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En milieu basique, les protéines sont

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Academic year: 2022

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Thème 3 Corps humain et santé Chap.XI Mutation, patrimoine génétique et santé

La drépanocytose : une maladie d’origine génétique

TP 3 Identification de l’hémoglobine A et de l’hémoglobine S

Rappel du contexte de votre recherche : Vous travaillez au sein d’une équipe médicale dans un grand hôpital de la région bordelaise. Deux très jeunes patients, jumeaux, sont arrivés le matin dans votre service. Ils présentent des troubles tels que très grande fatigue, fièvre, essoufflement, douleur articulaire. Vous savez que ces patients présentent des hématies falciformes (TP Frottis sanguin). Vous savez qu’il existe un allèle muté responsable de la synthèse d’une globine β modifiée à l’origine d’une hémoglobine HbS (TP Relation phénotype moléculaire et génotype). Cette hémoglobine S correspond au phénotype moléculaire de la drépanocytose.

On cherche donc à vérifier que le type d’hémoglobine que possèdent les jeunes patients ainsi que leurs parents.

Documents ressources Après extraction et purification de molécules

d’hémoglobine contenue dans les hématies, on peut déterminer le type d’hémoglobine par la technique de l’électrophorèse qui permet de séparer des protéines.

Principe de l’électrophorèse :

En milieu basique, les protéines sont chargées négativement. Lorsqu’un mélange de protéines est soumis à un champ électrique, les protéines migrent à une distance caractéristique par rapport à la ligne de dépôt, en fonction de leur taille et de leur charge.

Le rouge Ponceau est un colorant

spécifique des protéines, ayant une grande affinité pour elles.

Exemple de résultats d’électrophorèse de différentes hémoglobines :

Etape A Proposer une stratégie de résolution et mettre en œuvre un protocole

Proposer une stratégie permettant de connaître le phénotype moléculaire des jeunes patients et de leurs parents

« Ce que je vais faire, je sais que, et pourquoi » ,« Comment je fais »,« Ce que j’attends »

Protocole Matériel :

Pipette, propipette, capillaire pour les dépôts….(voir au tableau), pinces Tube A contenant Hémoglobine du père

Tube B contenant Hémoglobine de la mère Tube C contenant Hémoglobine du jumeau 1 Tube D contenant Hémoglobine du jumeau 2

Cuve à électrophorèse, solution tampon, bandes d’acétate, applicateur Colorant (rouge Ponceau), bain d’acide acétique, solution de

transparisation, plaques de verre

Afin de vérifier le type de

d’hémoglobine des parents et des enfants, réaliser les dépôts nécessaires en suivant le protocole indiqué.

(voir fiche protocole)

Sécurité

Rouge Ponceau :

Etape B Communiquer et exploiter les résultats

Sous la forme de votre choix, présenter vos résultats et exploiter les résultats (« je vois que », « je sais que », je conclus »

(2)

Fiche Protocole

Mise en place des bandes d’acétate de cellulose dans la cuve :

1. Remplir la cuve à électrophorèse au 2/3 avec la solution tampon, de chaque côté, en évitant tout débordement.

Ne jamais toucher les bandes d’acétate avec les doigts, sinon des traces apparaîtront à la coloration.

2. Sortir les bandes des bacs à l’aide d’une pince, les placer entre 2 feuilles de papier filtre et les sécher à l’aide d’un mouvement rapide.

3. Fixer les bandes d’acétate de cellulose sur le portoir de la cuve, tendues autant que possible (sans les déchirer bien entendu), de façon à ce que la face mate qui est absorbante soit sur le dessus (encoche de la bande tenue dans la longueur en bas à droite). Les bandes doivent être parallèles entre elles et perpendiculaires à l’axe du portoir pour permettre une migration des protéines dans l’axe du portoir. (voir fig.1 et 2)

4. Poser le portoir dans la cuve et vérifier que les extrémités de chaque bande trempent dans le tampon de la cuve.

Dépôt du mélange

1. Tremper l’applicateur dans le mélange, déposer rapidement l’applicateur près du bord, du côté de l’encoche et perpendiculaire au grand axe de la bande d’acétate (faire une

application bien nette). (voir fig.1) Mise en route de l’électrophorèse

1. Fermer la cuve avec le couvercle, côté de la cathode (pôle négatif, borne noire) près du bord avec encoche.

2. Relier la cuve au générateur à l’aide du cordon. Respecter la correspondance des couleurs entre cordons et douilles.

3. Régler la tension de l’alimentation sur 160V.

4. Raccorder l’appareil au secteur. Mettre sous tension. La migration démarre et durera une heure.

Coloration au rouge Ponceau des protéines, décoloration des bandes et transparisation 1. Verser le colorant dans un bain.

2. Immerger les bandes 10 min face à traiter vers le liquide.

3. Décolorer les bandes en les plongeant successivement dans deux bains d’acide acétique 5

%. Seules les traces laissées par les protéines apparaîtront.

4. Immerger enfin les bandes dans un 4ème bain avec la solution de transparisation. Retirer les dès qu’elles deviennent translucides.

5. Poser les bandes sur des plaques en verre et laisser sécher à l’air libre.

Fig.1 Bande d’acétates de cellulose Fig.2 Positionnement des bandes dans la cuve

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