APPORT DU FROTTIS SANGUIN DANS LE DIAGNOSTIC DES ANEMIES DE L’ENFANT





 





31

 



MOHAMMED V DE RABAT

FACULTE DE MEDECINE ET DE PHARMACIE - RABAT

DOYENS HONORAIRES :

1962 – 1969 : Professeur Abdelmalek FARAJ

1969 – 1974 : Professeur Abdellatif BERBICH

1974 – 1981 : Professeur Bachir LAZRAK

1981 – 1989 : Professeur Taieb CHKILI

1989 – 1997 : Professeur Mohamed Tahar ALAOUI

1997 – 2003 : Professeur Abdelmajid BELMAHI

2003 - 2013 : Professeur Najia HAJJAJ – HASSOUNI

ADMINISTRATION :

Doyen

Professeur Mohamed ADNAOUI

Vice-Doyen chargé des Affaires Académiques et estudiantines

Professeur Brahim LEKEHAL

Vice-Doyen chargé de la Recherche et de la Coopération

Professeur Toufiq DAKKA

Vice-Doyen chargé des Affaires Spécifiques à la Pharmacie

Professeur Jamal TAOUFIK

Secrétaire Général

1 - ENSEIGNANTS-CHERCHEURS MEDECINS ET PHARMACIENS

PROFESSEURS :

DECEMBRE 1984

Pr. MAAOUNI Abdelaziz Médecine Interne – Clinique Royale

Pr. MAAZOUZI Ahmed Wajdi Anesthésie -Réanimation

Pr. SETTAF Abdellatif Pathologie Chirurgicale

NOVEMBRE ET DECEMBRE 1985

Pr. BENSAID Younes Pathologie Chirurgicale

JANVIER, FEVRIER ET DECEMBRE 1987

Pr. LACHKAR Hassan Médecine Interne

Pr. YAHYAOUI Mohamed Neurologie

DECEMBRE 1989

Pr. ADNAOUI Mohamed Médecine Interne –Doyen de la FMPR

Pr. OUAZZANI Taïbi Mohamed Réda Neurologie

JANVIER ET NOVEMBRE 1990

Pr. HACHIM Mohammed* Médecine-Interne

Pr. KHARBACH Aîcha Gynécologie -Obstétrique

Pr. TAZI Saoud Anas Anesthésie Réanimation

FEVRIER AVRIL JUILLET ET DECEMBRE 1991 Pr. AZZOUZI Abderrahim Anesthésie Réanimation- Doyen de FMPO

Pr. BAYAHIA Rabéa Néphrologie

Pr. BELKOUCHI Abdelkader Chirurgie Générale

Pr. BENCHEKROUN Belabbes Abdellatif Chirurgie Générale

Pr. BENSOUDA Yahia Pharmacie galénique

Pr. BERRAHO Amina Ophtalmologie

Pr. BEZAD Rachid Gynécologie Obstétrique Méd. Chef Maternité des

Orangers

Pr. CHERRAH Yahia Pharmacologie

Pr. CHOKAIRI Omar Histologie Embryologie

Pr. KHATTAB Mohamed Pédiatrie

Pr. SOULAYMANI Rachida Pharmacologie- Dir. du Centre National PV Rabat Pr. TAOUFIK Jamal Chimie thérapeutique V.D à la pharmacie+Dir. du CEDOC +

DECEMBRE 1992

Pr. AHALLAT Mohamed Chirurgie Générale Doyen de FMPT

Pr. BENSOUDA Adil Anesthésie Réanimation

Pr. CHAHED OUAZZANI Laaziza Gastro-Entérologie

Pr. CHRAIBI Chafiq Gynécologie Obstétrique

Pr. EL OUAHABI Abdessamad Neurochirurgie

Pr. FELLAT Rokaya Cardiologie

Pr. GHAFIR Driss* Médecine Interne

Pr. JIDDANE Mohamed Anatomie

Pr. TAGHY Ahmed Chirurgie Générale

Pr. ZOUHDI Mimoun Microbiologie

MARS 1994

Pr. BENJAAFAR Noureddine Radiothérapie

Pr. BEN RAIS Nozha Biophysique

Pr. CAOUI Malika Biophysique

Pr. CHRAIBI Abdelmjid

Endocrinologie et Maladies Métaboliques Doyen de la

FMPA

Pr. EL AMRANI Sabah Gynécologie Obstétrique Pr. EL BARDOUNI Ahmed Traumato-Orthopédie Pr. EL HASSANI My Rachid Radiologie

Pr. ERROUGANI Abdelkader Chirurgie Générale – Directeur du CHIS-Rabat

Pr. ESSAKALI Malika Immunologie

Pr. ETTAYEBI Fouad Chirurgie Pédiatrique

Pr. HASSAM Badredine Dermatologie

Pr. IFRINE Lahssan Chirurgie Générale

Pr. MAHFOUD Mustapha Traumatologie – Orthopédie

Pr. RHRAB Brahim Gynécologie –Obstétrique

Pr. SENOUCI Karima Dermatologie

MARS 1994

Pr. ABBAR Mohamed* Urologie Directeur Hôpital My Ismail Meknès Pr. ABDELHAK M’barek Chirurgie – Pédiatrique

Pr. BENTAHILA Abdelali Pédiatrie

Pr. BENYAHIA Mohammed Ali Gynécologie – Obstétrique Pr. BERRADA Mohamed Saleh Traumatologie – Orthopédie Pr. CHERKAOUI Lalla Ouafae Ophtalmologie

