le BABA de la reproduction bovine

(1)

Professeur honoraire Ch. Hanzen

Université de Liège

Faculté de Médecine Vétérinaire

Courriel :

Christian.hanzen@uliege.be

Publications :

http://orbi.ulg.ac.be/

Facebook :

https://www.facebook.com/Theriogenologie

Institut vétérinaire de Blida

15 avril 2018

(2)

V1

Naissance

Veau

_Veau

Lait

Vn

V3

V2

Réf

Période d’attente : entre la naissance ou le vêlage et la 1

ère

_{insémination}

Période de reproduction : entre la 1

ère

_{et dernière insémination}

Période de gestation : entre la dernière ins et le vêlage

Période de lactation

Période de

tarissement

(3)

1. Le raisonnement clinique : un principe de base pour faire un diagnostic

2. Quelques rappels d’anatomie et de physiologie pour mieux

comprendre la suite

3. Apprendre à définir et à quantifier un problème de reproduction

4. Faire un examen clinique systématique et complet

5. L’insémination artificielle : quand et comment ?

6. La palpation et le constat de gestation

7. L’échographie c’est quoi et pour quoi faire ?

8. La parturition : une étape clé de la reproduction

9. Les pathologies du postpartum : l’essentiel pour définir et traiter

Un petit plan pour nous y retrouver

(4)

(5)

Définir et quantifier le problème

Générer des hypothèses diagnostiques

Acquérir des données/informations

Examens cliniques : signes Sélectionner des hypothèses diagnostiques Examens complémentaires Diagnostic final 1 2 3 4 Anamnèse : données zootechniques 5

Le raisonnement clinique

en cinq étapes

(6)

2. Commençons par l’anatomie et la

physiologie

(7)

Cornes utérines (Lg 40 cm) Ovaires (Lg 4 cm) Corps utérin (Lg 3 cm) Col utérin (Lg 10 cm Oviductes (LG 30 cm) Anatomie du TG de la vache Cavité vaginale (Lg 30 cm) Cavité vulvaire (Lg 10 cm)

Ø < 5 cm

IA

(8)

Zones spécialisées caroncules Synthèse de PGF2a Parturition (3 phases) Synthèse de phospholipides

(9)

• Non cavitaires : < 2 mm

• Cavitaires : 2 to 25 mm

• Contient l’ovocyte

• Hormone : oestradiol

L’ovaire : deux types de structures

• Hémorragique

• De dioestrus

• Atrétique

• Cavitaire

• Hormone: progesterone

(10)

Follicules non cavitaires : non visibles à l’échographie (< 2 mm) Follicules cavitaires visibles à l’échographie (> 2 mm) 1 1 2 2 3 3 4 4

(11)

Lutéinisation

Rupture vasculaire et caillot

Mélange des cellules de la granuleuse et de la thèque interne

Ocytocine

Granuleuse : grandes cellules lutéales (LLC)

Progestérone Thèque interne : petites cellules lutéales (SLC) Progestérone Relaxine

(12)

mm 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 Réserve folliculaire Follicules recrutés Follicule préovulatoire Follicule dominant

La population folliculaire

Follicules sélectionnés

La dynamique folliculaire : les groupes de follicules et leur devenir

Atrésie

20

Ovulation

Kyste

(13)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 0 0 -1 -2 -3 2 9 8 7 6 5 4 3 17 10 16 15 14 12 12 11 18 20 19 mm

Follicules recrutés Follicule dominant (> 8 à 10 mm)

Follicule en atrésie

Metoestrus _Dioestrus

Ovulation

Réserve folliculaire

Emergence des deux vagues Stade de la déviation

Oestrus Prooestrus

Oestrus

CJ hémorragique CJ de dioestrus

(14)

Hypothalamus

(15)

Relations hormonales entre hypothalamus-hypophyse-ovaire

HYPOTHALAMUS HYPOPHYSE ANTERIEURE OVAIRE Negative feedback control of P4 on LH Oestrogènes LH FSH Progesterone GnRH Negative feedback control of oestradiol on FSH Ovulation Croissance folliculaire (FD) Maturation ovocytaire Croissance folliculaire

(16)

Le cycle oestral de la vache : 21 jours (18 to 24)

0 6 18 21 _jours

Phase progestéronique Phase oestrogénique

MP

Oestrus 15 h Metoestrus

6 jours Dioestrus12 jours

Prooestrus 3 jours Oestrus

(17)

La régulation hormonale du cycle sexuel chez la vache

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 0 0 -1 -2 -3 2 9 8 7 6 5 4 3 17 10 16 15 14 12 12 11 18 20 19 mm

FSH Oestrogènes Inhibine LH Progestérone PGF2a

(18)

Début oestrus Pic de LH Fin oestrus Ovulation Chute de P4 Montée oestradiol 3 h à 9 h 3 _{27 heures} 4 2 30 heures

Capacité de fertilisation des spz : 24h

Fécondance ovocyte : 6 à 12 h postovulation Remontée des spz : 6 à 8 h

Timing oestrus – IA - ovulation

75 à 80 h

1

5 à 15 h

Moment optimal d’IA :

(19)

V1 : 24 mois

Naissance _{Puberté 12 mois}

1ère _{IA : 14 mois} Début de la gestation Période d’anoestrus physiologique Période d’attente Période de reproduction Période d’anoestus physiologique

Les périodes de cyclicité de la génisse

(20)

Vêl : 12 mois Vêlage 15d : dairy cows 30d : beef cows 1ére IA: 50- 60 j Début de la Gestation : 90j Période d’anoestrus physiologique Période de reproduction Période d’anoestrus physiologique Période d’anoestrus fonctionnel Période d’ attente

(21)

3. Apprendre à définir et à quantifier

un problème de reproduction

(22)

V1

Naissance

Veau

_Veau

Lait

La vache : un outil de production

Vn

V3

V2

Réf

Période d’attente : entre la naissance ou le vêlage et la 1

ère

_IA

Période de reproduction : entre la 1

ère

_{et dernière IA}

Période de lactation

Période de

tarissement

Période de gestation : entre la dernière ins et le vêlage

(23)

