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Les expérimentations menées dans le cadre de ce travail avaient pour objectif d’identifier le gène, positionné sur le groupe de liaison 1, contrôlant le rapport fructose/glucose. Elles se sont focalisées sur quelques gènes candidats fonctionnels intervenant directement dans le métabolisme du fructose.

La SDH, responsable de la synthèse de fructose à partir du sorbitol était considérée comme favorite par Kanayama (2005). Elle fait partie d’une famille polygénique dont le nombre de gènes, et notamment ceux exprimés dans le fruit, n’est pas connu chez le pêcher. Parmi les 6 séquences détectées, pouvant correspondre à 6 gènes différents, seule la SDH-a (AB025969) est cartographiée, sur le groupe de liaison 2. Bien qu’elle ne soit pas candidate pour le gène « sans fructose », l’étude de son expression a révélé que la SDH-a est surexprimée chez les individus « sans fructose ». Ainsi, la SDH-a semble subir un rétrocontrôle visant à augmenter la formation de fructose chez les individus déficitaires. Deux hypothèses sont alors possibles : soit l’expression de la SDH-a est augmentée pour contrecarrer une baisse d’expression d’autres SDH possiblement exprimées dans le fruit, soit pour contrecarrer une consommation excessive du fructose vers d’autres sucres. L’étude de l’activité de l’enzyme SDH (activité non spécifique de la SDH-a) a également révélé une hyperactivité chez les individus déficitaires en fructose. Aussi, ce n’est pas une déficience de l’enzyme SDH qui explique le phénotype « sans fructose », ce qui élimine les autres gènes SDH de la liste des candidats.

Pour ce qui est de la fructokinase, candidat suivant dans le métabolisme du fructose, seule la FRK-b, assimilée par homologie à une fructokinase de type 2, a pu être cartographiée à environ 15 cM du locus du QTL-gène majeur du caractère « sans-fructose ». Les allèles parentaux clonés de la FRK-b (séquence partielle) ne présentent pas de polymorphisme au niveau protéique. Cependant, des différences dans le reste de la séquence pourraient être responsables d’un différentiel d’activité de l’enzyme. Il faudra étudier l’expression de ce gène et l’activité de la FRK en général de façon à déterminer s’il existe un lien entre la FRK et les deux phénotypes.

La PGI, quant à elle, n’a pu être cartographiée mais des différences relevées au niveau des séquences protéiques partielles (obtenues à partir de l’isolation de chacun des allèles parentaux par clonage) suggèrent un polymorphisme pouvant être responsable d’une non-fonctionnalité de l’enzyme. Aussi l’activité de cette enzyme sera étudiée en priorité chez des génotypes « avec » et « sans » fructose et ce gène devra être cartographié.

La recherche de polymorphisme de longueur pour une cartographie rapide des gènes candidats s’est avérée infructueuse du fait du faible polymorphisme entre les parents de la BC2. Rechercher un polymorphisme de séquence chez le pêcher ne peut pas être fait directement par séquençage du mix PCR du fait du fort taux d’hétérozygotie. Aussi cette approche implique une isolation des allèles par clonage. Pour mener à bien la cartographie des gènes candidats, une alternative serait d’utiliser la population de référence TxE, interspécifique et plus polymorphe que la BC2. Cette stratégie est d’autant plus intéressante que 6 individus ont été identifiés pour faire du ‘bin-mapping’, ce qui permettrait de rapidement positionner grossièrement les gènes candidats sur les 8 groupes de liaison avant de procéder à une cartographie plus précise de ceux positionnés sur le groupe 1.

La plupart des gènes candidats considérés appartiennent à des familles multigéniques dont on ne connaît pas le nombre chez le pêcher. De plus, les EST Prunus disponibles ne

sont que des séquences partielles des gènes d’intérêt. Aussi faudra-t-il parvenir à dessiner des amorces consensus à partir des séquences connues d’autres espèces végétales, d’une part

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pour amplifier les gènes en entier et d’autre part pour amplifier spécifiquement chacun des gènes de la famille.

Enfin, une stratégie de clonage positionnel pourrait être envisagée, compte tenu de la petite taille du génome du pêcher. Moins aléatoire que la stratégie « gènes candidats fonctionnels », elle n’est envisageable sur pêcher que dans la mesure où le phénotypage « avec » et « sans » fructose est possible facilement, soit au stade plantule. Des dosages de fructose et glucose dans les feuilles des individus BC2 devront donc être réalisés afin de vérifier que le phénotype observé dans les fruits se retrouve au niveau des feuilles.