Pr. LAKHDAR Amina Gynécologie Obstétrique

Pr. MOUANE Nezha Pédiatrie

MARS 1995

Pr. ABOUQUAL Redouane Réanimation Médicale

Pr. AMRAOUI Mohamed Chirurgie Générale

Pr. BARGACH Samir Gynécologie Obstétrique Pr. DRISSI KAMILI Med Nordine* Anesthésie Réanimation Pr. EL MESNAOUI Abbes Chirurgie Générale Pr. ESSAKALI HOUSSYNI Leila Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. HDA Abdelhamid* Cardiologie Inspecteur du Service de Santé des FAR Pr. IBEN ATTYA ANDALOUSSI Ahmed Urologie

Pr. OUAZZANI CHAHDI Bahia Ophtalmologie

Pr. SEFIANI Abdelaziz Génétique

Pr. ZEGGWAGH Amine Ali Réanimation Médicale

DECEMBRE 1996

Pr. AMIL Touriya* Radiologie

Pr. BELKACEM Rachid Chirurgie Pédiatrie Pr. BOULANOUAR Abdelkrim Ophtalmologie Pr. EL ALAMI EL FARICHA EL Hassan Chirurgie Générale

Pr. GAOUZI Ahmed Pédiatrie

Pr. MAHFOUDI M’barek* Radiologie

Pr. OUZEDDOUN Naima Néphrologie

Pr. ZBIR EL Mehdi* Cardiologie DirecteurHôp.Mil. d’Instruction Med V Rabat

NOVEMBRE 1997

Pr. ALAMI Mohamed Hassan Gynécologie-Obstétrique

Pr. BEN SLIMANE Lounis Urologie

Pr. BIROUK Nazha Neurologie

Pr. ERREIMI Naima Pédiatrie

Pr. FELLAT Nadia Cardiologie

Pr. KADDOURI Noureddine Chirurgie Pédiatrique

Pr. KOUTANI Abdellatif Urologie

Pr. LAHLOU Mohamed Khalid Chirurgie Générale

Pr. MAHRAOUI CHAFIQ Pédiatrie

Pr. TOUFIQ Jallal Psychiatrie Directeur Hôp.Ar-razi Salé

Pr. YOUSFI MALKI Mounia Gynécologie Obstétrique

NOVEMBRE 1998

Pr. BENOMAR ALI Neurologie Doyen de la FMP Abulcassis Pr. BOUGTAB Abdesslam Chirurgie Générale

Pr. ER RIHANI Hassan Oncologie Médicale

Pr. BENKIRANE Majid* Hématologie

JANVIER 2000

Pr. ABID Ahmed* Pneumo-phtisiologie

Pr. AIT OUAMAR Hassan Pédiatrie

Pr. BENJELLOUN Dakhama Badr.Sououd Pédiatrie

Pr. BOURKADI Jamal-Eddine Pneumo-phtisiologie Directeur Hôp. My Youssef Pr. CHARIF CHEFCHAOUNI Al Montacer Chirurgie Générale

Pr. ECHARRAB El Mahjoub Chirurgie Générale Pr. EL FTOUH Mustapha Pneumo-phtisiologie

Pr. EL MOSTARCHID Brahim* Neurochirurgie

Pr. MAHMOUDI Abdelkrim* Anesthésie-Réanimation Pr. TACHINANTE Rajae Anesthésie-Réanimation Pr. TAZI MEZALEK Zoubida Médecine Interne

NOVEMBRE 2000

Pr. AIDI Saadia Neurologie

Pr. AJANA Fatima Zohra Gastro-Entérologie

Pr. BENAMR Said Chirurgie Générale

Pr. CHERTI Mohammed Cardiologie

Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Selma Anesthésie-Réanimation

Pr. EL HASSANI Amine Pédiatrie - Directeur Hôp.Cheikh Zaid

Pr. EL KHADER Khalid Urologie

Pr. EL MAGHRAOUI Abdellah* Rhumatologie

Pr. GHARBI Mohamed El Hassan Endocrinologie et Maladies Métaboliques

Pr. MDAGHRI ALAOUI Asmae Pédiatrie

Pr. ROUIMI Abdelhadi* Neurologie

DECEMBRE 2000

Pr.ZOHAIR ABDELLAH * ORL

Pr. BALKHI Hicham* Anesthésie-Réanimation

Pr. BENABDELJLIL Maria Neurologie

Pr. BENAMAR Loubna Néphrologie

Pr. BENAMOR Jouda Pneumo-phtisiologie

Pr. BENELBARHDADI Imane Gastro-Entérologie

Pr. BENNANI Rajae Cardiologie

Pr. BENOUACHANE Thami Pédiatrie

Pr. BEZZA Ahmed* Rhumatologie

Pr. BOUCHIKHI IDRISSI Med Larbi Anatomie Pr. BOUMDIN El Hassane* Radiologie

Pr. CHAT Latifa Radiologie

Pr. DAALI Mustapha* Chirurgie Générale

Pr. DRISSI Sidi Mourad* Radiologie

Pr. EL HIJRI Ahmed Anesthésie-Réanimation

Pr. EL MAAQILI Moulay Rachid Neuro-Chirurgie

Pr. EL MADHI Tarik Chirurgie-Pédiatrique

Pr. EL OUNANI Mohamed Chirurgie Générale

Pr. ETTAIR Said Pédiatrie - Directeur Hôp. d’EnfantsRabat

Pr. GAZZAZ Miloudi* Neuro-Chirurgie

Pr. HRORA Abdelmalek Chirurgie Générale

Pr. KABIRI EL Hassane* Chirurgie Thoracique Pr. LAMRANI Moulay Omar Traumatologie Orthopédie

