J Pharmacol Exp Ther 1990; 255: 756-768.

Bo, X., Zhang, Y., Nassar, M., Burnstock, G., Schoepfer, R. A P2X purinoceptor cDNA conferring a novel pharmacological profile. FEBS Lett 1995; 375: 129-133.

Bo, X., Schoepfer, R., Burnstock, G. Molecular cloning and characterization of a novel ATP P2X receptor subtype from embryonic chick skeletal muscle. J Biol Chem 2000; 275: 14401-14407.

Bobanovic, L.K., Royle, S.J., Murrell-Lagnado, R.D. P2X receptor trafficking in neurons is subunit specific. J Neurosci 2002; 22: 4814-4824.

Bogdanov, Y.D., Wildman, S.S., Clements, M.P., King, B.F., Burnstock, G. Molecular cloning and characterization of rat P2Y4 nucleotide receptor. Br J Pharmacol 1998; 124: 428-430.

Boman, H.G. Antibacterial peptides: Basic facts and emerging concepts. J Intern Med 2003; 254: 197-215.

Bonini, M.G., Rota, C., Tomasi, A., Mason, R.P. The oxidation of 2',7'-dichlorofluorescin to reactive oxygen species: a self-fulfilling prophesy? Free Radic Biol Med 2006; 40: 968-975. Boumechache, M., Masin, M., Edwardson, J.M., Górecki, D.C., Murrell-Lagnado, R. Analysis of assembly and trafficking of native P2X4 and P2X7 receptor complexes in rodent immune cells. J Biol Chem 2009; 284: 13446-13454.

Bours, M.J., Swennen, E.L., Di Virgilio, F., Cronstein, B.N., Dagnelie, P.C. Adenosine 5'-triphosphate and adenosine as endogenous signaling molecules in immunity and inflammation. Pharmacol Ther 2006; 112: 358-404.

Bradford, M.D., Soltoff, S.P. P2X7 receptors activate protein kinase D and p42/p44 mitogen-activated protein kinase (MAPK) downstream of protein kinase C. Biochem J 2002; 366: 745-755.

Braff, M.H., Zaiou, M., Fierer, J., Nizet, V., Gallo, R.L. Keratinocyte production of cathelicidin provides direct activity against bacterial skin pathogens. Infect Immun 2005; 73: 6771-6781.

Brake, A.J., Wagenbach, M.J., Julius, D. New structural motif for ligand-gated ion channels defined by an ionotropic ATP receptor. Nature 1994; 371: 519-523.

Brandenburg, L.O., Jansen, S., Wruck, C.J., Lucius, R., Pufe, T. Antimicrobial peptide rCRAMP induced glial cell activation through P2Y receptor signalling pathways. Mol Immunol 2010; 47: 1905-1913.

Brinson, A.E., Harden, T.K. Differential regulation of the uridine nucleotide-activated P2Y4

and P2Y6 receptors: SER-333 and SER-334 in the carboxyl terminus are involved in agonist-dependent phosphorylation desensitization and internalization of the P2Y4 receptor. J Biol Chem 2001; 276: 11939-11948.

Brogden, K.A. Antimicrobial peptides: Pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? Nat Rev Microbiol 2005; 3: 238-250.

Brosky, M.E. The role of saliva in oral health: strategies for prevention and management of xerostomia. J Support Oncol 2007; 5: 215-225.

Buell, G., Lewis, C., Collo, G., North, R.A., Surprenant, A. An antagonist-insensitive P2X receptor expressed in epithelia and brain. EMBO J 1996; 15: 55-62.

Burnstock, G. Purinergic nerves. Pharmacol Rev 1972; 24: 509-581. Burnstock, G. Purinergic receptors. J Theor Biol 1976; 62: 491-503.

Burnstock, G. A basis for distinguishing two types of purinergic receptor. Dans : Cell membrane receptors for drugs and hormones: a multidisciplinary approach. Eds. Straub, R.W., Bolis, L. Raven Press. New York. 1978; 107-118.

