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A VANT -­‐ PROPOS  

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Academic year: 2022

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Texte intégral

(1)

 

Laboratoire  d'Écologie  Animale  et  Ecotoxicologie   Unité  d'Écologie  Marine  

         

Étude  pluridisciplinaire  de  l'implication  bactérienne  dans  le   phénomène  de  blanchissement  des  coraux  Scléractiniaires  

(Indo-­‐Pacifique)  

     

Dissertation  rédigée  par  Ophélie  LADRIÈRE   en  vue  de  l'obtention  du  grade  de   Docteur  en  Sciences  (PhD,  Océanologie)  

   

    Promoteur  :  

Dr.  Mathieu  POULICEK    

Jury  :  

Prof.  Jean-­‐Pierre  THOMÉ  (Président)   Prof.  Paola  FURLA  (UNS,  Nice,  France)  

Prof.  Guillaume  MITTA  (UPVD,  Perpignan,  France)   Prof.  Jean-­‐Marie  BOUQUEGNEAU  

Dr.  Annick  WILMOTTE   Dr.  Philippe  COMPÈRE  

   

Année  académique  2011-­‐2012    

 

Photos   de   couverture   (de   la   gauche   vers   la   droite)   :   Corail   blanchi   (http://jroy.abenaza.com/2008/04/23/global-­‐

warming/);   Récif   de   la   Grande   Barrière   de   Corail,   Australie   (http://www.wayfaring.info/2010/07/21/the-­‐great-­‐barrier-­‐

reef-­‐australia/);   Profil   de   bandes   en   DGGE   (O.   Ladrière);   Prélèvement   et   fixation   d'échantillons   en   plongée   (D.  

Arnould);  Tissus  décalcifiés  du  corail  Pocillopora  verrucosa  (O.  Ladrière).  

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Vu  le  nombre  croissant  de  maladies  coralliennes  lié  à  l'impact  grandissant  du   réchauffement   climatique   et   des   activités   anthropiques,   le   présent   travail   de   recherche  s'est  intéressé  au  phénomène  de  blanchissement  corallien.  Les  Cnidaires   Scléractiniaires   sont   les   éléments   de   base   et   essentiels   de   l'écosystème   récifal;  

écosystème  dont  les  intérêts  écologiques,  économiques  et  sociétaux  ne  sont  plus  à   démontrer.   Ce   symptôme   de   blanchissement   a   des   causes   multiples   et   complexes   qui   sont   encore   mal   connues.   Il   correspond   à  la   rupture   de   la   symbiose   mutualiste   existant   entre   le   corail   et   des   microalgues,   appelées   zooxanthelles,   et   peut   engendrer  la  mort  de  nombreux  coraux.  

Une   hypothèse   à   la   base   de   ce   phénomène   suggère   que   le   corail   blanchit   suite  à  l'action  de  bactéries  pathogènes,  pénétrant  à  l'intérieur  des  tissus  coralliens.  

Cependant,   cette   hypothèse   semble   assez   controversée   et   le   présent   travail   tente   d'élucider   un   ensemble   de   questions   liées   à   cette   polémique.   Pour   ce   faire,   une   approche  pluridisciplinaire  alliant  l'écologie  (générale  et  microbienne)  et  la  biologie   moléculaire  a  été  mise  en  place  lors  d'études  in  situ  et  expérimentales.    

A  l'aide  de  la  microscopie  électronique,  des  critères  morphologiques  ont  été   établis   afin   de   caractériser   l'état   de   blanchissement   du   corail.   Par   ailleurs,   cette   technique  a  également  permis  d'identifier  différents  types  de  bactéries  au  sein  des   tissus   coralliens.   Leur   présence   et   leurs   rôles   au   sein   de   l'holobionte   corallien   sont   discutés.    

Plusieurs   techniques   de   la   biologie   moléculaire   (DGGE,   séquençage)   ont   apporté   des   éléments   sur   la   non-­‐spécificité   des   communautés   bactériennes   associées   à   des   coraux   d'espèces   différentes,   provenant   de   sites   de   prélèvement   différents   et   dans   des   états   de   blanchissement   différents.   Cette   non-­‐spécificité   souligne   le   fait   que   les   fonctions   remplies   par   les   bactéries   au   sein   de   l'holobionte   corallien   pourraient   être   le   fait   de   bactéries   opportunistes   provenant   de   groupes   taxonomiques  variés.    

La  présence  de  Cyanobactéries  chez  certains  coraux,  détectées  à  l'aide  de  la   microscopie   et   confirmée   par   les   techniques   moléculaires,   soulève   la   question   de  

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l'hôte   par   rapport   aux   zooxanthelles,   microalgues   symbiotiques   "habituelles"   des   Scléractiniaires  hermatypiques.  Les  questions  de  la  compétition  potentielle  entre  ces   différents  types  de  symbiotes  ou  de  l'avantage  de  cette  diversité  symbiotique  en  cas   de  blanchissement  restent  ouvertes.  

Une  approche  transcriptomique  a  permis  d'étudier  la  réponse  du  corail  face  à   un   stress   bactérien,   dans   différentes   conditions   expérimentales   de   température   déterminant  l'expression  de  la  virulence  des  bactéries.  L'étude  du  profil  d'expression   de  différents  gènes  impliqués  dans  l'immunité  du  corail  a  permis  de  comprendre  la   séquence  de  réactions  et  les  modifications  de  l'allocation  des  ressources  en  réponse   aux   différentes   étapes   de   l'infection   bactérienne.   A   cette   occasion,   le   premier   peptide  antimicrobien  de  Scléractiniaires,  la  damicornine,  a  pu  être  mis  en  évidence   et  caractérisé.  

L'ensemble   de   ces   résultats   mènent   à   penser   que   le   contexte   des   modifications  des  paramètres  environnementaux  importe  plus  que  la  présence  elle-­‐

même  de  pathogènes.  Les  bactéries  agiraient  alors  comme  facteur  aggravant  dans   une   situation   où   le   corail,   déjà   stressé   et   affaibli,   ne   peut   se   défendre   de   manière   adéquate.  

Finalement,  les  observations  d'une  augmentation  du  nombre  de  cnidocytes   chez   une   espèce   de   corail   ayant   subi   un   blanchissement   suggèrent   que   certaines   espèces   de   corail   seraient   capables   de   s'adapter   au   manque   d'apports   occasionné   par  la  perte  significative  de  zooxanthelles,  en  passant  à  un  régime  nutritionnel  plus   hétérotrophe.  Ceci  favoriserait  alors  la  résilience  du  corail.  