V1

Naissance

V2

V3

Vn

Réf

Fécondité : temps nécessaire pour obtenir une gestation ou un vêlage

NIF NV1 VI F VV Objectifs NIF : 15 mois NV1 : 24 mois VIF : 85 J VV : 365 jours Fertilité : n d’ins pour obtenir une gestation ou un vêlage

Objectif

< 3 inséminations

(24)

Identité : 13 PN Holstein Dte-nais 22/10/1992 NL : 1 17/10/1994 (288 j ia) Vêl:dystocique Veau mâle Veau < 50 Kgs 42 Expulsion ar-fx 25/10/1994 ( 8 j vel) Prod.mens.lait 20,0/4,17/3,73 Taux cell/1000 20 28/11/1994 ( 42 j vel) Chal:monte act

Prod.mens.lait 23,4/4,30/3,04

18/12/1994 ( 62 j vel) Chal:monte act

19/12/1994 ( 63 j vel) IA (corps) SHINE Chal:écoul.sang

28/12/1994 ( 72 j vel) ( 9 j ia) Prod.mens.lait 20,4/4,45/3,15

7/01/1995 ( 82 j vel) ( 19 j ia) Chal:monte act

Follicule >=1cm D

IA (corne D.) SHINE

30/01/1995 (105 j vel) ( 23 j ia) Prod.mens.lait 23,0/4,66/3,25

21/02/1995 (127 j vel) ( 45 j ia) Echographe +

Embonpoint 3.5

21/03/1995 (155 j vel) ( 73 j ia) Fouiller +

26/04/1995 (191 j vel) (109 j ia) Prod.mens.lait 19,4/4,73/3,41

20/08/1995 (307 j vel) (225 j ia) Tarissement ORBENIN

Prod. tot. Lait 5703

La période d’attente de cette vache est de 42 jours

Q8

(25)

19/12/1994 ( 63 j vel) IA (corps) SHINE

Chal:écoul.sang

Follicule >=1cm D

IA (corne D.) SHINE

Embonpoint 3.5

Cette vache est féconde

Q9

Vrai

Faux

Echographie +

(26)

19/12/1994 ( 63 j vel) IA (corps) SHINE

Chal:écoul.sang

Follicule >=1cm D

IA (corne D.) SHINE

Embonpoint 3.5

La période de reproduction de cette vache est de 40 J

Q10

Vrai

Faux

Echographie +

(27)

Période d’attente Tarissement Fin de la gestation Période de transition RP Métrite FL Acét Boiteries Période de reproduction 0 10 20 60 90 20

Endométrite clinique / subclinique

BEN Anoestrus RIU 30 Infertilité Dyst DC Mammites IA F

Quoi influence quoi ?

(28)

C’est quoi un problème de reproduction ?

1. La rétention placentaire

2. La métrite puerpérale

3. L’endométrite clinique

4. La détection des chaleurs

5. L’infertilité

6. L’absence de manifestation des chaleurs

7. Le kyste ovarien

8. L’anoestrus pathologique du postpartum

9. L’infécondité

Mais un « problème » qui n’est

ni

défini

ni

quantifiable

n’est pas

(29)

Quel est LE paramètre qui, dans un troupeau de vaches, vous semble le plus pertinent pour exprimer la présence d’un problème de reproduction au sens le plus général du terme ? (Par paramètre, on entend une variable quantifiable cad que l’on peut exprimer de manière numérique)

1. Le % de rétention placentaire

2. La période d’attente (J)

3. Le % d’endométrites cliniques

4. Le % de gestation en 1

ère

_{insémination}

5. La période de reproduction (J)

6. L’intervalle moyen entre vêlages (J)

7. L’intervalle entre le vêlage et l’insémination fécondante (J)

8. Le SC moyen des vaches au pic de lactation

(30)

Définir cad savoir de quoi on parle

L’infertilité

L’infécondité

X

Est qualifiée d’infertile toute

femelle inséminée plus de 2

fois, que les inséminations

subséquentes à la deuxième

aient été ou non suivies de

gestation

Temps nécessaire à

l’obtention d’une gestation

(ou d’un vêlage) :

Génisses : NIF et NV1

Vaches : VIF et IV

(31)

Evaluation de la fécondité de l’année 2017 par le calcul de

l’intervalle de vêlage

N° J du bilan 1 3423 V 3 2589 V V 4 1278 V V 2 5412 V V 4 7941 V V 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018 1 3423 3 2589 4 1278 2 5412 4 7941 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018 NL

(32)

Evaluation de la fécondité de l’année 2017 par le calcul de

l’intervalle de vêlage

1 3423 IF V 3 2589 V IF V 4 1278 V IF V 2 5412 V IF V 4 7941 V IF V 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018

Période de gestation Périodes d’attente et de reproduction

Observations

- Les périodes d’attente et de reproduction concernent plus 2016 que 2017 - La vache primipare n’est pas prise en considération

- L’IV calculé a une valeur rétrospective

(33)

Evaluation de la fécondité de l’année 2017 par le calcul de l’intervalle entre le vêl et l’ins fécondante ou la dernière ins (si la vache a été réformée non ou si l’on

suppose que la dernière ins est supposée fécondante

5 6690 V DI R 1 4510 V IF 4 9641 V IF 2 3490 V IF 4 1893 V DI 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018

Périodes d’attente et de reproduction

Période de gestation

Observations

- Les périodes d’attente et de reproduction concernent plus 2017 que 2016 - La vache primipare est prise en considération

- Le VIF calculé a une valeur prospective

- Le VIF reflète bien les performances de 2017

Collecte des dates d’insémination fécondante ou de la dernière insémination de 2017 et des vêlages précédents observés ou non en 2017

(34)

Comparaison des IV et du VIF/DIA

5 6690 V DI R 1 4510 V IF 4 9641 V IF 2 3490 V IF 4 1893 V DI 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018

Périodes d’attente et de reproduction Période de gestation

1 3423 IF V 3 2589 V IF V 4 1278 V IF V 2 5412 V IF V 4 7941 V IF V 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018

Intervalles entre les IF/DIA de 2017 et les vêlages précédents Intervalles entre les vêlage de 2017 et les précédents

(35)

Evolution de la fécondité dans le troupeau : Comparaison des IV et du VIF/DIA

Périodes d’attente et de reproduction Période de gestation

Intervalle entre les IF/DIA de 2017 et les vêlages précédents : 150 jours Intervalle entre le vêlages de 2017 et les précédents : 390 jours

