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Annick CHAVAILLON

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Academic year: 2022

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Texte intégral

(1)

Annick CHAVAILLON

Colorations en gastro-entérologie

Connaître les colorants et leurs modalités d'utilisation

Connaitre leurs indications

(2)

Colorations

en endoscopie digestive

Annick Chavaillon Michel Greff

FMC – HGE 2006

Paris 18 et 19 mars 2006

Images:

classification de Paris

Bourgoin, Lyon, A. Tzanck

(3)

I

Colorants pour l’endoscopie

Non absorbés par les cellules

-indigocarmin

Absorbés par les cellules

-lugol

-bleu de méthylène -acide acétique

-violet de crésyl et crystal violet

(4)

Colorants souvent utilisés

Indigocarmin

- solution 0,2 à 0,5% (poudre) 5 à 10 ml - souligne le relief de la surface

Lugol

- solution 1,5 à 2,5% (Iode) 5 à 10 ml

- colore en brun le glycogène des cellules malpighiennes

- inconvénients : allergie à l’iode et spasmes douloureux

(5)
(6)

Coecum: adénome 0-IIa

« Laterally spreading type »

indigocarmin

(7)

(8)

Cancer œsophage 0-II c

lugol

(9)

Autres Colorants

Bleu de méthylène

- dilution 0,1 à 0,5% (poudre) 5 à 10 ml (entérocytes - nécrose - mucus)

- protocole peu pratique:

lavage préalable, rinçage abondant

Acide acétique

- solution 3% 5 à 10 ml

(contraste jonction OG)

(10)

Barrett sans dysplasie Bleu de méthylène

(11)

Barrett acide acétique

(12)

Colorants pour l’ endoscopie Zoom

Crystal violet ( violet de gentiane ) - solution 0,2 / 0,5 % 1 ml

- fixé sur cytoplasme : cellules cylindriques

Violet de crésyl

- solution 0, 02 % 1 ml

- fixé sur pole apical : cellules cylindriques

(13)

ADK colon 0-IIc zoom + crystal violet

(14)

II

Pourquoi colorer ?

Pour analyser toutes les lésions planes et peu visibles.

Pour détecter et classer les cancers digestifs superficiels et leurs

précurseurs

(15)

Les trois temps du diagnostic endoscopique

Detection d’une zone suspecte :

sans chromoscopie , recherche d’anomalies relief - couleur - micro-vaisseaux anormaux

Caracterisation de la zone suspecte : avec chromoscopie

classer dans le type 0 des lésions néoplasiques Decision du traitement :

abstention - resection endoscopique - chirurgie

(16)

0-I

0-II a 0-II b

0-II c 0-III

Classification de Paris

(17)

III

Comment colorer

Seringue + cathéter spray

Colorants en routine

accessibles dans la salle régulièrement renouvelés

Lugol – Indigocarmin - Acide acétique

Coloration focale

apres détection de la zone suspecte

(18)

IV

Coloration et traitement de l’image endoscopique

Réhaussement de structure : oui Index d’hémoglobine : non

Magnification : oui

zoom optique, électronique objectif « macro »

Narrow Band Imaging : ??

peut remplacer la chromoscopie

(19)

Réhaussement de structure

High

Low

OFF

indigocarmin

(20)

Cancer estomac 0-II b

Index de l’hémoglobine (I Hb) sans colorant

(21)

Jonction OG : zoom +indigocarmin

(22)

Jonction OG, Zoom +Acide acétique

(23)

Jonction OG – Zoom + NBI

(24)

V

Quand ne pas colorer

Si l’analyse du réseau vasculaire

superficiel en transparence est nécessaire

- vaisseaux palissadiques de l’œsophage - anomalies vasculaires des tumeurs

- angiomes

(25)

Jonction OG - vaisseaux palissadiques

(26)

吉田 修

Cancer oesophage m3

vaisseaux tortueux : NBI +Zoom

(27)

VI

Où et quand colorer?

Œsophage : Néoplasie et RGO

Jonction OG : Néoplasie et Barrett

métaplasie intestinale Estomac : Néoplasie et gastrites

métaplasie intestinale Grêle : Néoplasie et Gluten

Colon / rectum : Néoplasie et MICI

(28)

Oesophage

(29)

Cancer oesophage 0-IIb m1 lugol

(30)

Cancer œsophage 0-IIb m3

(31)

Cancer œsophage : 0-Is sm2 lugol

(32)

Jonction OG

et Barrett

(33)

Jonction OG et Barrett

Classifications Internationales

Reflux gastro-oesophagien

classification de Los Angeles stades A, B , C, D

Barrett

classification C & M

circonférentielle + maximum

(34)

Jonction OG et Barrett

L’analyse épithéliale Jonction déplacée et Barrett

Segments longs et circonférenciels

Segments courts non circonférentiels Analyse des types épithéliaux

Identification de la métaplasie

intestinale Identification des zones de dysplasie Jonction épithéliale en place

Segments ultra-courts de Barrett Adénocarcinome du cardia

(35)

Barrett long - NBI

(36)

Barrett long , digitation NBI

(37)

Types épithéliaux : Barrett (Zoom et NBI)

Fundique Cardial Intestinal

(38)

La dysplasie haut grade Zoom et NBI

(39)

Barrett court lugol

(40)

Barrett court acide acétique + zoom

(41)

Barrett ultra -court lugol

(42)

Barrett ultra court - Vx palissadiques sous la jonction épithéliale

(43)

Barrett ultra court NBI

Vx palissadiques sous la jonction épithéliale

(44)

Estomac

(45)

ADK antre 0-IIc

indigocarmin

(46)

ADK angulus 0-IIc

indigocarmin

(47)

(48)

Ulcération aphtoide de l’antre

indigocarmin

(49)

Grêle

(50)

Muqueuse duodénale normale

indigocarmin

(51)

Maladie coeliaque

indigocarmin

(52)

Micro adénomes du duodénum ( PAF )

NBI

(53)

Colon / rectum

néoplasie

(54)

Adénome déprimé 0-IIa

indigocarmin

(55)

Adénome déprimé 0 - IIa Dysplasie HG indigocarmin

(56)

ADK sigmoide : 0-IIa

« laterally spreading type » indigocarmin

(57)

ADK colon 0-II a

indigocarmin

(58)
(59)

ADK Colon 0-II c

indigocarmin

(60)

ADK sigmoide 0-IIa + IIc

indigocarmin

(61)

ADK rectum 0-IIc + IIa

indigocarmin

(62)

Colon/ rectum

Surveillance des PAF opérées

(63)

Adénomes rectum : après colectomie

indigocarmin

(64)

Hyperplasie lymphoide

réservoir iléal

indigocarmin

(65)

Adénomes

réservoir iléal

indigocarmin

(66)

Adénome déprimé réservoir iléal indigocarmin

(67)

Colon/ rectum

maladies inflammatoires indigocarmin

bleu de methylène

NBI

(68)

Ulcération inflammatoire du Colon

indigocarmin

(69)

Muqueuse en voie de cicatrisation RCH cicatrisation

NBI

(70)

Neoplasie bénigne sur RCH active

(71)

Références

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