   

(4)

 

Given  the  increasing  number  of  coral  diseases  linked  to  the  growing  impact   of   global   warming   and   human   activities,   the   present   research   focused   on   the   phenomenon  of  coral  bleaching.  The  Scleractinian  Cnidaria  are  the  essential  building   blocks   of   the   coral   reef   ecosystem,   whose   ecological,   economic   and   societal   interests   are   demonstrated.   The   symptom   of   bleaching   has   multiple   and   complex   causes   that   are   still   unclear.   It   corresponds   to   the   rupture   of   the   mutualistic   symbiosis   between   the   coral   and   microalgae,   called   zooxanthellae,   and   can   causes   death  of  many  corals.  

An   assumption   underlying   this   phenomenon   suggests   that   corals   are   bleaching  by  the  action  of  pathogenic  bacteria,  penetrating  inside  the  coral  tissues.  

However,  this  hypothesis  seems  quite  controversial  and  the  present  work  attempts   to   elucidate   a   set   of   issues   surrounding   this   controversy.   To   do   this,   a   multidisciplinary  approach  combining  ecology  (general  and  microbial)  and  molecular   biology  has  been  established  through  field  and  experimental  studies.  

Using   electron   microscopy,   morphological   criteria   were   established   to   characterize  the  status  of  coral  bleaching.  Furthermore,  this  technique  was  also  used   to  identify  different  types  of  bacteria  within  coral  tissues.  Their  presence  and  their   role  within  the  coral  holobiont  were  discussed.  

Several   molecular   biology   techniques   (DGGE,   sequencing)   have   provided   evidences   on   the   non-­‐specificity   of   bacterial   communities   associated   with   corals   species,  sampling  sites  and  different  status  of  bleaching.  This  non-­‐specificity  shows   that  the  functions  performed  by  bacteria  in  the  coral  holobiont  could  be  the  result  of   opportunistic  bacteria  from  various  taxonomic  groups.  

The  presence  of  Cyanobacteria  in  some  corals,  detected  by  microscopy  and   confirmed  by  molecular  techniques,  raises  the  question  about  their  role  within  the   holobiont   and   the   alternative   pathway   that   they   offer   for   the   symbiotic   host   compared   with   zooxanthellae.   The   issues   of   potential   competition   between   these   different   symbionts   or   the   benefit   of   this   symbiotic   diversity,   in   case   of   bleaching   event,  remain  open.  

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bacterial  stress  in  different  experimental  conditions  of  temperature  determining  the   expression  of  bacterial  virulence.  Studying  the  expression  profile  of  genes  involved   in   immunity   of   the   coral   allowed   to   understand   the   sequence   of   reactions   and   changes  in  resource  allocation  in  response  to  different  stages  of  bacterial  infection.  

On   this   experiment,   the   first   antimicrobial   peptide   of   Scleractinia,   the   damicornin,   has  been  identified  and  characterized.  

All   these   results   suggest   that   the   context   of   changes   in   environmental   parameters   is   more   important   than   the   presence   of   pathogens   itself.   The   bacteria   would   then   act   as   an   aggravating   factor   in   a   situation   where   the   coral,   already   weakened  and  stressed,  cannot  defend  itself  adequately.  

Finally,  the  observation  of  an  increase  in  cnidocytes  in  a  coral  species  that  has   undergone  bleaching,  suggests  that  some  coral  species  are  able  to   shift  to  a  more   heterotrophic   nutritional   regime   adapting   to   the   lack   of   inputs   caused   by   the   significant  loss  of  zooxanthellae.  This  would  favor  the  resilience  of  coral.  

 

(6)

 

Je   tiens   tout   d'abord   à   remercier   le   Docteur   Mathieu   Poulicek,   mon   promoteur,  pour  m'avoir  ouvert  la  porte  du  monde  des  récifs  coralliens.  Merci  pour   ton  soutien  et  ton  humanité.  

Ensuite,  un  tout  grand  merci  au  Professeur  Jean-­‐Pierre  Thomé,  tout  d'abord   pour   son   accueil   au   sein   du   laboratoire   d'écologie   animale   et   d'écotoxicologie   (LEAE),  mais  également  pour  son  soutien  au  quotidien,  moral  et  matériel,  pour  avoir   fait  de  son  mieux  pour  s'intéresser  à  mes  recherches  et  pour  la  cohésion  qu'il  arrive  à   entretenir   au   sein   de   son   laboratoire.   Chef,   s'appeler   Jean-­‐Pierre   et   être   né   un   16   novembre,  ça  ne  s'invente  pas;  vous  êtes  en  quelque  sorte  mon  papa  scientifique.  ;-­‐)  

Un   merci   tout   particulier   à   Bob   et   Jérémie,   les   deux   jeunes   chercheurs   les   plus  prometteurs  que  je  connaisse.  Ce  fut  un  réel  plaisir  de  travailler  avec  vous,  de   discuter  avec  vous  et  bien  sûr,  de  blaguer  avec  vous!  Et  merci  pour  votre  soutien  et   votre  amitié!  Je  vous  souhaite  bonne  continuation  dans  vos  recherches!  

Merci   à   mes   collègues   du   LEAE:   Stéphanie   (Bobette),   Stéphane   (Bob),   Marielle  (Mary-­‐L),  Anne  (-­‐coquine),  Fofie,  Célia,  Arnaud,  Delphine,  Valentine,  Mumu,   Virginie,  Mathieu  et  Not'  Chef  national.  Ce  fut  vraiment  un  plaisir  énorme  de  travailler   à  vos  côtés  dans  cette  ambiance  incroyable,  si  agréable  au  quotidien.  Je  sens  que  ça   va   me   manquer...   Et   puis,   au   fil   du   temps,   bon   nombre   d'entre   vous   sont   devenus   plus   que   de   simples   collègues.   Donc   merci   pour   votre   amitié   aussi.   Et   un   merci   spécial  à  Marielle,  celle  qui  répond  quand  on  l'appelle  (c'est  un  peu  nul  j'avoue,  mais   j'assume).  Merci  de  nous  faciliter  la  vie  comme  tu  le  fais;  ta  gentillesse,  ta  réactivité,   tes   références   musicales   (heureusement   que   je   t'avais)...   Et   un   Pardon   spécial   à   Bobette;  ça  ne  devait  pas  être  facile  tous  les  jours  avec  Bob  et  moi  en  stéréo...  ;-­‐)  et   merci  à  vous  deux  pour  votre  complicité.  