1 3423 IF V 3 2589 V IF V 450 4 1278 V IF V 365 2 5412 V IF V 420 4 7941 V IF V 330 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018 ₃₉₀ 5 6690 V DI R 90 1 4510 V IF 180 4 9641 V IF 150 2 3490 V IF 90 4 1893 V DI 240 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1 2 3 2016 2017 2018 150

(36)

Etape 1 : quantification des performances

Etape 2 : comparaison des valeurs

observées avec des valeurs de référence

A distinguer : objectif, moyenne et seuil

Elevages laitiers wallons

(Chapaux et Hanzen 2013) IV VIF PA PR

Valeur objectif (physiologique) 365 85 60 25

Valeur moyenne des troupeaux (3125) 409 127 89 38

Valeur seuil des troupeaux (TOP 25 %) 387 106 80 26

Valeur moyenne des vaches (107.770) 409 127 89 38

Valeur seuil des vaches (TOP 25 %) 346 67 64 3

Elevages laitiers algériens VIF PA PR

Valeur moyenne des vaches 151 109 42 Kalem 2018 (5625 vaches) Valeur moyenne des vaches 194 134 60 Souames 2014 (1054 vaches)

(37)

Etape 3 : caractérisation de la gravité du problème (ou non)

Etape 4 : la formulation d’hypothèses bien définies

Valeurs différentes selon

spéculation, environnement, production laitière …

Etape 5 : la collecte de données cliniques, zootechniques (PL,

ingestion alimentaire), thérapeutiques … selon les méthodes

propédeutiques adaptées

Etape 6 : la quantification de ces données cliniques

Etape 7 : l’analyse des relations possibles entre le problème et

les hypothèses (OR, courbes de survie…)

(38)

4. Les points clés de l’examen clinique

pour identifier un problème de

(39)

(1) L’animal est-il gestant et

(2) le cas échéant quel est son stade de gestation ?

(3) Si l’animal n’est pas gestant, est-il cyclé et

(4) le cas échéant à quel stade du cycle se trouve-t-il ?

(5) Si l’animal n’est ni gestant ni cyclé, quelles peuvent

en être les raisons ?

(40)

Quelles seraient la ou les justifications

de ces outils propédeutiques ?

(41)

Une température >39,5°C témoigne

d’un état d’hyperthermie

(42)

THI

Valeur normale < 72

22,2 23,3 24,4 25,6 26,7 27,8 28,9 30,0 31,1 32,2 33,3 34,4 35,6 36,7 37,8 38,9 40,0 41,1 42,2 43,3

(43)

(44)

La palpation des ovaires

La préhension des ovaires entre deux doigts On palpe avec le pouce On évalue et on compare la

taille des ovaires Le plus gros est le

plus susceptible de porter

une structure

fonctionnelle _{On évalue la consistance} régulière ou irrégulière de la

surface des ovaires

On évalue la taille de la structure ovarienne Follicule : > 1cm, Corps jaune hémorragique : 1 à

2 cm, Corps jaune : > 2 cm, Kyste : > 2,5 cm On évalue la consistance en surface de la structure et son caractère dépressible ou non

(45)

Noix

Prune

Noisette

Noyau de prune

15 / 10 mm 20 / 15 mm 40 / 30 mm 35 / 30 mm S granuleuse S lisse On évalue et on compare la taille des ovaires

(46)

Surface lisse, Surface granuleuse

La palpation des ovaires

1

3 2

- Ovaires petits et lisses

- Absence de recrutement/croissance folliculaire

- Etat d’anoestrus de type 1 si bilatéral

- Ovaires granuleux

- Absence de croissance folliculaire jusqu’au stade de dominance

- Etat d’anoestrus de type 1 si bilatéral

F - Croissance jusqu’au stade de

dominance mais pas d’ovulation - Follicule palpable (> 1 cm)

- Etat d’anoestrus de type 2 si ovaire contralatéral granuleux ou lisse

Photos Manuel Fernandez Sanchez, Ceva Santé Animale

(47)

CJ CJH _CJ CJH CJc 7 5 4 ₆ 9 8 - CJ hemorragique (< 2 cm) - Intra et extracavitaire (4) ou intracavitaire (5) - Metoestrus (6J)

- Non réceptif à la PGF2a

- CJ de dioestrus (>=2 cm) - Sensible à la PGF2a

- Intra et extracavitaire (6) ou intracavitaire (7)

- Zone lisse et ferme

- Bouchon de champagne(5) - CJ cavitaire - (50 % des cas) - Idem CJ de dioestrus - Constat échographique

Photos Manuel Fernandez Sanchez, Ceva Santé Animale

(48)

10 KF KFL 11 Kyste folliculaire - Diamètre > 24 mm (31 ± 4 mm à 33 ± 7 mm) - Paroi < 3mm (Gascon et Hanzen)

Kyste folliculaire lutéinisé

- Diamètre > 24 mm (35 ± 7 mm à 39 ± 9 mm) - Paroi 3 à 9 mm - Cavité 24 à 49 mm (Gascon et Hanzen) Photos Hanzen

(49)

Paramètres de palpation du vagin et de l’utérus

Vagin Col Distension Diamètre Position Cornes Consistance Oui/Non < 5, 5 à 10, > 10 cm

Pelvienne, pubienne, abdominale

Flasque, Ferme, Tonique

Diamètre Symétrie Oui/Non < 5, 5 à 10, > 10 cm Ecoulement Présence Nature Oui/Non M, MS, MF, MP, P

Artère utérine Thrill Oui/Non

(50)

(51)

PA Naiss PR GEST Dépistage anoestrus 14 mois Diagnostic précoce 25-35

Examen des infertiles

Diagnostic tardif 50-80 Suivi néonatalogique Suivi croissance Suivi vaccinations Suivi antiparasitaire

(52)

GEST PA GEST Involution TAR Contrôle d’involution 20 à 50 jours Dépistage anoestrus 50-60 Diagnostic précoce 25-60

Examen des infertiles

Suivis thérapeutiques individuels FV, RP, MA , DC Diagnostic tardif 60-80 Transition V Santé mammaire PR

(53)

5. L’insémination artificielle : quand

et comment ?