Burnstock, G., Kennedy, C. Is there a basis for distinguishing two types of P2-purinoceptor? Gen Pharmacol 1985; 16: 433-440.

Burnstock, G. Purinergic signalling. Br J Pharmacol 2006a; 147: S172-S181.

Burnstock, G. Pathophysiology and therapeutic potential of purinergic signaling. Pharmacol Rev 2006b; 58: 58-86.

Burnstock, G. Physiology and pathophysiology of purinergic neurotransmission. Physiol Rev 2007a; 87: 659-797.

Burnstock, G. Purine and pyrimidine receptors. Cell Mol Life Sci 2007b; 64: 1471-1483. Burnstock, G. Purinergic signalling and disorders of the central nervous system. Nature Rev Drug Discov 2008; 7: 575-590.

Burnstock, G. Purinergic cotransmission. Exp Physiol 2009; 94: 20-24.

Burnstock, G. Therapeutic potential of purinergic signalling for diseases of the urinary tract. BJU Int 2011; 107: 192-204.

Cabrini, G., Falzoni, S., Forchap, S.L., Pellegatti, P., Balboni, A., Agostini, P., Cuneo, A., Castoldi, G., Baricordi, O.R., Di Virgilio, F. A His-155 to Tyr polymorphism confers

gain-of-function to the human P2X7 receptor of human leukemic lymphocytes. J Immunol 2005; 175: 82-89.

Calon, F., Dridi, M., Hornykiewicz, O., Bédard, P.J., Rajput, A.H., Di Paolo, T. Increased adenosine A2A receptors in the brain of Parkinson's disease patients with dyskinesias. Brain 2004; 127: 1075-1084.

Cankurtaran-Sayar, S., Sayar, K., Ugur, M. P2X7 receptor activates multiple selective dye-permeation pathways in RAW 264.7 and human embryonic kidney 293 cells. Mol Pharmacol 2009; 76: 1323-1332.

Catalan, M.A., Nakamoto, T., Melvin, J.E. The salivary gland fluid secretion mechanism. J Med Invest 2009; 56: 192-196.

Catalan, M.A., Nakamoto, T., Gonzalez-Begne, M., Camden, J.M., Wall, S.M., Clarke, L.L., Melvin, J.E. CFTR and ENaC ion channels mediate NaCl absorption in the mouse submandibular gland. J Physiol 2010; 588: 713-724.

Cattaneo, M., Podda, G.M. State of the art of new P2Y12 antagonists. Intern Emerg Med 2010; 5: 385-391.

Chaïb, N., Kabré, E., Alzola, E., Pochet, S., Dehaye, J.P. Bromoenol lactone enhances the permeabilization of rat submandibular acinar cells by P2X7 agonists. Br J Pharmacol 2000; 129: 703-708.

Chakfe, Y., Seguin, R., Antel, J., Morissette, C., Malo, D., Henderson, C., Séguéla, P. ADP and AMP induce interleukin-1ß release from microglia through activation of ATP-primed P2X7 receptor-channels. J Neurosci 2002; 22: 3061-3069.

Chambers, J.K., Macdonald, L.E :, Sarau, H.M., Ames, R.S., Freeman, K., Foley, J.J., Zhu, Y., McLaughlin, M.M., Murdock, P., McMillan, L., Trill, J., Swift, A., Aiyar, N., Taylor, P., Vawter, L., Naheed, S., Szekeres, P., Hervieu, G., Scott, C., Watson, J.M., Murphy, A.J., Duzic, E., Klein, C., Bergsma, D.J., Wilson, S., Livi, G.P. A G protein-coupled receptor for UDP-glucose. J Biol Chem 2000; 275: 10767-10771.

Chang, K., Hanaoka, K., Kumada, M., Takuwa, Y. Molecular cloning and functional analysis of a novel P2 nucleotide receptor. J Biol Chem 1995; 270: 26152-26158.

Cheewatrakoolpong, B., Gilchrest, H., Anthes, J.C., Greenfeder, S. Identification and characterization of splice variants of the human P2X7 ATP channel. Biochem Biophys Res Commun 2005; 332: 17-27.