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VI. Références Bibliographiques

Aharoni A., Keizer L.C.P., Bouwmeester H.J., Sun Z., M. A.-H., Verhoeven H.A., Blaas J., van Houwelingen A.M.M.L., De Vos R.C.H., van der Voet H., Jansen R.C., Guis M., Mol J., Davis R.W., Schena M., J. v.T.A. & O' Connell A.P. (2000) Identification of the SAAT gene involved in strawberry flavor biogenesis by use of DNA microarrays. Plant Cell, 12, 647-661.

Aranzana M.J., Pineda A., Cosson P., Dirlewanger E., Ascasibar J., Cipriani G., Ryder C.D., Testolin R., Abbott A.G., King G.J., Iezzoni A.F. & Arus P. (2003) A set of simple-sequence repeat (SSR) markers covering the Prunus genome. Theoretical and Applied

Genetics, 106, 819-825.

Basten C.J., Weir B.S. & Zebg Z.B. (2001) QTL cartographer, version 1.15 : A reference manual and tutorial for QTL mapping. Dept of Statistics North Carolina State University

Raleigh NC.

Bieleski R.L. (1982) Sugar alcohols. Encyclopedia of plant physiology new series. Physiological

plant ecology, 13A, 158-192.

Brooks S.J., Moore J.N. & Murphy J.B. (1993) Quantitative and qualitative changes in sugar content of peach genotypes [Prunus persica (L.) Batsch]. Journal of the American Society

for Horticultural Science, 118, 97-100.

Chang S., Puryear J. & Cairney J. (1993) A simple and efficience method for isolating RNA for pine trees. Plant Molecular Biology Reporter, 11, 113-116.

Coe F. (1933) Peach harvesting studies. Utah Agricultural Experiment Station Bulletins., 241. Culpepper C.W. & Caldwell J.S. (1930) The canning quality of certain commercially important

eastern peaches. U.S. Department of Agriculture Technical Bulletins, 196.

Dann I.R. & Jerie P.H. (1988) Gradients in maturity and sugar level of fruit within peach trees.

Journal of the American Society for Horticultural Science, 113, 27-31.

Dirlewanger E., Graziano E., Joobeur T., Garriga-Calderé F., Cosson P., Howad W. & Arus P. (2004) Comparative mapping and marker-assisted selection in Rosaceae fruit crops.

Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 101,

9891-9896.

Dirlewanger E., Moing A., Rothan C., Svanella L., Pronier V., Guye A., Plomion C. & Monet R. (1999) Mapping QTLs controlling fruit quality in peach (Prunus persica (L.) Batsch).

Theoretical and Applied Genetics, 98, 18-31.

Doty T.E. (1976) Fructose sweetness : a new dimension. Cereal Foods World, 21, 62-63.

Garvey T.C. & Hewitt J.D. (1992) Use of molecular markers to locate quantitative trait loci linked to high soluble-solids content in a hybrid of Lycopersicon cheesmanii. Journal of

the American Society for Horticultural Science, 117, 497-499.

German M., Asher I., Petreikov M., Dai N., Schaffer A.A. & Granot D. (2004) Cloning, expression and characterization of LeFRK3, the fourth tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) gene encoding fructokinase. Plant Science, 166, 285-291.

Gonzali S., Pistelli L., De Bellis L. & Alpi A. (2001) Characterisation of two Arabidopsis

thaliana fructokinases. Plant Science, 160, 1107-1114.

Haller M.H. & Harding P.L. (1939) Effect of storage temperatures on peaches. U.S. Department

of Agriculture Technical Bulletin., 680.

Kanayama Y. (1998) Molecular biology of sugar metabolism and its regulation in fruit. Journal

of the Japanese Society for Horticultural Science 67 (6), 1203-1208.

Kanayama Y., Kogawa M., Yamaguchi M. & Kanahama K. (2005) Fructose content and the activity of fructose-related enzymes in the fruit of eating quality peach cultivars and native-type peach cultivars. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 74, 431-736.