(54)

0,0

10,0

20,0

30,0

40,0

50,0

60,0

70,0

Holstein Montbéliarde Normande Autres (1) Charolaise Limousine Blonde

d'Aquitaine Autres (2)

DATA 2010 : http://www.unceia.fr/upload/1_2_2208.pdf Génisses laitières : 34,9 % (44,2 % en 2009)

Vaches laitières : 60,1 % (59 % en 2009) (UNCEIA) Génisses à viande : 25 %

(55)

(56)

(57)

(58)

Un sperme de qualité : conservation et conditionnement

• Milieux de dilution (8 à 10 milliards par éjaculat)

– lait (isotonicité, apports énergétiques) ,

– jaune d’œuf (protection des spermatozoïdes) (absence de Salmonella) , – antibiotiques (streptomycine, pénicilline, lincomycine, spectinomycine) – glycérol (congélation)

• Conditionnement : les paillettes

– 133 mm de long

– volume de 1.2 ml : grosse paillette – volume de 0.5 ml : paillette moyenne

– volume de 0.25 ml : minipaillette (10 à 12 millions de spz)

(59)

Prof. Ch. Hanzen

-L’insémination artificielle chez les ruminants

(60)

(61)

Année 2010-2011 Prof. Ch. Hanzen -L’insémination artificielle chez les ruminants

A l’endroit anatomique approprié

• Insémination artificielle

– via un spéculum

– « transrectale »

• Insémination artificielle

– au niveau du corps utérin

– au niveau de la corne ispilatérale

– Insémination profonde (U.Gent)

(62)

(63)

Il y a des pertes

(par comparaison à la saillie naturelle, une paillette de sperme renferme 10 millions de spermatozoïdes)

1010

spermatozoa (saillie)

<108

(64)

(65)

Oestrus 15h Ovulation 15h Day 11-13 trophoblastine GnRH LH _{AI time} Oocyte class 1 Embryo class 1 PGF2a Oestr

(66)

Il faut adapter la politique d’IA à la qualité de la détection des

chaleurs de l’éleveur

– Si détection optimale du début de la détection : AM-PM

– Si qualité de la détection insuffisante : IA 4 à 12 h après la

détection

(67)

Maatje et al. J.Dairy Sci., 1997, 80,1098-1105 Optimal time of insemination in cows that show visual signs of oestrus by estimating onset of oestrus with pedometers. (171 IA sur 121 vaches)

Le mieux : 12 heures

après la détection

(68)

Les étapes de l’insémination

Avant l'insémination

Confirmer une période d'attente de plus de 50-60 jours Inséminer à la 1ère chaleur vue après 50 à 60 jours

Confirmer un intervalle de 18 à 24 jours / chaleur précédente Confirmer l'état oestral de l'animal

Mucus abondant et filant

Follicule palpable sur l'ovaire (13 à 20 mm) Consistance tonique des cornes

Confirmer l'absence d'endométrite clinique Confirmer l'absence de gestation

Confirmer un score corporel compris entre 2,5 et 3,5 Monter le pistolet d'insémination

Sortir la paillette du canister

Secouer la paillette pour éliminer l'N liquide

Plonger la paillette et l’agiter pendant 30 secondes dans eau 34 – 37 ° C Frotter le pistolet d’insémination pour le réchauffer

Sortir la paillette de l'eau et l'essuyer

Insérer la paillette dans le pistolet par le côté avec les deux bouchons Couper transversalement l'extrémité de la paillette

Placer la gaine plastique sur le pistolet en insérant l'extrémité de la paillette dans son bouchon Tester la présence de sperme en expulsant une goutte

(69)

Les étapes de l’insémination

Pendant l'insémination

Utilisez un nouveau gant pour chaque insémination Lubrifiez le gant avec un gel

Etablir le contact avec l'animal (en lui parlant, en le touchant) Masser l'anus avec l'extrémité des doigts

Introduction la main dans l'anus en formant un cône avec les doigts Vider le rectum de ses matières fécales

Nettoyer la vulve et la partie inférieure du bras Entrouvrir la vulve

Tendre le col vers l'avant pour faciliter le passage du pistolet jusqu'au col Placer l'extrémité du pistolet sur l'ouverture du col

Mobiliser le col (haut/bas et G/D) tout en maintenant une pression sur le pistolet Une fois le pistolet dans le col, perforer le chemise

Identifier l'extrémité du col au niveau du corps (ou de la corne) utérin Expulser le sperme lentement

Retirer le pistolet d'insémination

Vérifier l'absence de traces de pus sur le pistolet Après l'insémination

(70)

(71)

(72)

(73)

(74)

(75)

Col pelvien

<J70

Col pubien

J70 à J120

Col abdominal

> J120

Position du col

plancher

(76)

4,5 et 6

ème

_mois

Abdominale basse

Liquides = solides

7,8 et 9

ème

_mois

Abdominale haute

Solides > liquides

Foetus

plancher rectum

Position de l’utérus

(77)

Evolution of the diameter of the placentomes (cm)

Lopez Gatius 2008

Easy palpation of the placentomes

(78)

Evolution du diamètre de l’artère utérine (mm)

Thrill très

perceptible

(79)

Ada pt é de Manue l Fe rna n de z Sanche z, Ce va Sant é Ani male

(80)

(81)

7. L’échographie : c’est quoi

et pour quoi faire

(82)

Sonde Echographe Animal Vétérinaire Ecran In Descoteaux et al. 2010

Cerveau et donc connaissances et

raisonnement pour l’analyse des images

Technique et donc choix de l’investissement

(83)

Sonde

Ultrasons

Captés

Emet

Structure

Echos

Ecran

Image

Analyse

Echographe

Animal

Vétérinaire

Linéaire, endorectale classique en pratique des grands animaux - 5 MHz

- 3 à 7,5 MHz Sectorielle

(84)

L’échogénicité tissulaire

Hyperéchogène

Isoéchogène

Hypoéchogène

Anéchogène

Os

Cartilages Calculs Gaz

Homogène si pas de particules

Non Homogène si particules (pus, débris…) Liquides

(85)

Savoir regarder une image échographique

2

1

5

3

4 Etape 1 = Regarder l’échelle

Etape 2 = distinguer les échogénicités tissulaires

Anéchogène homogène

Hyperechogène

(86)