Pr. LEKEHAL Brahim Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. MAHASSIN Fattouma* Médecine Interne

Pr. MEDARHRI Jalil Chirurgie Générale

Pr. MIKDAME Mohammed* Hématologie Clinique

Pr. MOHSINE Raouf Chirurgie Générale

Pr. NOUINI Yassine Urologie - Directeur Hôpital Ibn Sina

Pr. SABBAH Farid Chirurgie Générale

Pr. SEFIANI Yasser Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. TAOUFIQ BENCHEKROUN Soumia Pédiatrie

DECEMBRE 2002

Pr. AL BOUZIDI Abderrahmane* Anatomie Pathologique

Pr. AMEUR Ahmed * Urologie

Pr. AMRI Rachida Cardiologie

Pr. AOURARH Aziz* Gastro-Entérologie

Pr. BAMOU Youssef * Biochimie-Chimie

Pr. BELMEJDOUB Ghizlene* Endocrinologie et Maladies Métaboliques

Pr. BENZEKRI Laila Dermatologie

Pr. BENZZOUBEIR Nadia Gastro-Entérologie Pr. BERNOUSSI Zakiya Anatomie Pathologique Pr. BICHRA Mohamed Zakariya* Psychiatrie

Pr. CHOHO Abdelkrim * Chirurgie Générale

Pr. CHKIRATE Bouchra Pédiatrie

Pr. EL ALAMI EL Fellous Sidi Zouhair Chirurgie Pédiatrique Pr. EL HAOURI Mohamed * Dermatologie

Pr. FILALI ADIB Abdelhai Gynécologie Obstétrique

Pr. HAJJI Zakia Ophtalmologie

Pr. IKEN Ali Urologie

Pr. JAAFAR Abdeloihab* Traumatologie Orthopédie

Pr. KRIOUILE Yamina Pédiatrie

Pr. MABROUK Hfid* Traumatologie Orthopédie

Pr. MOUSSAOUI RAHALI Driss* Gynécologie Obstétrique Pr. OUJILAL Abdelilah Oto-Rhino-Laryngologie Pr. RACHID Khalid * Traumatologie Orthopédie

Pr. RAISS Mohamed Chirurgie Générale

Pr. RGUIBI IDRISSI Sidi Mustapha* Pneumo-phtisiologie

Pr. RHOU Hakima Néphrologie

Pr. SIAH Samir * Anesthésie Réanimation

Pr. THIMOU Amal Pédiatrie

JANVIER 2004

Pr. ABDELLAH El Hassan Ophtalmologie

Pr. AMRANI Mariam Anatomie Pathologique

Pr. BENBOUZID Mohammed Anas Oto-Rhino-Laryngologie Pr. BENKIRANE Ahmed* Gastro-Entérologie

Pr. BOULAADAS Malik Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale

Pr. BOURAZZA Ahmed* Neurologie

Pr. CHAGAR Belkacem* Traumatologie Orthopédie

Pr. CHERRADI Nadia Anatomie Pathologique

Pr. EL FENNI Jamal* Radiologie

Pr. EL HANCHI ZAKI Gynécologie Obstétrique Pr. EL KHORASSANI Mohamed Pédiatrie

Pr. EL YOUNASSI Badreddine* Cardiologie

Pr. HACHI Hafid Chirurgie Générale

Pr. JABOUIRIK Fatima Pédiatrie

Pr. KHARMAZ Mohamed Traumatologie Orthopédie Pr. MOUGHIL Said Chirurgie Cardio-Vasculaire Pr. OUBAAZ Abdelbarre * Ophtalmologie

Pr. TARIB Abdelilah* Pharmacie Clinique

Pr. TIJAMI Fouad Chirurgie Générale

Pr. ZARZUR Jamila Cardiologie

JANVIER 2005

Pr. ABBASSI Abdellah Chirurgie Réparatrice et Plastique Pr. AL KANDRY Sif Eddine* Chirurgie Générale

Pr. ALLALI Fadoua Rhumatologie

Pr. AMAZOUZI Abdellah Ophtalmologie

Pr. AZIZ Noureddine* Radiologie

Pr. BAHIRI Rachid Rhumatologie Directeur Hôp. Al Ayachi Salé

Pr. BARKAT Amina Pédiatrie

Pr. BENYASS Aatif Cardiologie

Pr. DOUDOUH Abderrahim* Biophysique

Pr. EL HAMZAOUI Sakina * Microbiologie

Pr. HAJJI Leila Cardiologie (mise en disponibilité

Pr. HESSISSEN Leila Pédiatrie

Pr. JIDAL Mohamed* Radiologie

Pr. LAAROUSSI Mohamed Chirurgie Cardio-vasculaire

Pr. LYAGOUBI Mohammed Parasitologie

Pr. RAGALA Abdelhak Gynécologie Obstétrique

Pr. SBIHI Souad Histo-Embryologie Cytogénétique

AVRIL 2006

Pr. ACHEMLAL Lahsen* Rhumatologie

Pr. AKJOUJ Said* Radiologie

Pr. BELMEKKI Abdelkader* Hématologie

Pr. BENCHEIKH Razika O.R.L

Pr. BIYI Abdelhamid* Biophysique

Pr. BOUHAFS Mohamed El Amine Chirurgie - Pédiatrique

Pr. BOULAHYA Abdellatif* Chirurgie Cardio – Vasculaire. Pr. CHENGUETI ANSARI Anas Gynécologie Obstétrique

