SYNTHÈSE ET CONCLUSION

Le cycle gamétogénétique chez le saumon s'effectue en deux phases. Les ovogonies se développent d'abord en ovocytes jusqu'au stade de vitellogenèse primaire et constituent des ovocytes de recrutement. Au début d'une saison où le saumon va frayer, ces ovocytes, qui mesurent un peu plus d'un millimètre de diamètre, amorcent leur développement final qui mènera à la production d'ovules. Certains ovocytes dégénèrent cependant au cours de la saison et ne parviennent pas à terme. Ce phénomène, connu sous le nom d'atrésie, risque de biaiser une estimation de la fécondité effectuée avant le stade de maturation finale.

La principale cause de l'atrésie semble être le manque de nourriture. Plusieurs auteurs signalent ce phénomène mais ne le démontrent pas ou le font de façon mitigée. Comme le Saumon atlantique n'a généralement pas besoin de s'alimenter en rivière, il est logique de croire que l'atrésie ne diminue pas de façon appréciable le nombre d'ovocytes en développement. Cepen-dant, comme cela n'a pas été clairement démontré, il est préférable d'effectuer l'échantillonnage des gonades de saumon au début de l'automne, dans la mesure du possible.

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En plus de l'atrésie, la présence d'oeufs résiduels après la fraye risque de biaiser l'estimation du nombre d'oeufs déposés. La fraye artificielle permet d'extraire plus de 95% des ovules d'un saumon (Baum et Meister 1971). En milieu naturel, il demeure certainement des oeufs résiduels mais cette question n'est pas documentée. Il est donc probable que l'estimation de la fécondité à partir des gonades complètes surestime la fécondité et que l'estimation lors de la fraye artificielle est plus proche de la réalité. Cependant, en l'absence de données pertinentes, nous devons considérer ce biais comme négligeable.

Enfin, un dernier phénomène qui risquerait de surestimer le nombre d'oeufs déposés sur les frayères est la présence de saumons non reproducteurs en rivière. Toutefois, selon Dahl et Somme (1944), la grande majorité des saumons en rivière sont des reproducteurs.

Le dénombrement total manuel est certainement la méthode d'estimation de la fécondité la plus précise, mais requiert beaucoup de temps. Elle devrait donc être réservée aux travaux scientifi-ques nécessitant une grande précision, surtout si le nombre d'oeufs est important. Les autres méthodes recommandables sont basées sur l'échantillonnage. Elles diffèrent selon le matériel dont on dispose, soit des oeufs extraits de poissons vivants ou des gonades non matures.

En pisciculture, avec des oeufs vivants, la méthode de Burrows (1951b) par déplacement d'eau (4.6.3) est plus précise mais est relativement longue. L'échantillonnage gravimétrique (4.6.1) est plus rapide et aussi précis si les oeufs sont bien égouttés; cela en fait une méthode plus recommandable. La méthode de Von Bayer (1950) ne nécessite pas un égouttement parfait des oeufs car elle est basée sur le diamètre moyen. Cependant la faible précision de cette méthode la rend peu intéressante.

En ce qui concerne l'estimation de la fécondité à partir des ovaires non matures, la méthode la plus précise et la moins coûteuse en temps, est l'échantillonnage en poids (4.6.7). Celui-ci devrait être effectué sur des gonades fixées avec le fluide de Gilson. Contrairement aux autres méthodes, il n'est pas nécessaire de détacher et nettoyer tous les ovocytes, et le diamètre moyen de ceux-ci n'a pas besoin d'être estimé, ce qui augmente la précision de la méthode. Power (1969) recommande d'échantillonner au moins 10% des gonades et cet échantillon devrait être prélevé à différents endroits sur les deux gonades.

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DÉTERMINATION DU NOMBRE D'OVULES PAR FEMELLE