Bon  courage  à  Bob  et  Bobette,  mais  aussi  à  Arnaud,  Anne  et  Valentine  pour  la   suite  et  fin  de  leur  parcours  doctoral.  Je  suis  déjà  fière  de  vous...  :-­‐)  et  oui,  je  fais  ma  

"maman".  

(7)

   

Perpignan  et  à  Moorea.  Vous  m'avez  toujours  accueillie  avec  sympathie  et  simplicité.  

Mes   différents   passages   au   sein   de   vos   équipes   resteront   de   très   bons   souvenirs!  

Merci   au   Docteur   Annick   Wilmotte   et   à   son   équipe:   Rafa,   Cédric,   Yaya,   Magda,   Patricia,   Pedro,   Marie-­‐Jo...   Au   Docteur   Philippe   Compère,   à   Nicole,   sans   qui   mes   observations  au  microscope  électronique  n'auraient  pas  été  possibles  ou  en  tous  cas   pas   aussi   bien   préparées;   ta   gentillesse   et   ta   disponibilité   sans   limites   m'épatent   encore   aujourd'hui;   Laurette,   merci   pour   tes   conseils   et   ton   soutien   même   à   distance,  et  merci  aussi  à  Julie.  

Merci   aux   deux   labos   (du   haut   et   du   bas)   de   l'UMR   5244   de   Perpignan   et   particulièrement   au   Professeur   Guillaume   Mitta   et   au   Docteur   Mehdi   Adjeroud,   à   Jérémie  (et  oui  encore),  Sarah  (un  petit  moonwalk  ?),  Jojo-­‐Papy,  Mohs'-­‐reno  Raines,   Suzie  euh...  Suzie  quoi!,  Lucie-­‐dive  buddy  (aux  quatre  coins  du  globe!),  Céline,  Pablo,   Gégé   d'en   haut,   Géraldine   d'en   bas,   Julien,   Matthias,   Cécile,   Elisabeth   et   tous   les   autres  ...  (et  encore  merci  à  Sarah  et  Elisa  pour  l'hébergement!).  Mon  passage  (ou   plutôt  mes  passages)  et  surtout  cette  collaboration  fut  une  réelle  "révélation"  pour   moi...  merci  pour  tout.  Et  merci  à  Laurent  Fouré  de  l'Aquarium  du  Cap  d'Agde.  

Et  les  criobiens!  Je  me  souviens  du  déchirement  ressenti  lors  de  mon  départ   de  la  station  à  la  fin  de  ma  dernière  mission  en  Polynésie...  C'était  fort,  très  fort...  et   j'espère  vous  y  revoir  un  jour!  Héloïse,  mon  pti  bichon  (y'en  a  trop  à  évoquer...  une   belle  photo  vaut  mieux  qu'un  long  discours,  non?  ;-­‐)),  avec  Julie  et  Pauline;  mes  trois   concierges   préférées   (ouaaakk,   je   fais   bien   la   mouette   là   non?);   Pascal,   Ben-­‐

chachaman,   Frank,   merci   pour   tous   vos   coups   de   mains.   Merci   à   Yannick,   Serge   Planes   et   René   Galzin   pour   leur   accueil   au   sein   du   CRIOBE   (Centre   de   Recherches   Insulaires  et  OBservatoire  de  l'Environnement,  Moorea,  Polynésie  française).  

Merci   aux   Docteurs   Annick   Wilmotte,   Philippe   Compère,   Mehdi   Adjeroud,   Jérémie   Vidal-­‐Dupiol,   Lucie   Penin   et   au   Professeur   Guillaume   Mitta   pour   leurs   discussions  et  conseils  lors  de  mes  différentes  manips  au  sein  de  leurs  laboratoires.  

(8)

 

(de   l'Université   de   Perpignan),   Jean-­‐Marie   Bouquegneau   et   Jean-­‐Pierre   Thomé,   et   aux   Docteurs   Annick   Wilmotte   et   Philippe   Compère   d'avoir   accepté   d'évaluer   ce   travail  de  thèse.  

Merci   aux   Professeurs   Jean-­‐Marie   Bouquegneau   (Doyen   de   la   Faculté   des   Sciences  à  l'époque)  et  Jean-­‐Pierre  Thomé  (Président  du  Département  de  Sciences  et   Gestion   de   l'Environnement)   pour   votre   soutien   financier   lors   de   la   collaboration   avec  Perpignan.  Merci  également  au  FNRS  pour  la  bourse  de  doctorat,  et  au  FNRS,   au  WBI  et  à  l'ULg  pour  leurs  divers  soutiens  financiers  pour  les  missions  et  colloques   à  l'étranger.  

Merci  aux  Kusto'z,  bien  que  nous  n'ayons  pas  toujours  été  très  assidus,  ces   petits  "breaks  musico-­‐jokes"  m'ont  fait  beaucoup  de  bien!  Commandant,  Falco,  Jean-­‐

mich'  et  Ginette:  prochain  tube:  au  Nord,  c'était  les  coraux,  d'acc?    

Merci  à  David  Gillan,  Christopher  Sheridan  (Umons)  et  Elie  Verleyen  (Ugent),   mais   aussi   à   Bob,   Bobette   et   Marielle   (of   course)   pour   vos   aides   ponctuelles   en   situations   de   détresse.   Merci   à   Bruno,   Gilles   et   Jérémie   pour   avoir   accepté   de   corriger   ce   travail.   Vos   critiques   pertinentes   m'ont   fait   grand   bien!   Merci   aussi   à   Damien,  Marie  et  Fred  ;-­‐)  

Merci  à  SB  (SuperBob)  pour  la  couverture  de  ce  manuscrit!  

J'ai  peur  d'oublier  des  gens...  

Merci  à  ma  famille  et  à  mes  amis  (vous  vous  reconnaitrez  bien,  non?),  pour   votre   soutien   perpétuel   et   vital.   Et   ma   soeurette   d'adoption,   Verchinie;   nous   y   sommes  arrivées  pour  finir!  

Un   Merci   tout   spécial   et   surtout   un   Pardon   tout   spécial   à   Damien   et   Clémence   pour   vous   avoir   fait   subir   tout   ça.   Merci   de   m'avoir   soutenue   et   divertie   (même  sans  le  savoir,  ma  Moumoune)  et  d'avoir  accepté  mon  choix.  