Chen, C.C., Akopian, A.N., Sivilotti, L., Colquhoun, D., Burnstock G., Wood, J.N. A P2X purinoceptor expressed by a subset of sensory neurons. Nature 1995; 377: 428-431.

Chessell, I.P., Hatcher, J.P., Bountra, C., Michel, A.D., Hughes, J.P., Green, P., Egerton, J., Murfin, M., Richardson, J., Peck, W.L., Grahames, C.B., Casula, M.A., Yiangou, Y., Birch, R., Anand, P., Buell, G.N. Disruption of the P2X7 purinoceptor gene abolishes chronic inflammatory and neuropathic pain. Pain 2005; 114: 386-396.

Chatterjee, S., Feinstein, S.I., Dodia, C., Sorokina, E., Lien, Y.C., Nguyen, S., Debolt, K., Speicher, D., Fisher, A.B. Peroxiredoxin 6 phosphorylation and subsequent phospholipase A2 activity are required for agonist-mediated activation of NADPH oxidase in mouse pulmonary microvascular endothelium and alveolar macrophages. J Biol Chem 2011; doi: 10.1074/jbc.M110.206623.

Chhatriwala, M., Ravi, R.G., Patel, R.I., Boyer, J.L., Jacobson, K.A., Harden, T.K. Induction of novel agonist selectivity for the ADP-activated P2Y1 receptor versus the ADP-activated P2Y12 and P2Y13 receptors by conformational constraint of an ADP analogue. J Pharmacol Exp Ther 2004; 311: 1038-1043.

Christophe, T., Karlsson, A., Dugave, C., Rabiet, M.J., Boulay, F., Dahlgren, C. The synthetic peptide Trp-Lys-Tyr-Met-Val-Met-NH2 specifically activates neutrophils through FPRL1/Lipoxin A4 receptors and is an agonist for the orphan monocyte-expressed chemoattractant receptor FPRL2. J Biol Chem 2001; 276: 21585-21593.

Chromek, M., Slamova, Z., Bergman, P., Kovacs, L., Podracka, L., Ehren, I., Hokfelt, T., Gudmundsson, G.H., Gallo, R.L., Agerberth, B., Brauner, A. The antimicrobial peptide cathelicidin protects the urinary tract against invasive bacterial infection. Nat Med 2006; 12: 636-641.

Coffelt, S.B., Waterman, R.S., Florez, L., Honer zu Bentrup, K., Zwezdaryk, K.J., Tomchuck, S.L., LaMarca, H.L., Danka, E.S., Morris, C.A., Scandurro, A.B. Ovarian cancers overexpress the antimicrobial protein hCAP-18 and its derivative LL-37 increases ovarian cancer cell proliferation and invasion. Int J Cancer 2008; 122: 1030-1039.

Coffelt, S.B., Marini, F.C., Watson, K., Zwezdaryk, K.J., Dembinski, J.L., LaMarca, H.L., Tomchuck, S.L., Honer zu Bentrup, K., Danka, E.S., Henkle, S.L., Scandurro, A.B. The pro-inflammatory peptide LL-37 promotes ovarian tumor progression through recruitment of multipotent mesenchymal stromal cells. Proc Natl Acad Sci U S A 2009; 106: 3806-3811. Collingridge, G.L., Olsen, R.W., Peters, J., Spedding, M. A nomenclature for ligand-gated ion channels. Neuropharmacology 2009; 56: 2-5.

Collo, G., North, R.A., Kawashima, E., Merlo-Pich, E., Neidhart, S., Surprenant, A., Buell, G. Cloning of P2X5 and P2X6 receptors and the distribution and properties of an extended family of ATP-gated ion channels. J Neurosci 1996; 16: 2495-2507.

Communi, D., Pirotton, S., Parmentier, M., Boeynaems, J.M. Cloning and functional expression of a human uridine nucleotide receptor. J Biol Chem 1995; 270: 30849-30852. Communi, D., Motte, S., Boeynaems, J.M., Pirotton, S. Pharmacological characterization of the human P2Y4 receptor. Eur J Pharmacol 1996a; 317: 383-389.

