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Le faible succès de reproduction obtenu par les géniteurs de Landéda nous a

menés à une nouvelle sélection de géniteurs. Celle-ci a été effectuée sur des

individus ayant connu une meilleure croissance. En effet, les animaux avaient

un âge un peu plus avancé que précédemment et leur site de culture

privilégié est plus propice à leur croissance. Les géniteurs provenaient des

Iles Chausey, un des rares sites de production de la partie Nord de la France,

où la MAB n’a pas été recensée au cours des dernières années.

L’état physiologique pour une meilleure défense face à l’attaque de V. tapetis

est un critère pour la sélection des géniteurs. Ainsi, plusieurs paramètres

hémolymphatiques ont été analysés afin d’en isoler un ou plusieurs pour

permettre de discriminer les palourdes suivant leur état hémocytaires et de

faire des corrélations entre ces paramètres. Cependant, le nombre final de

tests biologiques sur les géniteurs devait être limité pour ne pas influer sur

leur maturation et leur survie.

Les tests ont été effectués sur des individus du même lot R que celui de

Landéda et d’un autre lot standard S. Les paramètres analysés concernent la

concentration et la viabilité des cellules de l’hémolymphe, l’activité

phagocytaire, la production de ROS et l’adhérence.

La limite d’hémolymphe prélevée était de 1000µl pour faire un maximum de

tests.

Cependant, la quantité d’hémolymphe n’a pas été suffisante pour tous les

individus et certains individus ne sont donc pas représentés dans certains

tests particulièrement pour la production de ROS.

Les analyses ont été effectuées au mois de juin pendant la période de

maturation des palourdes. Le sexe ratio a donc pu être déterminé sur les deux

lots. Il est proche de 1. La taille des palourdes est de l’ordre de 33.3 mm (+/-

0.8) pour le lot R et 36.8 mm (+/- 2.2) pour le lot S.

2-1 Résultats moyennés des paramètres hémocytaires pour les deux

lots R et S (Tab.7).

Tab 7 : Paramètres physiologique de l’hémolymphe des lots R et S. [THC] concentration totale en hémocytes cellules.ml-1, viabilité en % de cellules vivantes, Phago= activité phagocytaire en % de cellules phagocytaires, CNA : pourcentage de cellules non adhérées en EMSF et avec V. tapetis (Vt), ratio d’adhérence ; production de ROS entre les deux conditions EMSF et Vt en U. A. ns et s pour différence statistique non significative et significative à p<0.05.

Paramètre

hémocytaire Lot (PJ-06-10) Lot S (PJ-06-9)

THC x105 4,7 (+/- 0,9) 3,8 (+/- 0,7) ns Viab 97,0 (+/- 0,7) 96,3 (+/- 0,8) ns Phago 24,9 (+/- 5,0) 23,2 (+/- 4,4) ns %cell EM 4,3 (+/- 1,9) 6,9 (+/- 1,4) s %cell Vt 7,6 (+/- 2,5) 11,8 (+/- 2,3) s Ratio 2,7 (+/- 0,8) 1,9 (+/- 0,4) s ROS prod 102,6 (+/- 11,2) 111,5 (+/- 14,0) ns

Concentration hémocytaire

Aucune différence entre les deux lots n’a été observée avec une moyenne

générale de 4.3 10

5

(+/- 5.8 10

4

) hémocytes/ml.

Viabilité cellulaire

La viabilité est élevée, sa valeur générale est estimée à 96.6 % +/-0.6 de

cellules vivantes.

Nous n’obtenons pas de différence significative entre les lots. Cependant, une

variabilité plus importante est notée dans le lot standard.

Activité phagocytaire

Les valeurs moyennes des lots R et de S ne diffèrent pas statistiquement. La

moyenne générale donne 24% (+/-3.2) de cellules phagocytaires.

Production de ROS

Les valeurs moyennes des lots R et de S ne diffèrent pas statistiquement

avec une moyenne de 106 U.A (+/- 8.9).

Adhérence

Le pourcentage moyen de cellules non adhérentes (CNA) en contact avec

l’EMSF (état basal) montre une tendance plus faible pour le lot R que pour le

lot S (4.3 % +/-1.9 et 6.9% +/-1.4 respectivement). De plus, le pourcentage de

CNA augmente avec le contact du V. tapetis pour les deux lots R et S (7.6%

est obtenue pour les deux conditions EMSF et V. tapetis. De plus, les erreurs

standards sont fortes à cause de la variabilité interindividuelle dans chacune

des populations.

La valeur du ratio du lot R est plus forte que celui du lot S (2.7 et 1.9

respectivement).

2-2 Corrélations entre paramètres hémocytaires

Les moyennes de chaque paramètres n’étant pas significativement différents

entre les deux lots des analyses de corrélations entre paramètres et donc plus

au niveau individuel ont permis d’observer des différences entre les deux lots.

Les corrélations significatives (p<0.05) obtenues entre les paramètres

hémocytaires ne se retrouvent pas d’un lot à l’autre (Tab. 8). En effet, des

corrélations entre la THC et le pourcentage de CNA en EMSF et la production

de ROS observées dans le lot R n’existent pas dans le lot S. Inversement, le

ratio entre cellules non adhérées et la phagocytose ainsi que les

pourcentages de CNA en EMSF et en contact avec V. tapetis sont corrélés

dans le lot S et non corrélés dans le lot R. Cependant des corrélations

persistent au niveau des deux lots : Ratio-THC et Ratio-pourcentage cellules

non adhérées en EMSF.