...  et  pardon  aux  petites  bêbêtes  qui  ont  été  sacrifiées  pour  la  cause.  

(9)

 

Table  des  matières  

 

AVANT-­‐PROPOS   I  

CHAPITRE  I   INTRODUCTION  GÉNÉRALE   1  

I.I   LES  RÉCIFS  CORALLIENS   1  

I.I.1   LA  BIOLOGIE  DES  CORAUX  SCLÉRACTINIAIRES   1  

I.I.2   SYMBIOSE  CORAIL-­‐ZOOXANTHELLES   8  

I.I.3   RÉPARTITION  ET  STRUCTURE  DES  RÉCIFS  CORALLIENS  HERMATYPIQUES   9  

I.I.4   IMPORTANCE  DES  RÉCIFS   12  

I.I.5   MENACES   13  

I.II   LES  MALADIES  CORALLIENNES   20  

I.II.1   PATHOLOGIES  EN  RECRUDESCENCE   20  

I.II.2   WHITE  SYNDROMES  (WS)   26  

I.II.3   BLACK  BAND  DISEASE  (BBD)  OU  MALADIE  DE  LA  BANDE  NOIRE   27   I.II.4   YELLOW  BLOTCH/BAND  DISEASE  (YBD)  OU  MALADIE  DE  LA  TACHE/BANDE  JAUNE   28  

I.II.5   AUTRES   28  

I.II.6   NOTIONS  DE  RÉSERVOIR  ET  DE  VECTEUR  DE  MALADIE   28  

I.III   LE  BLANCHISSEMENT  CORALLIEN   30  

I.III.1   DÉFINITION  DU  BLANCHISSEMENT  CORALLIEN   30  

I.III.2   CAUSES   32  

I.III.3   MÉCANISMES   33  

I.III.4   CONSÉQUENCES   35  

I.IV   HYPOTHÈSE  BACTÉRIENNE  DU  BLANCHISSEMENT   37  

I.IV.1   RÔLE  DES  BACTÉRIES  AU  SEIN  DE  LHOLOBIONTE  CORALLIEN   37  

I.IV.2   IMPORTANCE  DES  VIBRIONS   40  

I.IV.3   AGENTS  ÉTIOLOGIQUES  CONNUS  POUR  CAUSER  LE  BLANCHISSEMENT   44   I.IV.4   HYPOTHÈSE  PROBIOTIQUE  ET  VENT  DE  POLÉMIQUE   51  

I.V   L’IMMUNITÉ  DES  CORAUX   52  

I.VI   NOTIONS  DE  RÉSISTANCE,  DE  RÉSILIENCE,  DADAPTATION  FACE  AU  BLANCHISSEMENT,  ET  

AUX  MALADIES  EN  GÉNÉRAL   54  

I.VII   OBJECTIFS  DE  LÉTUDE   58  

(10)

   

II.I   SITE  DÉTUDE    MOOREA  (POLYNÉSIE  FRANÇAISE)   62  

II.II   ESPÈCES  ÉTUDIÉES/UTILISÉES   63  

II.II.1   CORAUX   63  

II.II.2   BACTÉRIES   67  

II.III   DENSITÉ  EN  ZOOXANTHELLES   67  

II.IV   MICROSCOPIE   68  

II.IV.1   PRÉLÈVEMENT  ET  FIXATION  DES  ÉCHANTILLONS   68  

II.IV.2   MICROSCOPE  ÉLECTRONIQUE  À  BALAYAGE  (MEB)   69  

II.IV.3   MICROSCOPE  ÉLECTRONIQUE  À  TRANSMISSION  (MET)   70  

II.IV.4   MICROSCOPE  OPTIQUE  (MO)   71  

II.V   CARACTÉRISATION  DES  COMMUNAUTÉS  BACTÉRIENNES   71  

II.V.1   APPROCHE  GÉNÉTIQUE  (CORAUX)   71  

II.V.2   APPROCHE  BIOCHIMIQUE/PHYSIOLOGIQUE  (EAU)   77  

II.VI   APPROCHE  EXPÉRIMENTALE   79  

II.VI.1   MODÈLE  POCILLOPORA  DAMICORNIS/VIBRIO  CORALLIILYTICUS   79  

II.VI.2   DISPOSITIF  EXPÉRIMENTAL   80  

II.VI.3   MISE  EN  ÉVIDENCE  DE  MARQUEURS  DE  STRESS   82   CHAPITRE  III   ETAT  DES  LIEUX  –  APPROCHE  ENVIRONNEMENTALE   87   III.I   MORPHOLOGIE  ULTRASTRUCTURALE  ET  PARTICULARITÉS  DES  ESPÈCES  DE  CORAUX  

ÉTUDIÉES,  EN  CONDITION  NORMALE   87  

III.I.1   ACROPORA  GLOBICEPS   88  

III.I.2   POCILLOPORA  VERRUCOSA   90  

III.I.3   PORITES  RUS   93  

III.I.4   POCILLOPORA  DAMICORNIS   95  

III.II   VARIABILITY  OF  ALGAL  ENDOSYMBIONT  DENSITY  IN  THE  REEF-­‐BUILDING  CORAL  ACROPORA   GLOBICEPS:  A  MULTI-­‐SCALE  APPROACH  ALONG  ENVIRONMENTAL  GRADIENTS  AROUND  MOOREA  

(FRENCH  POLYNESIA)  (=  ARTICLE  1)   99  

III.II.1   INTRODUCTION   99  

III.II.2   MATERIALS  AND  METHODS   101  

III.II.3   RESULTS   104  

III.II.4   DISCUSSION   110  

(11)

 

IV.I   MORPHOLOGICAL  ALTERATIONS  OF  ZOOXANTHELLAE  IN  BLEACHED  CNIDARIAN  HOSTS  (=  

ARTICLE  2)   114  

IV.I.1   INTRODUCTION   114  

IV.I.2   MATERIALS  AND  METHODS   116  

IV.I.3   RESULTS   119  

IV.I.4   DISCUSSION   129  

IV.II   SHIFT  TO  HETEROTROPHY  DURING  CORAL  BLEACHING  (=  ARTICLE  3)   134  

IV.II.1   INTRODUCTION   134  

IV.II.2   MATERIAL  AND  METHODS   135  

IV.II.3   RESULTS  AND  DISCUSSION   136  

IV.III   AUTRES  ALTÉRATIONS   142  

IV.IV   CONCLUSION  DES  CHAPITRES  3  ET  4   147  

CHAPITRE  V   IMPLICATIONS  DES  BACTÉRIES  DANS  LA  SANTÉ  DES  CORAUX   149   V.I   PRÉSENCE  «  NATURELLE  »  DE  BACTÉRIES    APPROCHE  ENVIRONNEMENTALE   150   V.I.1   CARACTÉRISATION  FONCTIONNELLE  DES  COMMUNAUTÉS  BACTÉRIENNES  ASSOCIÉES  À  

