• Aucun résultat trouvé

ADN ARN

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

Partager "ADN ARN "

Copied!
6
0
0

Texte intégral

(1)

II/ L’expression de l’information génétique : un processus en 2 étapes

On sait déjà que l’information est contenue dans le noyau, dans l’ADN, muni de pores dont la taille ne permet pas le passage de l’ADN

Ø Doc 2e page 105 Observation en microscopie électronique à balayage d’une empreinte de l’enveloppe nucléaire

L’enveloppe du noyau est munie de pores dont la taille ne permet pas le passage de l’ADN

L’enveloppe nucléaire est formée de 2 membranes séparées par un espace. Ce système de « cavités » internes se prolonge pour former le réticulum endoplasmique (dont nous reparlerons plus tard)

1. La synthèse des protéines se déroule dans le cytoplasme (& page 104)

Un marquage « froid » L’expression des gènes correspond à leur traduction en protéines Différentes expériences de marquages ont permis de localiser la synthèse des protéines

Rappel : le marquage :

On distingue le marquage dit « chaud » utilisant des isotopes

radioactifs qui émettent des rayonnements repérables et les marquages

« froids » qui utilisent des molécules aux propriétés fluorescentes, luminescentes. Ces dernières sont de plus en plus employées car plus pratiques.

Le principe est d’utiliser un élément caractéristique de la molécule (où autre) à localiser ou suivre en fonction du temps.

Le marquage radioactif peut être révélé par autoradiographie (page 397)

Le marquage des acides aminés, constituants des protéines, permet de monter que la synthèse des protéines se déroule dans le cytoplasme.

Nous savons que l’ADN, support de l’information génétique, est situé dans le noyau, comment peut-il commander la synthèse des protéines ?

La nécessité d’un intermédiaire : Ø Doc1b page 104

L’expérience de coloration avec le vert de méthyl pyronine qui colore en vert l’ADN (noyau) Et en rose l’ARN (cytoplasme +noyau)

montre qu’on identifie un autre acide nucléique dans le cytoplasme et le noyau: l’ARN.

Fluorescence

Pore

(2)

Ø Doc 1c page 104

On constate que l’ARN disparaît en 30 minutes symétriquement à l’intégration des acides aminés dans les protéines.

L’ARN induit la synthèse des protéines

On peut réaliser des synthèses in vitro de protéine à partir de cellules énuclées (sans noyau, donc sans ADN) en injectant de l’ARN

2. L’ARN est synthétisé dans le noyau Ø Doc. 2d page 105

On réalise un marquage radioactif avec un précurseur (molécule à l’origine de la synthèse de l’ARN et caractéristique de celui-ci) de l’ARN : Uracile radioactif.

On visualise la radioactivité par autoradiographie : (les points noirs correspondent à la précipitation des grains d’argent de la pellicule sensible sous l’effet des rayonnements produits par l ‘élément radioactif)

Radioactivité localisée dans le noyau au bout de 12H à puis déplacement vers le cytoplasme via les pores du noyau. (Doc 2e, f page 105)

Nombre de chaînes 2 1

Lieu de synthèse dans la

cellule Noyau Noyau

Déplacement vers… Cytoplasme

3. L’ARN : un acide nucléique (

&

page 106) YL’Acide Ribo Nucléique est un

polynucléotide, constitué - D’un seul brin

- De 4 nucléotides différents : A, U, C, G (U remplace T, il peut établir les mêmes liaisons hydrogène avec A, donc l’appariement des nucléotides =)

A-U ; C-G

- Dans les nucléotides, le Ribose remplace le désoxyribose

(3)

Ø Doc b page 106 :

C’est la copie complémentaire d’un des brins de l’ADN le brin non codant du gène (séquence qui contient l’information nécessaire à la synthèse d’une protéine)

NB : il correspond à la séquence du brin codant mais où T est remplacé par U Brin non codant

ADN

Brin codant

ARN

4. Le mécanisme de la transcription (

&

page 107) Schéma (Doc e page 107)

Brin codant (non transcrit) Nucléotides à ARN

Brin non codant (transcrit)

ARN polymérase

L’ARN polymérase appartient à un complexe enzymatique qui se fixe sur l’ADN, au début d’un gène, déroule l’ADN et l’ouvre en rompant les liaisons hydrogène : les 2 brins se séparent

L’ARN polymérase synthétise un ARN en positionnant face à chaque nucléotide du brin codant, le nucléotide complémentaire.

Ø Doc. D page 107 : Observation microscopique de la chromatine pendant la transcription.

