Précautions de prélèvement  Lors du positionnement du patient :

 Eviter la flexion forcée de la tête. Elle accroît la tension du ligament interépineux et rend la palpation de l’espace interépineux plus difficile.

 En cas de décubitus latéral, placer un oreiller sous la tête du patient, pour garder la colonne vertébrale dans le plan horizontal et assurer un meilleur confort au patient.

 Après asepsie à l’aide d’un antiseptique iodé (type Bétadine®), appliquer une solution à base d’alcool ou de chlorhexidine afin d’enlever la solution iodée. En effet, l’introduction par mégarde d’iode dans l’espace sous-arachnoïdien peut provoquer une arachnoïdite irritative.

109

AU T R E S LI Q U ID E S DE P ON C TI O N ^{[ 4 4 ]}

Les liquides de ponction traités dans ce paragraphe sont les liquides d’épanchement correspondant à une quantité anormale de liquide dans les séreuses, à savoir :

1. Liquide pleural ;

2. Liquide d’ascite ;

3. Liquide péricardique ;

4. Liquide articulaire ou synovial ;

5. Liquide de dialyse péritonéale (ou liquide péritonéal).

Les liquides d’épanchement peuvent avoir différents étiologies, il peut s’agir de :

 Transsudat purement mécanique (cirrhose, insuffisance cardiaque, syndrome néphrotique, etc.)

 Exsudat consécutif à une infection ou à un cancer.

Recommandations :

 Respecter les précautions d’asepsie rigoureuse au site de prélèvement, afin d’éviter toute contamination par la flore commensale cutanéo-muqueuse.

 Le mode de prélèvement doit permettre la survie des micro-organismes anaérobies : seringue sans bulle d’air bouchée stérilement et hermétiquement (≥ 3mL). ^[65]

 Un ensemencement direct dans des flacons d’hémoculture (milieux aérobie, anaérobie) au lit du malade est possible, notamment si le transport au laboratoire risque d’être différé. Dans ce cas renseigner sur les flacons d’hémoculture la nature du prélèvement.

 Indiquer les renseignements cliniques sur le bon de prélèvement : âge, présomption diagnostic, notion d’immunodépression, traitements anti-infectieux antérieurement reçus.

CONTRE-INDICATIONS D’UNE PONCTION LOMBAIRE :

 Hypertension intracrânienne

 Risque hémorragique

110

 Acheminer immédiatement au laboratoire (en moins de 30 minutes) à température ambiante.

8. P

:

14

Stroma : tissu conjonctif constituant 90% de la cornée et délimitée par deux épithéliums.

Matériel

 Ecouvillons stériles ; OU

 Spatule en platine de Kimura préalablement stérilisée, puis refroidie avant usage ; OU

 Vaccinostyle ;

 Pince ;

 Tube et/ou pot de prélèvement stérile ;

 Gants de soins ;

Technique

Conjonctive

 Frotter doucement la conjonctive inférieure, en partant de l’angle externe pour aboutir à l’angle interne de l’œil où l’on récupère la sécrétion.

Cornée

 Réaliser le prélèvement sous anesthésie locale.

 Gratter les lésions en profondeur, pour ramener du stroma¹⁴.

 Réaliser au moins deux prélèvements, un pour l’ensemencement et un pour l’examen direct.

 Pour les porteurs de lentilles de contact, il ne faut pas oublier de récupérer les lentilles et leur boîtier de conservation.

 Dans les parasitoses oculaires, en cas de présence de parasites visibles à l’œil nu (filaires adultes, larves de myiases) ; instiller un collyre anesthésique immobilisant les parasites, puis les enlevés, un à un à l’aide d’une pince dans un pot stérile.

 En cas de recherche de Demodex folliculorum, prélever à l’aide d’une pince, 8-10 cils répartis sur les paupières supérieures et inférieures dans un pot stérile.

111

EN D O P H T AL MI E S ^{[ 4 4 ] ; [ 7 0 ]}

Conservation et transport

Acheminer immédiatement la totalité du matériel au laboratoire. Si son exploitation est différée, décharger le matériel de prélèvement dans une goutte d’eau distillée stérile puis vortexer. La suspension obtenue peut être conservée 24 heures à 4°C.