Kulkarni R.K. (1990) Mannitol metabolism in Lentinus edodes, the Shiitake Mushroom. Applied

- 26 -

Lander E.S., Green P., Abrahamson J., Barlow A., Daly M.J., Lincoln S.E. & Newburg L. (1987) Mapmaker: an interactive computer package for constructing primary genetic linkage maps of experimental and natural populations. Genomics, 1, 174-181.

Lo Bianco R., Riegger M. & Sung S.J.S. (1998) A simple, rapid extraction and assay procedure for NAD+-dependent sorbitol dehydrogenase in peach. American Society for Horticultural

Science, 123, 165-168.

Marini R.P. (1985) Vegetative growth, yield, and fruit quality of peach as influenced by dormant pruning, summer pruning, and summer topping. Journal of the American Society

for Horticultural Science, 110, 133-139.

Moing A., Carbonne F., Zipperlin B., Svanella L. & Gaudillère J.P. (1997) Phloem loading in peach : symplastic or apoplastic. Physiologia Plantarum, 101, 489-496.

Moriguchi T., Ishizawa Y. & Sanada T. (1990) Differences in sugar composition in Prunus persica fruit and the classification by the principal component analysis. Journal of the

Japanese Society for Horticultural Science, 59, 307-312.

Nosarzewski M. & Archbold D. (2007) Tissue-specific expression of sorbitol dehydrogenase in apple fruit during early development. Journal of Experimental Botany, 58, 1863-1872. Osborn T.C., Alexander D.C. & Fobes J.F. (1987) Identification of restriction fragment length

polymorphisms linked to genes controlling soluble-solids content in tomato fruit.

Theoretical and Applied Genetics, 73, 350-356.

Pangborn R.M. (1963) Relative taste intensities of selected sugars and organic acids. Journal of

Food Science, 28, 726-733.

Paterson A.H., Lander E.S., Hewitt J.D., Peterson S., Lincoln S.E. & Tanksley S.D. (1988) Resolution of quantitative traits into Mendelians factors by using a complete linkage map of restriction fragment length polymorphisms. Nature, 335, 721-726.

Pego J.V. & Smeekens S.C.M. (2000) Plant fructokinases : a sweet family get-together. Trends

in Plant Science, 5, 531-536.

Quilot B., Génard M., Kervella J. & Lescourret F. (2004) Analysis of genotypic variation in fruit flesh total sugar content via an ecophysiological model applied to peach. Theoretical

and Applied Genetics, 109, 440-449.

Robertson J.A., Meredith F.I. & Scorza R. (1988) Characteristics of fruit from high- and low-quality peach cultivars. HortScience, 23, 1032-1034.

Schaffer A.A., Petreikov M., Miron D., Fogelman M., Spiegelman M., Bnei-Moshe Z., Shen S., Granot D., Hadas R., Dai N., Levin I., Bar M., Friedman M., Pilowsky M., Gilboa N. & Chen L. (1999) Modification of carbohydrate content in developing tomato fruit.

HortScience, 34, 1024-1027.

Suzuki Y., Odanaka S. & Kanayama Y. (2001) Fructose content and fructose-related enzyme activity during the fruit development of apple and Japanese pear. Journal of the Japanese

Society for Horticultural Science, 70, 16-20.

Sweeney J.P., Chapman V.J. & Hepner P.A. (1970) Sugar, acid, and flavor in flesh fruits.

Journal of the American Dietetic Association, 57, 432-435.

Tanksley S.D. & Hewitt J. (1988) Use of molecular markers in breeding for soluble-solids content in tomato - a re--examination. Theoretical and Applied Genetics, 75, 811-823. Wang K., Gan L., Jeffery E., Gayle M., Gown A.M., Skelly M., Nelson P.S., Ng W.V.,

Schummer M., Hood L. & Mulligan J. (1999) Monitoring gene expression profile changes in ovarian carcinomas using cDNA microarray. Gene, 229, 101-108.

Wrolstad R.E. & Shallenberger R.S. (1981) Free sugars and sorbitol in fruits - a compilation from litterature. Journal of the Associatioin of official Analytical Chemists, 64, 91-103. Yamada K., Niwa N., Shiratake K. & Yamaki S. (2001) cDNA cloning of NAD-dependent

sorbitol dehydrogenase from peach fruit and its expression during fruit development.

Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 76, 581-587.

Yamaguchi S., Yoshitawa T., Ikeda S. & Ninomiya T. (1970) Studies on the taste of some sweet substances. Part I. Measurement of the relative sweetness. Agricultural Biology and

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