Pr. DOGHMI Nawal Cardiologie

Pr. FELLAT Ibtissam Cardiologie

Pr. FAROUDY Mamoun Anesthésie Réanimation

Pr. HARMOUCHE Hicham Médecine Interne

Pr. HANAFI Sidi Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr. IDRISS LAHLOU Amine* Microbiologie

Pr. JROUNDI Laila Radiologie

Pr. KARMOUNI Tariq Urologie

Pr. KILI Amina Pédiatrie

Pr. KISRA Hassan Psychiatrie

Pr. KISRA Mounir Chirurgie – Pédiatrique

Pr. LAATIRIS Abdelkader* Pharmacie Galénique Pr. LMIMOUNI Badreddine* Parasitologie

Pr. MANSOURI Hamid* Radiothérapie

Pr. OUANASS Abderrazzak Psychiatrie

Pr. SAFI Soumaya* Endocrinologie

Pr. SEKKAT Fatima Zahra Psychiatrie

Pr. SOUALHI Mouna Pneumo – Phtisiologie

Pr. TELLAL Saida* Biochimie

Pr. ZAHRAOUI Rachida Pneumo – Phtisiologie

DECEMBRE 2006

Pr SAIR Khalid Chirurgie générale Dir. Hôp.Av.Marrakech

OCTOBRE 2007

Pr. ABIDI Khalid Réanimation médicale

Pr. ACHACHI Leila Pneumo phtisiologie

Pr. ACHOUR Abdessamad* Chirurgie générale

Pr. AIT HOUSSA Mahdi * Chirurgie cardio vasculaire Pr. AMHAJJI Larbi * Traumatologie orthopédie

Pr. AOUFI Sarra Parasitologie

Pr. BAITE Abdelouahed * Anesthésie réanimation Directeur ERSSM Pr. BALOUCH Lhousaine * Biochimie-chimie

Pr. BOUTIMZINE Nourdine Ophtalmologie Pr. CHERKAOUI Naoual * Pharmacie galénique Pr. EHIRCHIOU Abdelkader * Chirurgie générale

Pr. EL BEKKALI Youssef * Chirurgie cardio-vasculaire Pr. EL ABSI Mohamed Chirurgie générale

Pr. EL MOUSSAOUI Rachid Anesthésie réanimation

Pr. EL OMARI Fatima Psychiatrie

Pr. GHARIB Noureddine Chirurgie plastique et réparatrice

Pr. HADADI Khalid * Radiothérapie

Pr. ICHOU Mohamed * Oncologie médicale

Pr. ISMAILI Nadia Dermatologie

Pr. KEBDANI Tayeb Radiothérapie

Pr. LALAOUI SALIM Jaafar * Anesthésie réanimation

Pr. LOUZI Lhoussain * Microbiologie

Pr. MADANI Naoufel Réanimation médicale

Pr. MAHI Mohamed * Radiologie

Pr. MARC Karima Pneumo phtisiologie

Pr. MASRAR Azlarab Hématologie biologique

Pr. MRANI Saad * Virologie

Pr. OUZZIF Ez zohra * Biochimie-chimie

Pr. RABHI Monsef * Médecine interne

Pr. RADOUANE Bouchaib* Radiologie

Pr. SEFFAR Myriame Microbiologie

Pr. SEKHSOKH Yessine * Microbiologie

Pr. SIFAT Hassan * Radiothérapie

Pr. TABERKANET Mustafa * Chirurgie vasculaire périphérique

Pr. TACHFOUTI Samira Ophtalmologie

Pr. TAJDINE Mohammed Tariq* Chirurgie générale Pr. TANANE Mansour * Traumatologie-orthopédie

Pr. TLIGUI Houssain Parasitologie

Pr. TOUATI Zakia Cardiologie

DECEMBRE 2008

Pr TAHIRI My El Hassan* Chirurgie Générale

MARS 2009

Pr. ABOUZAHIR Ali * Médecine interne

Pr. AGADR Aomar * Pédiatrie

Pr. AIT ALI Abdelmounaim * Chirurgie Générale Pr. AIT BENHADDOU El Hachmia Neurologie

Pr. AKHADDAR Ali * Neuro-chirurgie

Pr. ALLALI Nazik Radiologie

Pr. ARKHA Yassir Neuro-chirurgie Directeur Hôp.des Spécialités Pr. BELYAMANI Lahcen* Anesthésie Réanimation

Pr. BJIJOU Younes Anatomie

Pr. BOUHSAIN Sanae * Biochimie-chimie

Pr. BOUI Mohammed * Dermatologie

Pr. BOUNAIM Ahmed * Chirurgie Générale

Pr. BOUSSOUGA Mostapha * Traumatologie-orthopédie

Pr. CHTATA Hassan Toufik * Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. DOGHMI Kamal * Hématologie clinique

Pr. EL MALKI Hadj Omar Chirurgie Générale Pr. EL OUENNASS Mostapha* Microbiologie