Précautions de prélèvement

 Prélèvements réalisés avant tout traitement local ou général (antiseptique, anti-infectieux) et avant toute toilette oculaire depuis plusieurs heures. Dans le cas contraire, respecter une fenêtre thérapeutique d’au moins 24heures. ^[44]

 En cas de conjonctivite fongique, éviter l’usage de collyres anesthésiques avec conservateur, car ce dernier inhiberait la croissance des champignons.

Technique

Prélèvements endoculaires, réalisés sous anesthésie locale ou générale selon le cas du patient et dans des conditions d’asepsie rigoureuse.

Humeur aqueuse

 Par ponction de la chambre antérieure, à l’aide d’une aiguille calibrée de 25-27 ou 30G, montée sur une seringue à tuberculine.

 Aspirer 100 à 200µL d’humeur aqueuse.

Humeur vitrée ou vitré

 Par ponction vitréenne à l’aiguille 23G ou lors d’une vitrectomie.

 La ponction à l’aiguille permet habituellement d’aspirer 200 à 300µL d’humeur vitrée.

Conservation et transport

Il s’agit de prélèvements précieux, à acheminer immédiatement au laboratoire (en moins de 15minutes).

112

9. P

ORL

Précautions de prélèvement

 Chez les patients hyperalgique, une prémédication antalgique peut être envisagée.

 Lorsqu’une infection fongique est suspectée, réaliser les prélèvements au niveau des exsudats et des foyers inflammatoires.

 Lorsqu’une vitrectomie est pratiquée, il est nécessaire de filtrer la totalité du liquide vitréen sur membrane Millipore®.

Matériel

 Deux écouvillons stériles avec ou sans milieu de transport

 Compresses stériles

 Gants de soins

Technique

 Réaliser deux prélèvements par écouvillonnage : un pour l’examen direct et un 2ème pour la mise en culture.

 Frotter les écouvillons de façon appuyée sur la totalité de la surface lésionnelle.

 Les tubes des échantillons doivent être correctement identifiés. Préciser sur leur étiquette, en plus des renseignements identifiant le patient, le site d’écouvillonnage.

Conservation et transport

 Adresser le prélèvement immédiatement au laboratoire, en raison de la multiplication rapide de la flore commensale, sinon conserver à +4°C.

 Si l’examen est différé, utiliser des écouvillons avec milieu de transport.

 Pour les écouvillons sans milieu de transport, utiliser quelques gouttes d’eau salée à 0,9% au fond du tube pour éviter la dessiccation du prélèvement.

Précautions de prélèvement

 Pour une lésion linguale, maintenir la langue à l’aide d’une compresse stérile. En cas de sécheresse buccale, humecter délicatement la lésion par une compresse stérile imbibée d’eau stérile, avant le recueil de l’échantillon (afin d’éviter les faux négatifs).

113

10. E

L’expectoration est le moyen le plus simple d’analyse microbiologique des sécrétions trachéobronchiques. C’est le seul prélèvement respiratoire réalisé par le patient lui-même.

LA V A G E B R ON C H O-AL VE O L AI R E ^{[ 4 4 ] ;[ 7 1 ] ;[ 7 3 ]}

Le lavage broncho-alvéolaire (LBA) est un examen d’investigation majeur en pneumologie, indispensable dans l’approche des maladies infectieuses respiratoires. C’est l’une des principales techniques de prélèvements nécessitant la réalisation d’une fibroscopie bronchique.

Il s’agit d’un rinçage des lumières bronchiolaires et alvéolaires au cours d’une fibroscopie bronchique. ^[74]

éventuellement présents à l’aide d’un premier écouvillon en coton humide, puis réaliser deux écouvillonnages successifs. ^[44]

Matériel

 Pot de prélèvement stérile

 Gants de soins

Technique

 Rinçage préalable soigneux bucco-dentaire à l’eau distillée stérile.

 Induction de l’expectoration après effort de toux, ou de préférence par kinésithérapie.

 Recueil de l’échantillon dans un pot de prélèvement stérile.

Conservation et transport

 Température ambiante. La réfrigération ne permet pas d’allonger la durée de conservation. ^[71]

 Acheminer immédiatement au laboratoire. Un délai supérieur à 4 heures augmente le taux de faux positifs. (prolifération de Candida sp. dans l’expectoration ^[72])

Précautions de prélèvement