(87)

In Descoteaux et al. 2010

(88)

PM Champs d’application US

+ Examen vaginal : pneumovagin + + Examen vaginal : mucocolpos +

+ Position du col

-+ Diamètre du col +

+ Position des cornes -+ Diamètre des cornes +

- Mesure de l’épaisseur de la paroi + - Quantification des contractions + - Evaluation de l’échostructure de la paroi + - Identification du mucus dans la lumière utérine + + Consistance des cornes -+ Réactions inflammatoires des cornes (adh, bride, cic) -- Identification des endométrites du 2ème degré ++ + Diagnostic différentiel du pyomètre ++ + Mucomètre utérin (WHD)/Pseudogestation (petits ruminants) ++ + Identification d’un clapier (Péritonite fibrineuse pariétale) ++

Palpation transrectale vs échographie

(89)

+ Taille des ovaires ++ >1cm Identification des follicules cavitaires >2 mm

- Suivi d’une vague de croissance folliculaire + - Contrôle d’une superovulation (follicules en croissance) ++ + Mesure du diamètre du follicule lors de l’IA ++ + Identification d’un follicule lors de l’IA ++ - Evaluation de la conformation du follicule en œstrus ++ + Identification du corps jaune ++ + Confirmation de l’absence de corps jaune ++ - Identification du corps jaune cavitaire ++ + Dénombrement des corps jaunes après une superovulation ++ + Diagnostic des kystes ovariens (> 22-25 mm) ++ - Diagnostic différentiel entre KF et KFL ++ + Diagnostic des tumeurs ovariennes +

Palpation transrectale vs échographie

(90)

1

4

3

2

2. Contour du premier CJ

3. Contour du second corps jaune 1 . Limite approximative de l’ovaire

4. Follicules

(91)

3

2 ₄

5

1

6

7

2. Limite externe de la paroi du kyste folliculaire lutéinisé 3. Limite interne de la paroi du kyste folliculaire lutéinisé

4. Follicule 6. Fibrine

1 . Limite approximative de l’ovaire

5. Artéfact

7. Zone pubienne

(92)

3

2

1

2 : contour plus spécifique d’une partie de la corne

3 : limite de la cavité utérine : présence d’amas de pyocytes (pyomètre) 1 . Paroi du rectum

(93)

2 : contour plus spécifique d’une partie de la corne

3 : limite de la cavité utérine : présence d’amas de pyocytes (pyomètre) 1 . Paroi du rectum

2

3

1

(94)

+ (> 40 J Constat de gestation + (> 25 J) + Détermination du stade de gestation ++ (<90 J)

- Mesure des paramètres fœtaux de taille ++ - Détermination du sexe fœtal ++ > 50 J - Suivi de la fréquence cardiaque ++ - Détermination du nombre de fœtus (petits ruminants) ++ - Suivi de la croissance de la vésicule embryonnaire ++ + Mesure du diamètre de l’artère utérine ++ - ME : arrêt des battements cardiaques ++ - ME : dégénérescence de la vésicule embryonnaire/embryon ++ - Diagnostic des pseudogestations (chèvre) ++

Palpation transrectale vs échographie

(95)

La corne utérine n’est pas rectiligne Une seule vésicule mais 4 sections

(96)

Le constat échographique de gestation est une méthode plus sensible que spécifique. Son degré d’exactitude total est compris entre 85 et 97 %

(97)

3

4

1

5

2

2. Limite du tiers supérieur de la corne 3. Limite du tiers inférieur de la corne 4. Limite de la vésicule embryonnaire 5. Embryon (29 jours)

(98)

1 : limites de la corne utérine (coupe longitudinale) 2. Limites de la cavité allantoïdienne

4. Tête de l’embryon (43 jours) 3. Membrane amniotique

4

3

1

2

5

6

7

5. Membres antérieurs) 6. Thorax - abdomen 7. Membres postérieurs

(99)

1 : limites de la corne utérine

2. Limites de la vésicule embryonnaire

4. Tête de l’embryon (60 jours) 3. Membrane amniotique

3

4

1

2

3

5

6

5. Colonne cervicale

(100)

1 : limites de la corne utérine 2. Membrane amniotique

4. Estomacs

3. Limite du fœtus (80 jours)

2

5

1

3

4

5. Vertèbres thoraco-lombaires

(101)

1

3

2

4

1. Cavité amniotique 1 2. Cavité amniotique 2

(102)

1 . Placentomes à divers stades de gestation (30 à 60)

1

(103)

1

2. Placentomes (gestation 90 jours)

(104)

• The best : LCR (lenght crown-rump : base de la tête-base de la queue) • Fréquence cardiaque

• Longueur occipito-nasale • Diamètre de l’orbite

• Diamètre de l’abdomen (au niveau du rumen)

• Diamètre du cordon ombilical • Diamètre du sac amniotique • Diamètre bipariétal

• Diamètre thoracique

• Mesure des placentomes

• (Lawrence et al NZ Vet J 2016) • Hauteur du coeur

Paramètres d’estimation du stade de gestation

• 30 jours : battements cardiaques

• 35 jours : on distingue la tête du reste du corps

• 45 jours : on distingue les ébauches des membres

(105)

• Intérêts

– économique : commercialisation des « mâles »

– gestion des vêlages

– transfert d ’embryons (avortement des mâles)

• Principe

– J 55 à J 70 : identification du tubercule génital (TG (pénis et clitoris)

– > J 70-80 à < J120-130 : identification du scrotum ou glande

mammaire

– Descente testiculaire entre J 90 et J 130

– Glande mammaire : 0.6 à 3 mm entre J 80 et J 130

– > J 120-J 130 : difficile

(106)

J40 Non différencié J55 Mâle J55 Femelle 1. Cordon ombilical

2. Tubercule génital (pénis et clitoris) In Descoteaux et al. 2010

(107)

(108)

(109)

2. Tubercule génital et replis préputiaux 3. Scrotum _{4. Membres postérieurs}

1. Cordon ombilical

1

2

4

5

3

1

2

4 5. Membres antérieurs

(110)

8. La parturition, une étape clé de la

reproduction

L'obstétrique est la science de l'accouchement.