Pr. ENNIBI Khalid * Médecine interne

Pr. FATHI Khalid Gynécologie obstétrique

Pr. HASSIKOU Hasna * Rhumatologie

Pr. KABBAJ Nawal Gastro-entérologie

Pr. KABIRI Meryem Pédiatrie

Pr. KARBOUBI Lamya Pédiatrie

Pr. LAMSAOURI Jamal * Chimie Thérapeutique Pr. MARMADE Lahcen Chirurgie Cardio-vasculaire

Pr. MESKINI Toufik Pédiatrie

Pr. MESSAOUDI Nezha * Hématologie biologique

Pr. MSSROURI Rahal Chirurgie Générale

Pr. NASSAR Ittimade Radiologie

Pr. OUKERRAJ Latifa Cardiologie

Pr. RHORFI Ismail Abderrahmani * Pneumo-Phtisiologie

OCTOBRE 2010

Pr. ALILOU Mustapha Anesthésie réanimation

Pr. AMEZIANE Taoufiq* Médecine Interne

Pr. BELAGUID Abdelaziz Physiologie

Pr. CHADLI Mariama* Microbiologie

Pr. CHEMSI Mohamed* Médecine Aéronautique

Pr. DAMI Abdellah* Biochimie- Chimie

Pr. DARBI Abdellatif* Radiologie

Pr. DENDANE Mohammed Anouar Chirurgie Pédiatrique

Pr. EL HAFIDI Naima Pédiatrie

Pr. EL KHARRAS Abdennasser* Radiologie

Pr. EL MAZOUZ Samir Chirurgie Plastique et Réparatrice

Pr. EL SAYEGH Hachem Urologie

Pr. ERRABIH Ikram Gastro-Entérologie

Pr. LAMALMI Najat Anatomie Pathologique

Pr. MOSADIK Ahlam Anesthésie Réanimation

Pr. MOUJAHID Mountassir* Chirurgie Générale

Pr. NAZIH Mouna* Hématologie

DECEMBRE 2010

Pr.ZNATI Kaoutar Anatomie Pathologique

MAI 2012

Pr. AMRANI Abdelouahed Chirurgie pédiatrique Pr. ABOUELALAA Khalil * Anesthésie Réanimation Pr. BENCHEBBA Driss * Traumatologie-orthopédie Pr. DRISSI Mohamed * Anesthésie Réanimation Pr. EL ALAOUI MHAMDI Mouna Chirurgie Générale Pr. EL KHATTABI Abdessadek * Médecine Interne Pr. EL OUAZZANI Hanane * Pneumophtisiologie

Pr. ER-RAJI Mounir Chirurgie Pédiatrique

Pr. JAHID Ahmed Anatomie Pathologique

Pr. MEHSSANI Jamal * Psychiatrie

Pr. RAISSOUNI Maha * Cardiologie

* Enseignants Militaires FEVRIER 2013

Pr.AHID Samir Pharmacologie

Pr.AIT EL CADI Mina Toxicologie

Pr.AMRANI HANCHI Laila Gastro-Entérologie

Pr.AMOR Mourad Anesthésie Réanimation

Pr.AWAB Almahdi Anesthésie Réanimation

Pr.BELAYACHI Jihane Réanimation Médicale

Pr.BELKHADIR Zakaria Houssain Anesthésie Réanimation

Pr.BENCHEKROUN Laila Biochimie-Chimie

Pr.BENKIRANE Souad Hématologie

Pr.BENNANA Ahmed* Informatique Pharmaceutique Pr.BENSGHIR Mustapha * Anesthésie Réanimation

Pr.BENYAHIA Mohammed * Néphrologie

Pr.BOUATIA Mustapha Chimie Analytique et Bromatologie Pr.BOUABID Ahmed Salim* Traumatologie orthopédie

Pr BOUTARBOUCH Mahjouba Anatomie

Pr.CHAIB Ali * Cardiologie

Pr.DENDANE Tarek Réanimation Médicale

Pr.DINI Nouzha * Pédiatrie

Pr.ECH-CHERIF EL KETTANI Mohamed Ali Anesthésie Réanimation Pr.ECH-CHERIF EL KETTANI Najwa Radiologie

