• Aucun résultat trouvé

A. Informations générales  ANSM -

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

Partager "A. Informations générales  ANSM -"

Copied!
4
0
0

Texte intégral

(1)

ANSM -

Agence nationale de sécurité du médicament et des produits de santé ANSM/DMCDIVContact 143-147 Bd Anatole France 93 285 Saint-Denis Cedex Tel : 01 55 87 37 21

Déclaration pour les produits et procédés revendiquant une inactivation totale vis-à-vis des ATNC.

Le PSP est téléchargeable sur le site de l’ANSM à l’adresse suivante :

http://www.ansm.sante.fr/Dossiers-thematiques/Creutzfeldt-Jakob-et-produits-de-sante/Protocole-Standard-Prion/(offset)/0

 Pour les items proposant des cases à cocher, il convient de ne cocher qu’une seule proposition.

 Documents à joindre avec le formulaire rempli : - notice du dispositif médical,

- rapports des études réalisées, avec les données brutes, signés par les responsables des études.

A. Informations générales

 Fabricant (au sens de la directive 93/42/CEE) : Adresse postale :

--- --- ---

Nom de la personne à contacter : --- Téléphone : /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/

Télécopie : /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/ /_/

Courriel : ---

 Informations sur le dispositif faisant l’objet de la déclaration : Dénomination du dispositif (termes utilisés dans la notice d’instructions) :

---

Classe du dispositif selon l’annexe II de l’arrêté du 20 avril 2006 modifié par l’arrêté du 15 mars 2010 du Code de la Santé Publique : ---

Date du marquage CE : /_/ /_/ - /_/ /_/ - /_/ /_/ /_/ /_/

Nom de l’organisme notifié, numéro : --- Date de mise sur le marché en France : /_/ /_/ - /_/ /_/ - /_/ /_/ /_/ /_/

Conditions d’utilisation définies dans la notice d’instructions permettant d’atteindre l’inactivation totale (si procédé faisant intervenir le produit, détailler) :

--- --- ---

Mises en garde et/ou les précautions à prendre définies dans la notice d’utilisation :

--- --- ---

Ce dispositif :

Possède-t-il des propriétés séquestrantes ou agrégantes de protéines ? OUI NON Fixe-t-il les protéines sur les surfaces ? OUI NON

Comprend-t-il du SDS acide dans sa composition ? OUI NON

(2)

B. Méthode in vivo : Modèle de référence : Hamster / souche 263K

Descriptif du support pour l’inoculation par voie intra cérébrale (nature, taille, dimension, …) :

--- ---

 La méthode de contamination du support est-elle conforme à la méthode décrite dans le PSP ?

OUI NON

Si non, préciser les conditions

--- ---

Citer les deux traitements comparateurs retenus : - --- - ---

Citer et décrire le(s) traitement(s) témoin d’efficacité partielle utilisé(s) (concentration, temps de contact, température, pH, degré chlorométrique,…)

- --- - ---

Le produit ou le procédé à tester est appliqué selon les conditions d’utilisation définies dans la notice d’instruction :

OUI NON

Si non, préciser et justifier

--- --- ---

 La méthode d’inoculation des animaux est-elle conforme à celle décrite dans le PSP ?

OUI NON

Si non, préciser les conditions

--- --- ---

Dose infectieuse 50 (DI 50) obtenue à partir de la gamme contrôle :

DI 50 =      intervalle de confiance à 95 % =       Méthode calcul utilisée : Facteurs de réduction obtenus

Traitement Conditions

Transmission :

% animaux infectés

(PrPres positive)

Nbre animaux infectés/nbre animaux pris en compte*.

Temps d’incubation de la maladie (moyenne +/-

sd)

RF (facteur de réduction).

Comparateur 1 Comparateur 2 Témoin d’efficacité partielle Témoin d’efficacité partielle Produit ou procédé à tester

*Pour rappel, les animaux morts et dont la recherche de PrPres dans le cerveau est négative sont exclus de l’étude.

Nom(s) de(s) la personne(s)/de la structure ayant réalisé l’étude :

Formulaire PRION ANSM – version dec 2018 www.ansm.sante.fr 2/5

(3)

C. Méthode in vitro : Souche 263K et au moins une souche bovine ou humaine

Utilisation de souche de prion 263K identique à celle utilisée pour les études in vivo :

OUI NON

Si non, préciser et justifier

--- --- ---

Citer les autres souches testées : Bovine :

Humaine :

Supports d’infectiosité identiques à ceux utilisés pour les études in vivo :

OUI NON

Si non, préciser et justifier

--- --- ---

Réalisation d’une gamme contrôle attestant de la robustesse et de la sensibilité de la technique utilisée :