C’est aussi un art…

(111)

- 1 J si veau femelle et - 5 jours si gémellité

(112)

(113)

113

Myomètre

Contractions

Cervix

Progression du foetus

Expulsion

Mûrissement

Ramollissement

Réflexe de

Ferguson

Etirement

de l’utérus

Ocytocine

Ovaire

(vache, chèvre)

Placenta

(brebis)

Lutéolyse

Hypothalamus

Surrénales

Hypophyse

Contractions

abdominales

CRF/ Vasopressine

ACTH foetal

Corticoïdes

P4

_Oestrogènes

Relaxine lutéale

Prostaglandines

La cascade hormonale

(114)

(115)

115 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22

Stade 1

Stade 2

Stade 3

Vache Jument Brebis Truie

Durée des trois stades de la parturition (heures)

(116)

116

Œdème vulvaire

3 jours prepartum

Blonde d’Aquitaine

Dr Nicol JM - 12/11/07

http://www.vetofocus.com

Part stade 1

La phase dde

dilatation du col

(117)

117

La chute de la température (Signe de Ledenberger)

Espèce

Baisse de température

Délai ante-partum

(degrés Celcius)

(heures)

Chienne

0,5 à 1

24 à 48

Vache

0,2 à 1,5

18 à 36

Truie

0,5 à 1

24

Diminution moyenne de 0,3 +/- 0;5°C dans les 24 h prepartum.

Chute > 0,3°C chez 47% des vaches Sreyl D. et al.

Journal of Veterinary Science.

2010, 12, 177-185.

Peu de valeur prédictive de la chute de la T°A prendre au moins pendant 3 jours avant la date présumée

(118)

118

Part stade 2

La phase

d’expulsion

du foetus

(119)

(120)

(121)

121

Veau en présentation antérieure

Dr Nicol JM - 12/11/07

(122)

122

Stade 3 de la parturition 12 heures (24 h)

(123)

Vêlage (mouvements de la queue) COOPELSO (SmartVel) Vêlage (mouvements de la queue) ALB INNOVATION (AlertVel) T°

HAPPY FOALING (New deal ) : vulvaire T° MEDRIA (Vel Phone) : vaginal Vagin Queue Vulve Sangle

LA VACHE BIONIQUE D’AUJOURDHUI (Partie 2 : la détection du vêlage )

Contractions abdominales DATABELT (Agrimonitor) T° GENESDIFFUSION (Velbox) : vaginal Détection du vêlage (T°) COWSONWEB : vaginal

(124)

124

L’examen obstétrical : objectifs

1. Détermination de la présentation, position et posture fœtale

2. Détermination du degré d’ouverture du col

3. Détermination de la viabilité fœtale

4. Détermination du degré de développement fœtal

5. Identification de la cause de la dystocie

(dus : difficile, tokos : accouchement)

6. Choix d’une stratégie obstétricale

(125)

125

Présentations foetales

• Façon dont le foetus s’engage dans la filière pelvienne, elle

détermine l’orientation de la colonne vertébrale du fœtus

par rapport à celle de la mère

• Déterminée par la région du foetus qui se présente

– Longitudinale antérieure (ou crâniale): Vache : 95 %, Truie :

55 %

– Longitudinale postérieure (ou dorsale)

– Transversale (toujours dystocique)

• Dorso-lombaire : le dos se présente au détroit antérieur

• Sterno-abdominale

: le sternum se présente au détroit

(126)

126

= Façon dont le foetus s’engage dans la filière pelvienne, elle

détermine l’orientation de la colonne vertébrale du fœtus par

rapport à celle de la mère

= Rapport entre une partie du foetus et une zone du bassin

= Relation des extrémités du fœtus (tête, cou et membres)

avec son propre corps. Les extrémités peuvent être en

flexion, en extension ou retenus à droite, à gauche ou

en-dessous du fœtus.

Présentation (antérieure, postérieure et transversale)

Position (dorso-sacrée est la plus classique en

présentation antérieure)

(127)

(128)

128

Veau en présentation postérieure

Dr Nicol JM - 12/11/07

(129)

129

(130)

(131)

131

Détermination de l’ouverture cervicale

Schmitt D, De Meijer F Les dystocies chez la vache CD. Editions Med’Com

• Ouverture < 3 doigts :

vêlage non prévu dans

l’immédiat

• Ouverture de 8 à 12 cm

(poignet) : vêlage dans les

2 à 8 heures

• Ouverture de 12 à 16 cm

(on passe une main) : le

vêlage est proche

(132)

• Sera qualifié de

dystocique

toute parturition qui nécessite une

intervention manuelle (qu’elle soit chirurgicale ou non).

• Dans le cas contraire, la parturition sera qualifiée d’

eutocique

•

Classification des parturitions

•

_{I : Indéterminée}

•

_{N : Normale (sans intervention manuelle)}

•

_{TL : Traction légère}

•

_{TF : Traction forte}

•

_{C : Césarienne}

•

_{E : Embryotomie}

(133)

(134)

(135)

Les causes de césarienne (Une enquête européenne auprès

de 774 vétérinaires wallons, français suisses et hollandais)

(136)

Une césarienne en images

(Drs. Fourneau et Marquet Belgique)

• Anesthésie et asepsie

https://www.youtube.com/watch?v=WD_DsjwSBHw&feature=share

• Incision et extraction du veau

https://www.youtube.com/watch?v=8yY6lVqP-GQ

• Sutures

https://www.youtube.com/watch?v=M-QzkAnT02g&feature=share

(137)

9. Les pathologies du postpartum :

l’essentiel pour définir et traiter

(138)

(139)

139

Le puerpérium :

du vêlage à la

gestation

(140)

(141)

(142)

(143)

• expulsion du placenta = phase 3 of parturition

• = non expulsion du placenta dans les 24 heures

• La rétention placentaire est un processus inflammatoire

Photo Lopez-Gatius Lleda 2008

(144)

replis

Elmore 1996

L’involution utérine

= palpation d’une ou de deux cornes utérines plus de 30 jours après le

vêlage (30 à 50 jours)

(145)

145

Les infections utérines

Contamination = processus physiologique

Infection = processus pathologique

Increase of fertility

(146)

(147)

Métrite puerpérale/clinique

Endométrite clinique

Endométrite subclinique

(148)

148

Williams E. J., Fischer D. P., Pfeiffer D. U., England G. C. W., Noakes D. E., Dobson H.,

Sheldon I. M. Clinical evaluation of postpartum vaginal mucus reflects uterine bacterial infection and the immune response in cattle. Theriogenology, 2005,63,102-117.