L'EAU  ENVIRONNANTE  ET  AU  MUCUS   150  

V.I.2   APERÇU  MORPHOLOGIQUE  DES  BACTÉRIES  PRÉSENTES  DANS  LES  TISSUS  ET  RÔLES  

POTENTIELS   155  

V.I.3   CARACTÉRISATION  GÉNÉTIQUE  DES  COMMUNAUTÉS  BACTÉRIENNES  ASSOCIÉES  AUX   CORAUX  (HOLOBIONTE  DANS  SON  ENTIÈRETÉ,  COMPARTIMENTS  CONFONDUS)  -­‐  BACTERIAL   COMMUNITIES  ASSOCIATED  WITH  CORALS  OF  MOOREA  (FRENCH  POLYNESIA)  :  SHIFT  DUE  TO  

BLEACHING?  (=  ARTICLE  4)   162  

V.II   RÉPONSES  DU  CORAIL  FACE  À  UN  STRESS  BACTÉRIEN  -­‐  APPROCHE  EXPÉRIMENTALE   183   V.II.1   PHYSIOLOGICAL  RESPONSES  OF  THE  SCLERATINIAN  CORAL  POCILLOPORA  DAMICORNIS  TO   BACTERIAL  STRESS  FROM  VIBRIO  CORALLIILYTICUS  (=  ARTICLE  5)   183   V.II.2   INNATE  IMMUNE  RESPONSES  OF  A  SCLERACTINIAN  CORAL  TO  VIBRIOSIS  (=  ARTICLE  6)   210  

CHAPITRE  VI   DISCUSSION  GÉNÉRALE   238  

VI.I   QUINDUIT  LE  PHÉNOMÈNE  DE  BLANCHISSEMENT  CHEZ  LES  SCLÉRACTINIAIRES  ?   239   VI.II   QUELS  RÔLES  PEUVENT  JOUER  LES  BACTÉRIES  ET  QUE  PEUVENT-­‐ELLES  INDUIRE  CHEZ  LE   CORAIL?  242  

VI.II.1   BACTÉRIES  SYMBIOTIQUES   242  

VI.II.2   BACTÉRIES  PATHOGÈNES   243  

VI.II.3   BACTÉRIES  =  SOURCE  DE  NOURRITURE   245  

(12)

      246  

VI.II.5   STRESS  BACTÉRIEN   248  

VI.III   VOIES  DE  RÉSISTANCE,  ACCLIMATATION  ET  RÉSILIENCE…   251  

CHAPITRE  VII   CONCLUSIONS   281  

CHAPITRE  VIII   PERSPECTIVES   257  

RÉFÉRENCES  BIBLIOGRAPHIQUES   259  

ANNEXES   I  

GLOSSAIRE   I  

LISTE  DES  ABBRÉVIATIONS   V  

(13)

 

A VANT -­‐ PROPOS  

L’écosytème   récifal   abrite   la   plus   grande   biodiversité   marine   et   remplit   de   nombreuses   fonctions   importantes   à   bien   des   égards   (ex:   ressources   alimentaires,   rôles   socio-­‐économiques,   protection   des   côtes,     stock   de   ressources   médicales   et   pharmacologiques,   …).   Dans   le   contexte   actuel   de   changement   climatique   global,   les   récifs   coralliens   tropicaux   apparaissent   de   plus   en   plus   menacés.   Le   blanchissement   est   l’une   des   principales   menaces   auxquelles   sont   exposés   les   Scléractiniaires  hermatypiques,  principaux  constructeurs  de  ces  récifs  coralliens.  Ce   phénomène   est   le   symptôme   “macroscopique”   d’un   dérèglement   de   la   symbiose   entre   l’hôte   corallien   et   ses   zooxanthelles   endosymbiotiques,   qui   fait   suite   à   un   stress  ou  une  perturbation  des  conditions  environnementales  menant  à  l’expulsion   ou  à  la  dégradation  des  zooxanthelles  et/ou  de  leur  appareillage  photosynthétique.  

Le   blanchissement   peut   conduire   à   une   mortalité   importante   de   certaines   espèces   constitutives   de   l’assemblage   corallien,   ce   qui   a   et   aura   des   répercussions   importantes   sur   les   communautés   (animales,   végétales   et   humaines)   associées:  

disparition  d’habitats  et  de  nourriture  pour  de  nombreuses  espèces,  déstabilisation   de  la  chaine  trophique,  diminution  de  la  résistance  face  à  la  houle  et  donc  diminution   de  la  protection  des  côtes,  ...  

Différentes  hypothèses  sont  à  la  base  de  ce  phénomène.  Celles-­‐ci  mettent  en   cause  des  facteurs  abiotiques  tels  que  la  température  ou  la  lumière,  et  des  facteurs   biotiques   tels   que   les   bactéries.   Dans   les   années   90,   l’hypothèse   bactérienne   du   blanchissement   corallien   a   vu   le   jour   suggérant   que   l’agent   responsable   de   ce   phénomène  pouvait  être  une  bactérie  pathogène  du  genre  Vibrio  (Vibrio  shiloï)  chez   le   corail  Oculina   patagonica   (Kushmaro   et   al.   1996,   Kushmaro   et   al.   1997).   Cette   hypothèse   a   ensuite   été   renforcée   par   la   découverte   d’un   autre   agent   bactérien   (Vibrio   coralliilyticus)   responsable   du   blanchissement   corallien   de   Pocillopora   damicornis   (Ben-­‐Haim   et   al.   2003a,   Ben-­‐Haim   Rozenblat   and   Rosenberg   2004b).  

Cependant,   des   résistances   sont   apparues   au   niveau   du   corail   vis-­‐à-­‐vis   de   son   pathogène   présumé.   Ce   phénomène   engendra   l’hypothèse   probiotique   corallienne   et  la  théorie  hologénomique  de  l’Evolution  (Reshef  et  al.  2006,  Zilber-­‐Rosenberg  and   Rosenberg   2008).   Selon   ces   deux   théories,   le   corail   s’adapterait   à   son   environnement  changeant  en  modifiant  ses  populations  de  symbiotes  (bactériens  et   algaux)  résidents.    