Pr.EL FATEMI NIZARE Neuro-chirurgie

Pr.EL GUERROUJ Hasnae Médecine Nucléaire

Pr.EL JAOUDI Rachid * Toxicologie

Pr.EL KABABRI Maria Pédiatrie

Pr.EL KHANNOUSSI Basma Anatomie Pathologique

Pr.EL KHLOUFI Samir Anatomie

Pr.EL KORAICHI Alae Anesthésie Réanimation

Pr.EN-NOUALI Hassane * Radiologie

Pr.ERRGUIG Laila Physiologie

Pr.FIKRI Meryem Radiologie

Pr.GHFIR Imade Médecine Nucléaire

Pr.IMANE Zineb Pédiatrie

Pr.IRAQI Hind Endocrinologie et maladies métaboliques

Pr.KABBAJ Hakima Microbiologie

Pr.KADIRI Mohamed * Psychiatrie

Pr.MAAMAR Mouna Fatima Zahra Médecine Interne

Pr.MEDDAH Bouchra Pharmacologie

Pr.MELHAOUI Adyl Neuro-chirurgie

Pr.MRABTI Hind Oncologie Médicale

Pr.NEJJARI Rachid Pharmacognosie

Pr.OUBEJJA Houda Chirugie Pédiatrique

Pr.OUKABLI Mohamed * Anatomie Pathologique

Pr.RAHALI Younes Pharmacie Galénique

Pr.RATBI Ilham Génétique

Pr.RAHMANI Mounia Neurologie

Pr.REDA Karim * Ophtalmologie

Pr.REGRAGUI Wafa Neurologie

Pr.RKAIN Hanan Physiologie

Pr.ROSTOM Samira Rhumatologie

Pr.ROUAS Lamiaa Anatomie Pathologique

Pr.ROUIBAA Fedoua * Gastro-Entérologie

Pr SALIHOUN Mouna Gastro-Entérologie

Pr.SAYAH Rochde Chirurgie Cardio-Vasculaire

Pr.SEDDIK Hassan * Gastro-Entérologie

Pr.ZERHOUNI Hicham Chirurgie Pédiatrique

AVRIL 2013

Pr.EL KHATIB MOHAMED KARIM * Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale

MAI 2013

Pr.BOUSLIMAN Yassir Toxicologie

MARS 2014

Pr. ACHIR Abdellah Chirurgie Thoracique

Pr.BENCHAKROUN Mohammed * Traumatologie- Orthopédie

Pr.BOUCHIKH Mohammed Chirurgie Thoracique

Pr. EL KABBAJ Driss * Néphrologie

Pr. EL MACHTANI IDRISSI Samira * Biochimie-Chimie

Pr. HARDIZI Houyam Histologie- Embryologie-Cytogénétique

Pr. HASSANI Amale * Pédiatrie

Pr. HERRAK Laila Pneumologie

Pr. JANANE Abdellah * Urologie

Pr. JEAIDI Anass * Hématologie Biologique

Pr. KOUACH Jaouad* Gynécologie-Obstétrique

Pr. LEMNOUER Abdelhay* Microbiologie

Pr. MAKRAM Sanaa * Pharmacologie

Pr. OULAHYANE Rachid* Chirurgie Pédiatrique

Pr. RHISSASSI Mohamed Jaafar CCV

Pr. SABRY Mohamed* Cardiologie

Pr. SEKKACH Youssef* Médecine Interne

Pr. TAZI MOUKHA Zakia Gynécologie-Obstétrique

AVRIL 2014

PROFESSEURS AGREGES :

DECEMBRE 2014

Pr. ABILKASSEM Rachid* Pédiatrie

Pr. AIT BOUGHIMA Fadila Médecine Légale

Pr. BEKKALI Hicham * Anesthésie-Réanimation

Pr. BENAZZOU Salma Chirurgie Maxillo-Faciale

Pr. BOUABDELLAH Mounya Biochimie-Chimie

Pr. BOUCHRIK Mourad* Parasitologie

Pr. DERRAJI Soufiane* Pharmacie Clinique

Pr. DOBLALI Taoufik* Microbiologie

Pr. EL AYOUBI EL IDRISSI Ali Anatomie

Pr. EL GHADBANE Abdedaim Hatim* Anesthésie-Réanimation

Pr. EL MARJANY Mohammed* Radiothérapie

Pr. FEJJAL Nawfal Chirurgie Réparatrice et Plastique

Pr. JAHIDI Mohamed* O.R.L

Pr. LAKHAL Zouhair* Cardiologie

Pr. OUDGHIRI NEZHA Anesthésie-Réanimation

Pr. RAMI Mohamed Chirurgie Pédiatrique

Pr. SABIR Maria Psychiatrie

Pr. SBAI IDRISSI Karim* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

AOUT 2015

Pr. MEZIANE Meryem Dermatologie

Pr. TAHRI Latifa Rhumatologie

JANVIER 2016

Pr. BENKABBOU Amine Chirurgie Générale

Pr. EL ASRI Fouad* Ophtalmologie

Pr. ERRAMI Noureddine* O.R.L

Pr. NITASSI Sophia O.R.L

JUIN 2017

Pr. ABI Rachid* Microbiologie

Pr. ASFALOU Ilyasse* Cardiologie

Pr. BOUAYTI El Arbi* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. BOUTAYEB Saber Oncologie Médicale

Pr. EL GHISSASSI Ibrahim Oncologie Médicale

Pr. OURAINI Saloua* O.R.L

Pr. RAZINE Rachid Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. ZRARA Abdelhamid* Immunologie

2 - ENSEIGNANTS-CHERCHEURS SCIENTIFIQUES

PROFESSEURS/Prs. HABILITES

Pr. ABOUDRAR Saadia Physiologie

Pr. ALAMI OUHABI Naima Biochimie-chimie

Pr. ALAOUI KATIM Pharmacologie

Pr. ALAOUI SLIMANI Lalla Naïma Histologie-Embryologie

Pr. ANSAR M’hammed Chimie Organique et Pharmacie Chimique

Pr .BARKIYOU Malika Histologie-Embryologie

Pr. BOUHOUCHE Ahmed Génétique Humaine

Pr. BOUKLOUZE Abdelaziz Applications Pharmaceutiques Pr. CHAHED OUAZZANI Lalla Chadia Biochimie-chimie

Pr. DAKKA Taoufiq Physiologie

Pr. FAOUZI Moulay El Abbes Pharmacologie

Pr. IBRAHIMI Azeddine Biologie moléculaire/Biotechnologie

Pr. KHANFRI Jamal Eddine Biologie

Pr. OULAD BOUYAHYA IDRISSI Med Chimie Organique

Pr. REDHA Ahlam Chimie

Pr. TOUATI Driss Pharmacognosie

Pr. ZAHIDI Ahmed Pharmacologie

Mise à jour le 10/10/2018 Khaled Abdellah

A mon très cher père Dr Adjou:

A celui qui m’a entouré d’attention, m’a appris les valeurs nobles de la vie,

de l’honnêteté et de la responsabilité.