OUI NON

Si non, préciser et justifier

--- --- ---

Citer les 2 traitements comparateurs retenus

- --- - ---

Citer et décrire le(s) traitement(s) témoin d’efficacité partielle utilisé(s) concentration, temps de contact, température, pH, degré chlorométrique,…)

- --- - --- Pour le test en suspension :

Réalisation du test sur un homogénat de cerveau : OUI NON Réalisation du test sur les effluents : OUI NON

Si oui, décrire en détail la méthode de recueil des effluents

--- --- ---

Chaque manipulation est réalisée avec et sans traitement par protéinase K :

OUI NON

Si non, préciser :

--- ---

Le produit ou le procédé à tester est appliqué selon les conditions d’utilisation définies dans la notice d’instruction :

OUI NON

(4)

Si non, préciser et justifier :

--- ---

Méthode de détection de la PrP :

- Désorption de la PrP du support ou concentration des effluents si nécessaire, suivie d’une analyse immunologique

OUI NON

- Autre technique de détection directe de la PrP avec un protocole de validation de la méthode.

OUI NON (joindre le protocole de validation de la méthode).

L’expression des résultats est-elle conforme avec celle décrite dans le PSP ?

Signal négatif après application du produit ou procéder à tester = absence de PrP détectable, en tenant compte de la limite de dilution du témoin positif détectable :

Oui NON

Si non, préciser et justifier

--- ---

Signal positif après application du produit ou procéder à tester = présence de PrP détectable :

OUI NON

Si non, préciser et justifier

--- ---

Résultats in vitro Pour la souche 263K

Après application du produit ou procéder à tester, aucun signal ni pour le support ni dans l’effluent ou la solution : inactivation de la protéine prion : Oui NON

Après application du produit et procédé à tester, signal dans l’effluent ou la solution, avec ou sans signal pour le support : élimination de la protéine prion Oui NON

Pour les autres souches, bovine ou humaine, testées, Souche …….

Après application du produit ou procéder à tester, aucun signal ni pour le support ni dans l’effluent ou la solution : inactivation de la protéine prion : Oui NON

Après application du produit et procédé à tester, signal dans l’effluent ou la solution, avec ou sans signal pour le support : élimination de la protéine prion Oui NON

Souche …….

Après application du produit ou procéder à tester, aucun signal ni pour le support ni dans l’effluent ou la solution : inactivation de la protéine prion : Oui NON

Après application du produit et procédé à tester, signal dans l’effluent ou la solution, avec ou sans signal pour le support : élimination de la protéine prion Oui NON

Souche …….

Après application du produit ou procéder à tester, aucun signal ni pour le support ni dans l’effluent ou la solution : inactivation de la protéine prion : Oui NON

Après application du produit et procédé à tester, signal dans l’effluent ou la solution, avec ou sans signal pour le support : élimination de la protéine prion Oui NON

Souche …….

Après application du produit ou procéder à tester, aucun signal ni pour le support ni dans l’effluent ou la solution : inactivation de la protéine prion : Oui NON

Après application du produit et procédé à tester, signal dans l’effluent ou la solution, avec ou sans signal pour le support : élimination de la protéine prion Oui NON

Nom(s) de(s) la personne(s)/de la structure ayant réalisé l’étude :

--- ---

Formulaire PRION ANSM – version dec 2018 www.ansm.sante.fr 4/5

(5)

En conclusion, sur la base de l’algorithme proposé dans le PSP, je déclare que la performance du produit ou procédé --- correspond à l’inactivation totale.

Nom et fonction : Date et signature :

Références

Documents relatifs

Seule l’interaction de la protéine LRP (37 kD) avec la PrP c a pu être mise en évidence dans les cel- lules COS-7 transfectées avec les ADNc codant pour les deux pro- téines [16]

Ce sont des domaines protéiques, d’environ 100 acides aminés, présents dans de nombreuses protéines cytoplas- miques impliquées dans la transmis- sion du signal relayé par des

Il en est de même pour les adénovirus qui utilisent un récepteur pour se lier à la cellule e t, comme deuxième récepteur pour pénétrer la cellule cible,

L'effet antileucémique d'un inhibi- Drépanocytose : l'adhérence des ré­ teur de tyrosine kinase ciblé vers ticulocytes SS à l'endothélium vas­ une protéine

[2] ont séquencé les deux allèles contenant une phase ouverte dans deux familles, une américaine et une britannique ; chez les sujets atteints, une même mutation

Bernaud J. Une transmission de signaux non galvaniques est assurée par la propagation d’une onde, émise par un émetteur, captée par un récepteur, avec un support de transmission.

Helping is not maintained in the bright, yellow/orange regions: in the orange leftmost region Nonhelper dominates; in the yellow central left triangular region, the dominance

Autrement dit, la plus grande période (ou la plus petite fréquence) accessible à l ’analyse spectrale doit être contenue au moins 1 fois dans la longueur du signal analysé. • S