(14)

    ii  

été  critiquée  (Ainsworth  et  al.  2008).  À  l’heure  actuelle,  il  n'a  pas  pu  être  démontré  si   des   bactéries   peuvent   induire   un   blanchissement   ou   si   elles   sont   des   agents   secondaires  venant  renforcer  ce  phénomène.  En  effet,  rares  sont  les  études  (Banin   et  al.  2000a,  Ben-­‐Haim  et  al.  2003c,  Lesser  et  al.  2004,  Cervino  et  al.  2008,  Kvennefors   and  Roff  2009)  ayant  présenté  des  images  de  bactéries  dans  les  tissus  coralliens  et   certaines  d’entre-­‐elles  sont  critiquables.  De  plus,  les  études  ayant  présenté  des  Vibrio   comme  responsables  de  blanchissement  de  certains  coraux  ont  été  faites  sur  base   expérimentale  (Kushmaro  et  al.  1997,  Ben-­‐Haim  et  al.  2003c)  et  contredites  par  des   études  environnementales  (Reshef  et  al.  2006,  Ainsworth  et  al.  2008).  Par  ailleurs,  les   réponses   induites   chez   le   corail   lors   d’un   stress   bactérien   ne   sont   pas   encore   connues,  si  ce  sont  bien  les  bactéries  (et  pas  un  autre  facteur)  qui  occasionnent  ce   stress  chez  le  corail…  

C’est  dans  ce  contexte  controversé  et  lacunaire  que  s’inscrit  le  présent  travail   de   thèse.   Celui-­‐ci   a   pour   principal   objectif   de   comprendre   le   rôle   joué   par   les   bactéries  dans  le  phénomène  de  blanchissement  corallien.  Afin  de  répondre  à  cette   question,  ce  travail  a  été  découpé  en  3  parties.  Premièrement,  la  variabilité  naturelle   de   la   densité   en   zooxanthelles   dans   les   tissus   coralliens   et   ses   facteurs   environnementaux   associés   (profondeur,   luminosité,...)   ont   été   recherchés.   Ces   résultats   seront   mis   en   relation   avec   l’hétérogénéité   spatiale   du   phénomène   de   blanchissement   et   des   communautés   bactériennes.   Deuxièmement,   les   altérations   morphologiques   provoquées   au   niveau   tissulaire   et   cellulaire   du   corail   lors   d’un   phénomène  de  blanchissement  ont  été  décrites.  Finalement,  un  volet  expérimental  a   été  mis  sur  pied  afin  d'identifier  les  réponses  qu'un  corail  pouvait  développer  face  à   un  stress  bactérien,  dans  certaines  conditions.  Les  outils  de  biologie  moléculaire  et   de   transcriptomique   (techniques   de   pointe)   vont   nous   permettre   de   valider   l'hypothèse  selon  laquelle  des  bactéries  -­‐  couplées  ou  non  au  facteur  température  -­‐  

initient   un   blanchissement   ou   autre   dérèglement   chez   le   corail   (modèle  Vibrio   coralliilyticus/Pocillopora   damicornis).   L’hybridation   soustractive   (SSH)   servant   à   comparer  deux  conditions  sur  la  base  du  niveau  d’expression  de  certains  gènes,  va   nous   permettre   de   déterminer   quand   et   dans   quelles   conditions   se   produit   ce   dérèglement,  mais  surtout  de  quelle  manière  réagit  le  corail  face  à  cela  (en  réprimant   ou  surexprimant  certains  gènes  de  fonction  particulière).  

(15)

         

Chapitre  I Introduction  générale  

 

(16)
(17)

Depuis   plusieurs   décennies   et   dans   le   contexte   actuel   de   changement   climatique  et  de  développement  démographique,  les  perturbations  et  altérations  de   l’environnement  ne  sont  plus  à  prouver.  L’environnement  marin  et  ses  habitants  ne   font   malheureusement   pas   exception.   La   dégradation   et   la   réduction   en   quantité   (surface)   et   en   qualité   (biodiversité,   fonctions)   des   récifs   coralliens   ont   pu   être   constatées   de   par   le   monde.   Les   maladies   et   le   blanchissement   des   coraux1  sont   parmi   les   nombreuses   manifestations   des   déséquilibres   dont   souffre   actuellement  

«  notre   planète   bleue  »…   L’étude   et   la   compréhension   des   causes   (et   de   leurs   mécanismes)  de  destruction  de  ces  zones  stratégiques  à  intérêts  multiples  font  dès   lors   partie   des   principales   préoccupations   de   ces   dernières   années,   et   doivent   certainement  le  rester.  

 

I.I Les  récifs  coralliens  

I.I.1  La  biologie  des  coraux  Scléractiniaires   I.I.1.a Systématique  et  morphologie  

Parmi   les   architectes   des   récifs   coralliens,   les   principaux   acteurs   sont   les   coraux   durs,   également   appelés   Scléractiniaires   ou   Madréporaires   (ou   plus   communément,   madrépores).   Ces   organismes   sont   des   animaux   de   l’embranchement   des   Cnidaires   et   sont   caractérisés   par   une   origine   embryonnaire   diblastique;   ils   sont   donc   composés   de   deux   types   de   tissus,   l’ectoderme   en   face  

                                                                                                                           

 

1  Dans   le   présent   manuscrit,   le   terme   “coraux”   sera   utilisé   comme   synonyme   de   Scléractiniaires  hermatypiques  de  récif  tropical,  d’eaux  peu  profondes  et  chaudes.  

(18)

externe  et  l’endoderme  en  face  interne.  A  l’état  adulte,  les  tissus  d’origine  endo-­‐  et   ectodermiques   sont   séparés   par   une   mésoglée   (structure   gélatineuse   quasiment   anhyste).  Le  nom  de  cet  embranchement  (κνιδη  en  grec  ancien,  «  knidé  »,  signifiant  

«  ortie  »)   provient   de   la   présence   dans   leurs   tissus   de   cellules   urticantes,   les   cnidocytes,   servant   d’outils   de   défense   et   de   capture   de   proies.   Les   Cnidaires   sont   également  caractérisés  par  une  symétrie  radiaire.  Les  Scléractiniaires  font  partie  de   la  Classe  des  Anthozoaires,  tout  comme  les  anémones,  et  sont  dits  polypoïdes  car  la   phase  «  méduse  »  de  leur  cycle  de  vie  est  complètement  absente.  Ils  vivent  donc  de   manière   sessile   et   sont   majoritairement   coloniaux   (p.ex.   le   genre  Fungia   qui   est   solitaire).    