Merci d’être toujours là pour moi, un soutien inconditionnel tout au long

de mes études.

Tu as été et tu seras toujours un exemple à suivre pour tes qualités

humaines et ta persévérance.

Aucune dédicace ne serait exprimer ma reconnaissance et mon amour

éternel pour les sacrifices que tu as consenti pour mon éducation.

J’espère de tout cœur que cette thèse t’apporte la joie de voir aboutir tes

espoirs Puisse dieu, le tout puissant, te préserver et t’accorder santé,

longue vie et bonheur.

A ma très chère mère

Tu es pour moi le symbole de la bonté par excellence, la source de tendresse

et l’exemple du dévouement.

Aucune dédicace ne pourrait être assez éloquente pour exprimer ce que tu

mérites.

Je te dédie ce travail en témoignage de mon profond amour.

Puisse Allah, te protéger et te procurer santé et longue vie.

A mon merveilleux frère Fahd.

Merci de me supporter, de m’encourager et de croire inconditionnellement

en moi.

Je te dédie ce modeste travail en témoignage de l’amour, l’affection et

l’attachement que je te porte.

A ma grand-mère paternelle

Je te remercie infiniment pour tes encouragements et tes prières tout au

long de mon parcours.

Puisse Dieu te préserver du mal, te comble de santé et de bonheur.

A la mémoire de mes grands-parents maternels et de

mon grand-père paternel

Qui sont toujours dans mon cœur et mon esprit et qui le seront à tout

jamais

Je vous dédie aujourd’hui ce travail.

Que dieu, le miséricordieux, vous accueille dans son éternel paradis.

A mes très chères amies

Ichraq Achour, Najoua Ahjiej, Lina Guennoun

En souvenir des instants merveilleux que nous avons passés.

Un grand merci pour votre soutien, vos encouragements et votre appui.

Avec toute mon affection, je vous souhaite une vie pleine de bonheur et de

succès.

Je prie Dieu, pour que notre amitié soit éternelle.

A tous mes maîtres de l’enseignement primaire,

secondaire et supérieur.

A tous ceux qui ont contribué de près ou de loin à

l’élaboration de ce travail.

A

Notre maître et président de thèse

Mr. le Professeur Ahmed GAOUZI

Professeur de Pédiatrie

Vous m’avez accordé un immense honneur et un grand privilège en

acceptant la présidence du jury de cette thèse.

Veuillez trouver Monsieur et cher Maître dans ce travail, le témoignage de

ma profonde gratitude, considération et grande estime.

A

Notre maître et directeur de thèse

Mr. Le professeur Mohamed El Khorassani

Professeur de pédiatrie

Merci pour m’avoir accueilli dans votre service et pour m’avoir accepté ce

sujet de thèse, pour la confiance que vous m’avez accordée du début à la

fin du travail et pour votre disponibilité.

Vous n’avez jamais lésiné ni sur votre temps ni sur votre savoir tout le

long de ce travail.

Merci pour votre soutien, votre patience, et votre optimisme infaillible.

Je n’oublie pas enfin votre aide précieuse dans la relecture et la correction

de ma thèse.

Je vous prie de trouver ici, cher Professeur, le témoignage de ma profonde

reconnaissance et de mon immense respect.

A

Notre maître et juge de thèse

Mr. Azlarab MASRAR

Professeur d’hématologie biologique

Je vous remercie énormément de l’honneur que vous me faites en acceptant

de juger ce travail.

Veuillez recevoir ici Monsieur et Cher Maître l’expression de mes vifs

remerciements, ma profonde reconnaissance et grande estime.

A

Notre maître et juge de thèse

Madame Le Professeur Maria El KABABRI

Vous me faites aujourd’hui un grand honneur en acceptant de faire partie

du jury de cette thèse.

Veuillez recevoir ici chère Maître l’expression de ma profonde gratitude et

grande estime.

A

Notre maître et juge de thèse

Mr. Le Professeur Aomar AGADR

Professeur de Pédiatrie

Je vous remercie profondément de l’honneur que vous nous faites en

acceptant de siéger parmi le jury de cette thèse.

Puisse ce travail témoigner de ma profonde reconnaissance et grande

estime. Veuillez croire à mes sincères remerciements.

Liste des abréviations :

EDTA : Acide éthylène diamine tétraacétique

NFS : Numération formule sanguine

Hb : Hémoglobine

Ht : Hématocrite

VGM : Volume globulaire moyen

TCMH : Teneur corpusculaire moyenne en hémoglobine

CCMH : Concentration corpusculaire moyenne en hémoglobine

MGG : May-Grünwald-Giemsa

MCDh : Micro Chromatic Detection for Haematology

RFID : Identification par radiofréquence

RDW-CV : Red cell distribution width

DS : Déviation standard

GR : Globule rouge

Epo : Erythropoïétine

ADN : Acide désoxyribonucléique

µm : Micromètre

G6PD : Glucose-6-phosphate déshydrogénase

RGO : Reflux gastro-œsophagien

AINS : Anti-inflammatoire non stéroïdien

SMG : Splénomégalie

fL : Femtolitre

pg : Picogramme

UMP : Uridine monophosphate

ARN : Acide ribonucléique

PK : Pyruvate Kinase

pH : Potentiel hydrogène

AHAI : Anémie hémolytique auto-immune

Liste

Liste des figures :