D’autre part, la tendance observée pour la droite de régression entre la

phagocytose et le nombre de cellules non adhérées en EMSF est inversée

entre les deux lots. Elle est positive pour le lot R (0.36) et négative pour le lot

S (-0.38). Lorsque le nombre de CNA en EMSF augmente, la phagocytose

augmente pour le lot R mais elle diminue pour le lot S.

Tab.8: Coefficients de corrélation entre les paramètres hémocytaires pour les lots R et S. [THC] concentration totale en hémocytes cellules.ml-1, viabilité en % de cellules vivantes, Phago= activité phagocytaire en % de cellules phagocytaires, production de ROS entre les deux conditions EMSF et Vt en U. A, CNA : pourcentage de cellules non adhérées en EMSF et avec V. tapetis (Vt), ratio d’adhérence. * indique une corrélation significative pour P<0.05.

R

Viabilité CNA

EMSF CNA Vt Ratio Phago

ROS EMSF ROS Vt ROS production THC x105 0,38 (-)0,52 * (-)0,06 0,46 * (-)0,15 (-)0,75 * (-)0,40 0,54 * Viab (-)0,36 0,2 0,35 0,62* (-)0,55 (-)0,08 0,63 * CNA EMSF 0,27 (-)0,63 * 0,36 0,47 0,02 (-)0,43 CNA Vt 0,43 * 0,34 0,32 0,44 (-)0,35 Ratio 0,27 (-)0,27 (-)0,41 (-)0,09 Phago 0,22 0,36 (-)0,06 ROS EMSF 0,86 * (-)0,68 ROS Vt (-)0,42 S THC 0,29 (-)0,32 0,03 0,43* 0,31 (-)0,75 * (-)0,67 * 0,5 Viab (-)0,34 0,1 0,61* 0,26 (-)0,39 (-)0,32 0,18 CNA EMSF 0,71* (-)0,45* (-)0,38 0 (-)0,10 (-)0,26 CNA Vt 0,26 0,1 (-)0,22 (-)0,31 (-)0,25 Ratio 0,66* (-)0,41 (-)0,29 0,17 Phago (-)0,31 (-)0,33 (-)0,03 ROS EMSF 0,87 * (-)0,46 ROS Vt 0

2-3 Analyses multivariées des paramètres sur les deux lots de

Chausey

L’analyse multivariée en composante principale (ACP) a permis de distinguer,

pour plus de 59%, les deux lots R et S provenant de Chausey (Fig. 19). La

première composante explique 30.5% de la variabilité avec de fort poids des

variables : ratio d’adhérence, pourcentage de cellules décollées (CNA) et

phagocytose pour les deux lots. La deuxième composante explique 28.7% de

la variabilité entre les deux lots. De plus, la variable CNAemsf s’isole pour les

deux lots. Une régression multiple permet en plus de sélectionner les animaux

selon leur état physiologique expliqué par les paramètres hémocytaires

(Fig.20). Ainsi, les individus se distinguent en deux groupes grâce à l’équation

de la régression En effet, lorsque le CNAemsf est faible (<4% de cellules non

adhérées) la valeur de la composante est négative. Les animaux

correspondant à ces valeurs sont en état physiologiques de base bénéfique et

seront des géniteurs potentiels pour les croisements, à l’inverse de ceux se

situant dans le deuxième groupes (CNAemsf >4%).

Fig .19 : Analyse en composante principale sur les paramètres hémocytaires des deux

lots R (PJ-06-10) et S (PJ-06-9).Viab : viabilité des hémocytes ; THC : concentration

totale en hémocytes ; phago : activité de phagocytose ; CNA : pourcentage de cellules

non adhérées et emsf : eau de mer stérile et Vt : en contect à Vibrio tapetis.

Graphique des poids des variables

Composante 1

R_THC R_CNAemsf R_CNAVt R_ratio R_viab R_phago S_THC S_CNAemsf S_CNAVt S_ratio S_viab S_phago

-0,28 -0,08 0,12 0,32 0,52

-0,39

-0,19

0,01

0,21

0,41

0,61

Composante 1 (30.5%)

C

o

m

p

o

sa

n

te

2

(

2

7

.8

%

)

Fig. 20 : Régression multiple des individus du lot R (PJ-06-10 de Chausey).

Phago = -596,6 - 0,00001*THC + 3,8*CNAemsf -0,8*CNAVt + 4,4*ratio + 6,3*viab.

R

2

= 78.1%. Cercle orange : animaux en bon état de santé ; cercle bleu animaux en

état de santé dégradé.

En effet, la viabilité cellulaire est signe du bon état de santé des cellules de

l’hémolymphe. Dans notre étude, ses valeurs les plus élevées sont

négativement corrélées au pourcentage de cellules non adhérées en EMSF.

En effet, au dessus d’une viabilité de 97%, la majorité des individus montre un

pourcentage de cellules non adhérées inférieur à 4%.

Enfin, une phagocytose supérieure à 25% est liée à de faibles pourcentages

de cellules non adhérées en EMSF <4%.

Les résultats obtenus pour le lot S montrent les mêmes tendances que les

trois corrélations précédemment décrites pou le lot R. Par contre, le niveau du

pourcentage de cellules non adhérées en EMSF est supérieur à celui du lot R.

Sa limite est fixée à 6%.

Le pourcentage de cellules de l’hémolymphe non adhérées en EMSF semble

être un bon critère sur l’état de santé de base des palourdes. Le test

d’adhérence a donc été choisi pour sélectionner des nouveaux géniteurs qui

serviront lors des pontes contrôlées.

Graphique Composant+Résidu pour R_phago

R_CNAemsf

E

ff

e

t

d

u

c

o

m

p

o

s

a

n

t

0 2 4 6 8 10 12

-17

-7

3

13

23

3- Sélection de géniteurs par analyses de paramètres hémocytaires sur des