L’élément  de  base  d’une  colonie  s’appelle  le  polype,  qui  peut  être  considéré   comme   un   “sac”   avec   une   couronne   de   tentacules   et   une   bouche   qui   mène   à   un   pharynx  tubulaire  s’étendant  dans  la  cavité  gastrovasculaire  (tube  digestif  en  cul-­‐de-­‐

sac;   Figure   1.1).   Cette   dernière   est   divisée   longitudinalement   par   des   septa,   ou   mésentères,   formant   de   cette   manière   des   compartiments   «  rayonnés  »   (Ruppert   and  Barnes  1994).  

  Figure   1.1   :   Structure   d’un   polype   d’Anthozoaire.   A,   Coupe   longitudinale.   B,   coupe   transversale   au   niveau   du   pharynx.   C,   coupe   transversale   sous   le   pharynx   (Ruppert   and   Barnes  1994).      

(19)

Cependant,  les  Scléractiniaires  se  différencient  des  anémones  par  la  présence   d’un  exosquelette  dur  constitué  de  carbonate  de  calcium  sous  forme  d’aragonite.  De   plus,   les   différents   individus   constituant   la   colonie   sont   interconnectés   par   une   couche  tissulaire  horizontale  appelée  coenosarc  (Mullen  et  al.  2004a)  (Figure  1.2).  

Les   Scléractiniaires   sont   également   qualifiés   d'hermatypiques   ou   plus   exactement   de   zooxanthellés   car   ils   hébergent   au   sein   de   leurs   cellules   gastrodermiques  (endodermiques)  des  organismes  unicellulaires  photosynthétiques   appelées  zooxanthelles  (Figure  1.2,  et  voir  section  I.I.2  symbiose  corail-­‐zooxanthelles,   p.8).   Au   niveau   morphologique,   chez   l’adulte,   il   est   important   de   différencier   les   tissus   oraux,   faisant   face   au   milieu   extérieur,   des   tissus   aboraux,   faisant   face   au   squelette  (Figure  1.2).  

Côté   oral,   l’épiderme   (ectoderme)   possède   les   principaux   types   de   cellules   suivants:   des   cnidocytes,   des   cellules   granulaires   produisant   le   mucus   (appelées   mucocytes)   et   des   cellules   épithélio-­‐musculaires   ciliées   qui   vont   créer   le   courant   muqueux  (Figure  1.3).  Ce  premier  tissu  a  surtout  un  rôle  de  protection  (défense)  et   de  capture  de  proies.  Le  gastroderme  (endoderme)  fait  face  au  coelenteron  (cavité   gastrique)   et   est   principalement   constitué   de   cellules   digestives   et   de   cellules   accueillant   les   symbiosomes,   organites   vacuolaires   hébergeant   les   zooxanthelles   symbiotiques  (Figures  1.2  et  1.3)  (Galloway  et  al.  2007).    

Ensuite,  côté  aboral,  le  gastroderme  joue  le  même  rôle  que  son  homologue   oral  mais  contient  un  nombre  plus  restreint  de  zooxanthelles.  L’épiderme  aboral  fait   face  au  squelette  et  est  d’ailleurs  qualifié  d’épiderme  calicoblastique  (Figure  1.2).  Ce   dernier   va   structurer   le   squelette   via   des   sécrétions   squelettogéniques   et   est   connecté  à  celui-­‐ci  par  des  desmocytes  (Muscatine  et  al.  1997).  

Au   sein   de   la   cavité   gastrique,   les   mésentères   et   leurs   filaments   sont   délimités   de   part   et   d’autres   par   deux   couches   de   gastroderme   séparés   par   de   la   mésoglée  (Mullen  et  al.  2004a)  (Figure  1.2).  

(20)

 

  Figure   1.2   :   Coupe   schématique   à   travers   les   tissus   d’un   madrépore.   A  :   au   niveau   d’un   tentacule,  B  :  au  niveau  du  coenosarc  (Vidal-­‐Dupiol  et  al.  2009a).    

 

(21)

La  mésoglée  consiste  en  une  substance  gélatineuse,  des  fibres  de  collagène   et  quelques  cellules.  Ces  cellules  peuvent  être  des  fibroblastes  sécrétant  la  matrice   et   les   fibres   de   collagène,   ou   des   amoebocytes,   granulaires   ou   non,   ayant   rôle   de   phagocytes.  Certaines  de  ces  cellules  auraient  également  été  identifiées  comme  des   cellules   souches   totipotentes,   capables   de   se   diviser   et   de   se   différencier   en   différents  types  cellulaires  tels  que  des  cnidocytes  ou  des  cellules  germinales  (Mullen   et  al.  2004a);  mais  ces  cellules  mobiles  restent  encore  mal  connues.  

  Figure  1.3  :  Coupe  schématique  à  travers  les  tissus  d’un  Scléractiniaire,  montrant  les  différents   types  de  cellules  caractéristiques  de  chacun  des  tissus  (Galloway  et  al.  2007).  

Les  colonies  de  Scléractiniaires  hermatypiques  peuvent  présenter  différentes   morphologies  ou  configurations  squelettiques  selon  l’espèce,  le  type  de  propagation   (reproduction   asexuée),   la   profondeur   ou   encore   l’hydrodynamisme   (Helmuth   and   Sebens   1993,   Ruppert   and   Barnes   1994,   Veron   2000).   Certaines   sont   branchues,   d’autres   foliacées   ou   encore   massives   (Figure   1.4).   Le   taux   de   croissance   varie  

(22)

énormément,   en   fonction   de   l’espèce   et   de   la   température   de   l’eau   (Ruppert   and   Barnes  1994).    

 

Figure  1.4  :  Différentes  morphologies  que  peuvent  avoir  les  colonies  coralliennes,  base  de  la   structure  du  récif  (Ainsworth  et  al.  2010).  