(149)

149

Métricheck

Spéculum vaginal

(150)

150

Les prélèvements pour le diagnostic de l’endométrite subclinique

(151)

Kyste ovarien Fonctionnel Fonctionnel Physiolog. Pyometre PA : Période d’attente : 50 – 60 d ? J15 vache laitière J30 vache allaitante Pas de réponse à la GnRH Pas nécessairement de croissance folliculaire régulière avec ovulation et corps jaune Pas de détection par l’éleveur Pathologique Détection Détection Manifestation Manifestation Pas ou -de signes de chaleurs

Anormal

« Normal »

Pas de croissance

folliculaire régulière avec ovulation et corps jaune après la fin de la PA

(152)

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 60

Reprise des vagues de croissance folliculaire après le vêlage

chez une vache « normale »

(Voir Crowe et al. 2014, Peter et al. 2009).

Reprise pulsatilité FSH Apparition d’un FD (J5àJ10) Reprise pulsatilité LH

Ovulation si synthèse suffisante d’IGF1 donc d’oestradiol et donc de LH

Apparition du 1er_CJ

- Moins de P4 - Cycle plus court

Apparition du 2ème_CJ

- Plus de P4 - Cycle normal VEL

(153)

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 60

Reprise des vagues de croissance folliculaire après le vêlage

chez une vache en anoestrus de type 1

(Voir Crowe et al. 2014, Peter et al. 2009)

TYPE 1

: absence de développement du follicule jusqu’à stade dominant

Ovaires granuleux voire lisses à la palpation Follicules < 9 mm à l’échographie BCS < 2 Manque de LH et de FSH

(154)

Reprise des vagues de croissance folliculaire après le vêlage

chez une vache en anoestrus de type 2

(Voir Crowe et al. 2014, Peter et al. 2009)

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 60

TYPE 2

: le follicule poursuit sa croissance mais n’ovule pas

Ovaires granuleux et palpation

d’un FD

FD et recrutés

à l’échographie _{BCS 2-2,5}

(155)

Reprise des vagues de croissance folliculaire après le vêlage chez une

vache en anoestrus de type 3 (kyste)

(Voir Crowe et al. 2014, Peter et al. 2009)

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 60

TYPE 3

: le follicule n’ovule pas mais poursuit sa croissance et inhibe ou non les vagues de croissance ou se transforme en kyste folliculaire lutéinisé (KFL)

KFL KF Diamètre > 24 mm (35 à 39) Large cavité : 24 à 49 mm Paroi épaisse (3 to 9 mm) Moins aisément dépressible Diamètre > 24 mm (31 à 33)

Paroi mince < 3 mm Aisément dépressible

(156)

Reprise des vagues de croissance folliculaire après le vêlage chez une

vache en anoestrus de type 4 (pyomètre)

(Peter et al. 2009)

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 60

TYPE 4

: le follicule ovule et le CJ se développe mais la présence d’un pyomètre inhive la synthèse endométriale de PGF2a et le CJ persiste

PGF

X

Persistance et anoestrus

CJ

(157)

Ph. Bossaert Thèse de PhD U Gent 2010

La balance énergétique négative

postpartum

NEB prepartum

(158)

La période de transition : une phase à haut risque

Transition

alimentaire

Transition

immunitaire

Transition de

production

Augmentation

vs réduction

de l’ingestion

Diminution des

défenses

Lactation vs

tarissement

Les AGNE au

cœur du

système

(159)

159

L’infertilité

Est qualifiée d’infertile toute femelle inséminée plus de 2

fois, que les inséminations subséquentes à la deuxième

aient été ou non suivies de gestation.

(160)

IA 1

< 11 – 13 j 14 – 21 j

Gestation et vêlage après 275 à 290 j plus tard 50 %

Non fécondation 20 % Accouchement prématuré (260 -275) < 1 % Avortement (60-260 5 % ME tardive 10 % ME très précoce ME précoce 15 % Fécondation 80 % Période embryonnaire (J0 – J50-60) Période foetale (J50-60 au vêlage)

(161)

Le premier trimestre de la gestation,

un parcours semé d’embûches (Wiltbank et al. 2016)

Avant Fécondation J 1 à J7 J8 à J27 J28 à J60 J61 à J90 Non Fécond 15 à 30 % Mortalité embryonnaire très précoce 30 à 50 % Mortalité embryonnaire précoce J19 – J27 : 20 % Mortalité embryonnaire tardive 12 % Avortement précoce < 2 % Embryon Foetus

(162)

N° IA IDENT NL Date IA R 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 Ligne arbitraire de 50 % de réussite

(163)

N° IA IDENT NL Date IA R 1 316 1 7/01/2013 O 2 67 2 8/01/2013 O 3 105 1 9/01/2013 O 4 224 4 11/01/2013 O 5 31 2 12/01/2013 O 6 59 9 14/01/2013 N 7 295 2 21/01/2013 O 8 334 1 23/01/2013 O 9 349 1 24/01/2013 O 10 378 1 28/01/2013 O 11 228 11 29/01/2013 O 12 306 4 31/01/2013 N 13 215 2 1/02/2013 N 14 327 3 1/02/2013 N 15 59 9 5/02/2013 O 16 292 4 7/02/2013 O 17 83 4 8/02/2013 N 18 33 3 14/02/2013 N 19 213 5 22/02/2013 O 20 251 1 22/02/2013 O 21 286 5 23/02/2013 N 22 54 4 23/02/2013 O 23 124 1 23/02/2013 O 24 248 3 24/02/2013 N 25 5 1 25/02/2013 O 26 129 3 1/03/2013 N 27 227 1 1/03/2013 N 28 12 1 3/03/2013 N 29 68 2 3/03/2013 N 30 87 3 3/03/2013 N 31 269 3 3/03/2013 N 32 13 2 4/03/2013 N Soit 32 inséminations

sur une période de 56 jours

Premier bilan

17 IA fécondantes sur 32 Taux de gestation / IA : 53 %

(164)