Schéma d’interprétation

Plusieurs ARN polymérases transcrivent en même temps un gène à un gène est transcrit à une fréquence qui dépend des besoins de la cellule en la protéine dont le code est contenu dans le gène.

ADN ARN

ARN polym.

1 Gène

Gène

1 Gène TRANSCRIPTION

Début

Fin

(4)

5. Le devenir de l’ARN (& pages 107)

La transcription terminée, l’ARN contenant la copie d’un gène (ARN messager = ARNm) gagne le cytoplasme grâce aux pores présents dans l’enveloppe nucléaire.

Ø Doc 3f page 107. On compare les séquences du gène de la ß globine humaine et l’ARN mature présent dans le cytoplasme (qui contient les informations nécessaires à la synthèse de la protéine) : on constate que cet ARN contient moins de nucléotides que le gène !!!!

Si on compare maintenant avec l’ARN présent dans le noyau à la fin de la transcription, on voit que cet ARN contient bien la copie (en nucléotides complémentaires) du brin transcrit ! on parle d’ARN pré- messager

Il se passe donc quelque chose entre la transcription et le déplacement vers le cytoplasme : une partie de l’ARN est éliminée. En effet des fragments du gène ne sont pas codants.

Ø Doc. G page 107

La mise en contact de l’ARN présent dans le cytoplasme et le brin transcrit de l’ADN (gène) montre que l’hybridation ne se fait pas sur toute la longueur du gène.

Les boucles du brin d’ADN correspondent aux parties non codantes qui ont été éliminées : on parle de maturation ou encore d’épissage

(5)

Le brin codant est transcrit en ARN pré-messager Au cours de l’épissage, les parties non codantes du gène transcrites en ARN (introns) sont éliminées et l’ARN messager, mature ne contient plus que les copies codantes (exons).

C’est l’ARNm qui sera traduit en protéine.

Ø Allons plus loin : comment obtenir des protéines différentes à partir d’un seul gène :

De plus cet épissage peut s’accompagner d’une recombinaison des exons : ils peuvent être assembler de façon différente donnant ainsi plusieurs protéines différentes à partir d’un même ARN pré-messager (donc à partir d’un gène) : on parle d’épissage alternatif.

Un intérêt évolutif :

Avant la publication de la séquence complète de l’ADN du génome humain, au début des années 2000, on estimait le nombre de gènes à environ 300 000. Aujourd’hui, ce chiffre est tombé à environ 22 000, un résultat étonnant car finalement très voisin de celui d’autres espèces parmi les préférées des généticiens : la souris, le poisson-zèbre ou même le simple ver nématode, qui possède également plus de 20 000 gènes ! En d’autres termes, le nombre de gènes d’un organisme vivant ne reflète pas sa réelle complexité biologique.

Ce paradoxe résulte de la combinaison de plusieurs phénomènes, dont ce qu’on appelle l’épissage alternatif des ARN pré-messagers, une étape fondamentale de l’expression des gènes

Grâce à l’épissage, plusieurs protéines différentes peuvent être produites à partir d’un seul gène. La définition de gène devient ainsi plus complexe !

ADN 1 gène

ARN

Pré-messager ARN messager

Exon 1 Exon 2 Exon 3 Exon 1 Exon 2 Exon 3

Exons 1+ 2 Exons 1 + 3

(6)

BILAN TRANSCRIPTION :

Nous reste à comprendre comment se déroule l’assemblage des protéines à partir de l’information génétique copiée dans l’ARN : la TRADUCTION

polymérase ARN

Acides aminés

Références

Documents relatifs

grands diagrammes et celle disponible par d ´efaut dans RosettaDock dans les encarts en bas `a droite de chaque diagramme (candidats indiqu ´es

Pour avoir au moins 30 presque-natifs et 30 leurres sur les 10 000 candidats générés pour chaque structure native, nous avons utilisé trois gammes de translations et

2.3. Architecture d’un système biométrique ... Mesure de performances d’un système biométrique ... Vision futur de la biométrie ... Systèmes biométriques basés sur

Puisqu’il y a similitude chimique entre les mécanismes donnant lieu à l’excision de ces deux types d’introns et puisqu’il est prouvé que les introns du groupe II sont

Enfin, comme plusieurs protéines de liaison à l’ARN se localisent dans les SG mais aussi dans les P- bodies, nous avons déterminé si CIRP se relocalise également dans ces

— we propose a novel weight initialization scheme, Hcore-init by using the information provided by the weighted version of the k-hypercore of a NN extracted graph, to re-initialize

Fourier transfonn infrared (FTIR) difference spectroscopy was used to determine the Clll..N binding mode , the binding constant , sequence selectivity , DNA secondary