 

I.I.1.b Cycle  de  vie-­‐reproduction  

La   reproduction   des   Scléractiniaires   est   principalement   asexuée   mais   peut   être  sexuée.  Dans  le  premier  cas,  il  s’agit  alors  de  propagation  clonale  par  division  du   polype   (intratentaculaire)   ou   par   bourgeonnement   de   nouveaux   polypes   (extratentaculaire)   (Figure   1.5).   Dans   le   cas   d’une   reproduction   sexuée,   il   y   a   fécondation   suite   à   la   libération   de   gamètes.   Environ   75   %   des   Scléractiniaires   sont   hermaphrodites  (ex.  Pocillopora  sp.),  alors  que  les  autres  présentent  des  colonies  de   sexes  différents  (i.e.  gonochoriques;  ex.  Goniastrea  sp.)  (Fautin  2002).  

(23)

  Figure   1.5   :   A.   Schéma   d’un   polype   de   madrépore   (section   longitudinale).   B.  

«  Bourgeonnement  »   extratentaculaire.   C.   «  Bourgeonnement  »   intratentaculaire   (Ruppert   and  Barnes  1994).  NB  :  connecting  sheet  =  coenosarc.  

La  plupart  des  coraux  sont  qualifiés  de  «  broadcast  spawners  »  (géniteurs  par   émission)  car  ils  libèrent  leurs  gamètes  (ovules  et  spermatozoïdes)  dans  la  colonne   d’eau   pour   répandre   leur   progéniture.   La   fécondation   se   fera   donc   en   pleine   eau   pour   ensuite   former   une   larve   ciliée   (appelée  planula)   qui   va   dériver   au   grè   des   courants  durant  plusieurs  jours  à  plusieurs  semaines  avant  de  se  métamorphoser  et   de  se  fixer  au  substrat  (Ritson-­‐Williams  et  al.  2009).  Ce  type  de  reproduction  sexuée   a  généralement  lieu  la  nuit,  en  période  de  pleine  lune  et  peut  être  très  synchronisé   entre  espèces  selon  la  région  géographique  (Fautin  and  Mariscal  1991,  Ruppert  and   Barnes  1994,  Fautin  2002).  D’autres  coraux  sont  qualifiés  de  «  brooders  »  (éleveurs)   car   les   spermatozoïdes   libérés   vont   féconder   les   ovules   à   l’intérieur   de   la   colonie  

«  mère  ».   Donc,   dans   ce   deuxième   type   de   reproduction   sexuée,   les   gamètes   femelles   ne   sont   pas   libérés   dans   l’eau   mais   le   corail,   après   fécondation,   va   libérer   une  larve  planula  prête  à  s’établir  sur  le  substrat  (Veron  2000).  

(24)

I.I.2 Symbiose  corail-­‐zooxanthelles  

Les   Scléractiniaires   hébergent   dans   leurs   cellules   gastrodermiques   des   Dinoflagellés  symbiotiques  du  genre  Symbiodinium,  appelées  zooxanthelles,  qui  leur   permettent  d’édifier  des  récifs  en  région  tropicale.  Le  genre  Symbiodinium  est  très   diversifié   et   est   le   genre   de   Dinoflagellés   symbiotiques   le   plus   communément   retrouvé   en   association   avec   des   invertébrés   marins   tels   que   les   cnidaires,   les   plathelminthes,   les   mollusques   et   les   éponges,   et   avec   des   protistes   tels   que   les   foraminifères  ou  certains  radiolaires  (Trench  1979,  Pawlowski  et  al.  2001).  Ce  genre   comprend   8   clades   phylogénétiques   (contenant   eux-­‐mêmes   différents   types   ou   sous-­‐clades),   parfois   désignés   comme   espèces   à   part   entière   (Coffroth   and   Santos   2005,  Stat  et  al.  2006).  Les  coraux  Scléractiniaires  forment  des  symbioses  avec  6  de   ces  clades  (A-­‐D,  F-­‐G,  voir  Annexe  1),  mais  plus  particulièrement  avec  les  clades  A-­‐D   (Baker   2003,   Goulet   2006,   Mieog   et   al.   2009).   Certains   clades   sont   qualifiés   de   thermo-­‐résistants,   comme   les   clades   C   et   D;   d’autres,   par   contre,   ont   des   caractéristiques   plus   opportunistes   tel   que   le   clade   A   (Mieog   et   al.   2009).   Certains   auteurs   pensent   toutefois   que   le   clade   D   serait   plutôt   opportuniste   et   serait   plus   compétitif  que  les  autres  clades  chez  des  coraux  affaiblis  (Stat  and  Gates  2011).  

La  plupart  des  eaux  océaniques  tropicales  sont  oligotrophes  (NO3  <  2  μmol.L-­‐

1,  PO4  <  0,2  μmol.L-­‐1;  (D'Elia  and  Wiebe  1990)),  c’est-­‐à-­‐dire  pauvres  en  sels  nutritifs  et   par   conséquent,   pauvres   en   productions   primaire   (phytoplancton)   et   secondaire   (zooplancton).   Les   coraux   étant   carnivores,   les   apports   de   nourriture   sont   insuffisants   pour   assurer   leur   subsistance   dans   ces   conditions.   La   présence   des   zooxanthelles   leur   est   donc   essentielle.   Les   zooxanthelles   sont   photosynthétiques;  

elles  nécessitent  dès  lors  de  la  lumière  afin  de  pouvoir  réaliser  la  photosynthèse.  Les   zooxanthelles  comblent,  par  cette  voie,  une  grande  partie  des  besoins  énergétiques   de   leur   hôte   corallien   (Trench   1979,   Muscatine   1990)   via   des   photosynthétats   de   formes   diverses  (sucres).   En   échange,   le   corail   procure   à   ses   endosymbiotes,   une   protection  contre  la  prédation  et  les  UV,  et  un  environnement  enrichi  en  CO2  et  en   nutriments   (déchets   métaboliques)   (Muscatine   and   Porter   1977,   Muller-­‐Parker   and   D'Elia   1997).   De   par   cette   symbiose   mutualiste   avec   les   zooxanthelles,   les   coraux   sont  quasiment  autotrophes  au  niveau  du  cycle  du  carbone.  Le  cycle  de  l’azote  est   assuré  par  la  capture  de  pico-­‐  (0,2-­‐2  μm),  nano-­‐  (2-­‐20  μm),  et  microplancton  (20-­‐200   μm)  via  les  cnidocytes  et  le  mucus  produit  par  l’épiderme  (Houlbrèque  et  al.  2004).  

Les   Scléractiniaires   absorbent   également   des   composés   organiques   dissous,   probablement  par  voie  transtégumentaire  (Houlbrèque  and  Ferrier-­‐Pagès  2009).  Ils  

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