Communi, D., Parmentier, M., Boeynaems, J.M. Cloning, functional expression and tissue distribution of the human P2Y6 receptor. Biochem Biophys Res Commun 1996b; 222: 303-308.

Communi, D., Govaerts, C., Parmentier, M., Boeynaems, J.M. Cloning of a human purinergic P2Y receptor coupled to phospholipase C and adenylyl cyclase. J Biol Chem 1997; 272: 31969-31973.

Communi, D., Suarez-Huerta, N., Dussossoy, D., Savi, P., Boeynaems, J.M. Cotranscription and intergenic splicing of human P2Y11 and SSF1 genes. J Biol Chem 2001a; 276: 16561-16566.

Communi, D., Gonzalez, N.S., Detheux, M., Brezillon, S., Lannoy, V., Parmentier, M., Boeynaems, J.M. Identification of a novel human ADP receptor coupled to Gi. J Biol Chem 2001b; 276: 41479-41485.

Correia, P.N., Carpenter, G.H., Paterson, K.L., Proctor, G.B. Inducible nitric oxide synthase increases secretion from inflamed salivary glands. Rheumatology 2010; 49: 48-56.

Cotrina, M.L., Lin, J.H., Alves-Rodrigues, A., Liu, S., Li, J., Azmi-Ghadimi, H., Kang, J., Naus, C.C., Nedergaard, M. Connexins regulate calcium signaling by controlling ATP release. Proc Natl Acad Sci U S A 1998; 95: 15735-15740.

Cottin, V., Doan, J.E., Riches, D.W. Restricted localization of the TNF receptor CD120a to lipid rafts: a novel role for the death domain. J Immunol 2002; 168: 4095-4102.

Coutinho-Silva, R., Ojcius, D.M., Gorecki, D.C., Persechini, P.M., Bisaggio, R.C., Mendes, A.N., Marks, J., Burnstock, G., Dunn, P.M. Multiple P2X and P2Y receptor subtypes in mouse J774, spleen and peritoneal macrophages. Biochem Pharmacol 2005; 69: 641-655. Craven, R.R., Gao, X., Allen, I.C., Gris, D., Bubeck Wardenburg, J., McElvania-Tekippe, E., Ting, J.P., Duncan, J.A. Staphylococcus aureus α-hemolysin activates the NLRP3-inflammasome in human and mouse monocytic cells. PLoS One 2009; 4: e7446.

Croker, B.A., Lawson, B.R., Rutschmann, S., Berger, M., Eidenschenk, C., Blasius, A.L., Moresco, E.M., Sovath, S., Cengia, L., Shultz, L.D., Theofilopoulos, A.N., Pettersson, S., Beutler, B.A. Inflammation and autoimmunity caused by a SHP1 mutation depend on IL-1, MyD88, and a microbial trigger. Proc Natl Acad Sci U S A 2008; 105: 15028-15033.

Crooke, A., Guzmán-Aranguez, A., Peral, A., Abdurrahman, M.K., Pintor, J. Nucleotides in ocular secretions: their role in ocular physiology. Pharmacol Ther 2008; 119: 55-73.

Cross, A.R., Jones, O.T. The effect of the inhibitor diphenylene iodonium on the superoxide-generating system of neutrophils. Specific labelling of a component polypeptide of the oxidase. Biochem J 1986; 237: 111-116.

Cruz, C.M., Rinna, A., Forman, H.J., Ventura, A.L.M., Persechini, P.M., Ojcius, D.M.ATP activates a reactive oxygen species-dependent oxidative stress response and secretion of proinflammatory cytokines in macrophages. J Biol Chem 2007; 282: 2871-2879.

Cully, D.F., Vassilatis, D.K., Liu, K.K., Paress, P.S., Van der Ploeg, L.H., Schaeffer, J.M., Arena, J.P. Cloning of an avermectin-sensitive glutamate-gated chloride channel from Caenorhabditis elegans. Nature 1994; 371: 707-711.

Dans le document Faculté de Pharmacie (Page 190-200)

Documents relatifs