N° IA IDENT NL Date IA R 2 67 2 8/01/2013 O 4 224 4 11/01/2013 O 5 31 2 12/01/2013 O 6 59 9 14/01/2013 N 7 295 2 21/01/2013 O 11 228 11 29/01/2013 O 12 306 4 31/01/2013 N 13 215 2 1/02/2013 N 14 327 3 1/02/2013 N 15 59 9 5/02/2013 O 16 292 4 7/02/2013 O 17 83 4 8/02/2013 N 18 33 3 14/02/2013 N 19 213 5 22/02/2013 O 22 54 4 23/02/2013 O 21 286 5 23/02/2013 N 24 248 3 24/02/2013 N 26 129 3 1/03/2013 N 29 68 2 3/03/2013 N 30 87 3 3/03/2013 N 31 269 3 3/03/2013 N 32 13 2 4/03/2013 N N° IA IDENT NL Date IA R 1 316 1 7/01/2013 O 3 105 1 9/01/2013 O 8 334 1 23/01/2013 O 9 349 1 24/01/2013 O 10 378 1 28/01/2013 O 20 251 1 22/02/2013 O 23 124 1 23/02/2013 O 25 5 1 25/02/2013 O 27 227 1 1/03/2013 N

28 12 1 3/03/2013 N _{Utilisation d’une feuille}

par sous groupe

d’animaux : génisses, primipares, pluripares ….. Taux de gestation / IA : 80 %

(165)

(166)

166

(167)

- Aucune preuve ne plaide en faveur de l’extraction manuelle du placenta.

- Une réduction du risque de métrite, une amélioration de la fertilité, une accélération de l'expulsion du placenta ou une augmentation de la production laitière n’ont jamais été démontrées suite à l'administration intra-utérine d'antibiotiques sous forme de solution ou de bolus (oblets IU) à des vaches présentant une rétention placentaire.

- L’antibiothérapie systémique est perçue comme un traitement bénéfique en cas de fièvre associée à la rétention placentaire. Le traitement systématique de tous les

animaux atteints de rétention placentaire avec du ceftiofur, n'apporte aucun avantage L’antibiothérapie générale peut toutefois être utile pour le traitement de la métrite post-partum aiguë. L'administration de ceftiofur par voie intra-musculaire pourrait contribuer à la prévention de l'apparition des métrites aigues sans toutefois modifier la fertilité. - Outre le fait que l’atonie ne soit pas un facteur déterminant important de la rétention placentaire, de nombreuses études ne plaident pas en faveur de l’utilisation de

(168)

168

Les infections utérines

Les métrites puerpérales/cliniques

- Pénicilline, ampicilline ou ceftiofur par voie générale (T°> 39,5°C)

- Instillation IUT de oxytétracycline, ampicilline ou cloxacillin

- Intérêt des AINS non démontrée

- Pas d’effet de la PGF2a ou de l’ocytocine

Les écoulements vaginaux (endométrites

cliniques)/Cervicites

- Injection d’une PGF2a si CJ et traitement IUT en oestrus.

- Instillation IUT de la cephapirine.

- Instillation IUT de 50—100 ml d’une solution à 2 % de

Polyvinypyrolidone iodée (Isobetadine à 10 % cad 100 mg

d’iode actif par ml)

(169)

169

Les infections utérines

Les endométrites subcliniques

- Pas de traitement spécifique

- Drainage de la cavité utérine au moyen de sérum physiologique

- Recours à la chemise lors de l’IA

- Instillation IUT de la cephapirine le lendemain de l’IA

Le pyomètre

- Injection d’une PGF2a si CJ et massage utérin en ostrus

pour extérioriser les sécrétions (à refaire au besoin après

10 jours)

- Instillation IUT de 100 à 200 ml d’une solution à 2 % de

Polyvinypyrolidone iodée (Isobetadine à 10 % cad 100 mg

d’iode actif par ml)

(170)

Objectif prioritaire :

-

inséminer le plus de génisses possible entre le 15

ème

_{et le 17}

ème

mois suivant la naissance

-

inséminer le plus de vaches possible entre le 50

ème

_{et le 80}

ème

_jour

du postpartum

Traitement de base : la prostaglandine F2a

Seule

En association

Anoestrus de détection

(Cas des animaux cyclés sur base

de la présence d’un CJ)

(171)

171 0 6 18 21 Progestérone Oestradiol F.S.H. L.H.

PGF2a

CJH

Effet lutéolytique si injection en présence d’un CJ de dioestrus A vérifier systématiquement (écho > palpation)

(172)

172

J 11 à J 14 J0

Approche de groupe : principe de la synchronisation

au moyen de deux injections de PGF2a

J 11 : génisses J 14 : vaches

(173)

173

Politiques d’insémination lors d’induction ou de synchronisation de

l’oestrus au moyen de la PGF2a

PGF2a

24 48 60 65 72 80 96

Génisses

24 48 60 72 75 84 96

Vaches

Systématique (simple/double)

Sur chaleurs observées

Heures

après l’injection de la PGF2a

A préférer si protocole de synchronisation

(174)

Différents protocoles

1 2 3 4 5 6

0 7 8 9

12 - 14

0

12

14 GnRH

Select synch

GnRH

10 Ovsynch

GnRH

Cosynch

GnRH

PGF2a

Presynch

(175)

Le protocole Ovsynch ou GPG

16 à 20 h GnRH 1 8 10 GnRH PGF2a IA Si < 7 jours effet

lutéolytique moins optimal

Si > 48 h moins bonne synchronisation de l ’ovulation Animaux cyclés Après injection de la GnRH - Induction ovulation si FD - Induction lutéinisation si FD Lutéolyse du CJ Lutéolyse du FD lutéinisé Induction ovulation

(176)

176

Protocole associant GnRH et PGF2a à un progestagène

Animaux cyclés

Implant/ PRID / CIDR : 7 jours

24 48 56 72 96

GnRH

PGF2a ???

Au retrait 24h ou 48 h avant

IA systématique

(177)

177

Traitement de base : les progestagènes

Anoestrus pathologique fonctionnel

(Cas des animaux non cyclés)

Prid Delta (CEVA)

CIDR (Zoetis)

(178)

(179)

179

(180)

Le système Cuemate (NZ)

(181)