Figure 1: Tube EDTA. ...7 Figure 2: Confection du frottis sanguin. ... 12 Figure 3: Automate Sysmex SP-1000i du Laboratoire Central d’Hématologie du CHU

Ibn Sina de Rabat. ... 13

Figure 4: Frottis de bonne qualité. ... 14 Figure 5: Zones du frottis sanguin. ... 14 Figure 6: KIT RAL STAINER MCDh. ... 21 Figure 7: Automate semi automatique RAL STAINER du Laboratoire Central

d’Hématologie de CHU Ibn Sina de Rabat. ... 22

Figure 8: Répartition des patients selon le sexe. ... 25 Figure 9: Répartition des patients selon l’âge. ... 26 Figure 10: Répartition des cas selon le taux d’Hb... 27 Figure 11: Les différents aspects du VGM trouvé à l’hémogramme. ... 28 Figure 12: L’érythropoïèse. ... 41 Figure 13: GR vue de profil et de face... 44 Figure 14: Globules rouges au microscope à balayage électronique mettant en

évidence leur aspect biconcave. ... 44

Figure 15: Schéma de la structure interne du globule rouge. ... 44 Figure 16: Pâleur conjonctivo-palmaire... 46 Figure 17: Etiologies de l’anémie de l’enfant. ... 51 Figure 18: Exemple de frottis montrant des macrocytes (89 éme cas de notre étude).

... 59

Figure 19: Annulocytes. ... 60 Figure 20: Schizocyte (42 éme cas de notre étude). ... 61 Figure 21: Elliptocyte (75 éme cas de notre étude). ... 61 Figure 22: Exemple de frottis sanguin arborant des dacryocytes (18 éme cas de notre

étude). ... 62

Figure 23: Stomatocytes (38 éme cas de notre étude). ... 63 Figure 24: Exemple de frottis sanguin montrant des acanthocytes. (71 éme cas de

notre étude) ... 64

Figure 25: Hématies cibles. ... 65 Figure 26: Echinocytes et acanthocytes (23 éme cas de notre étude). ... 66 Figure 27: Drépanocytes (56 éme cas de notre étude). ... 67

Figure 28: Exemple de frottis sanguin montrant des sphérocytes. (72 éme cas de notre

étude). ... 68

Figure 29: Hématies fantômes. ... 69 Figure 30: Ponctuations basophiles. ... 71

Liste des tableaux :

Tableau I: Indications cliniques nécessitant la réalisation du frottis sanguin. ...10

Tableau II: Classification générale selon le VGM et la CCMH. ...29

Tableau III: Les anomalies érythrocytaires perçues durant notre étude du frottis

sanguin de 100 nourrissons et enfants anémiques. ...31

Tableau IV: Normes de l’hémoglobine en fonction de l’âge ...39

Tableau V: Répartition selon le sexe rapporté par les différentes études. ...53

Tableau VI: Répartition selon les tranches d’âges rapportée par les études. ...54

Tableau VII: Répartition selon la sévérité de l’anémie rapportée par les diverses

études. ...56

Tableau VIII: Pathologies les plus fréquentes en fonction du type d’anémie. ...57

Tableau IX: Les inclusions intra-érythrocytaires et les pathologies auxquelles elles

sont associées. ...70

Tableau X: Interprétation des anomalies morphologiques des globules rouges sur

Introduction ...1 Matériels et méthodes ...4

I. Patients :...5

1. Type et population d’étude : ...5

2. Lieu et période d’étude : ...5

3. Critères d’inclusion : ...5

II. Méthodes :...5

1. Collecte des données : ...5

2. Prélèvements : ...6

3. Méthodes d’analyse :...7

3.1. Hémogramme : ...7

3.2. Frottis sanguin : ...8

3.2.1. Délai pour confectionner un frottis : ...8

3.2.2. Indications du frottis : ...9

3.2.3. Identification du frottis sanguin : ... 10

3.2.4. Confection du frottis : ... 11

3.2.5. Coloration du frottis : ... 16

3.2.6. Examen du frottis sanguin : ... 22

4. Méthodes d’analyse et traitement des données : ... 23

Résultats ... 24

I. Répartition des patients selon le sexe : ... 25

II. Répartition des patients selon l’âge : ... 26

III. Répartition des patients selon le taux d’hémoglobine : ... 27

V. Résultats en fonction des anomalies érythrocytaires sur frottis sanguins : ... 30

Discussion... 38

I. Rappel : ... 39

1. Définition de l’anémie : ... 39

2. Physiologie de l’érythropoïèse : ... 40

3. Morphologie du globule rouge : ... 42

4. Diagnostic de l’anémie de l’enfant : ... 45

4.1. Circonstances de découverte : ... 45

4.2. La démarche diagnostic : ... 46

4.2.1. Etude clinique : ... 46

4.2.2. Etude biologique : ... 47

II. Discussion des résultats : ... 52

1. Répartition selon le sexe :... 52

2. Répartition selon les tranches d’âges : ... 53

3. Répartition selon le taux d’hémoglobine : ... 55

4. Répartition en fonction des constantes érythrocytaires : ... 56

5. Discussion des résultats en fonction des anomalies érythrocytaires sur ... 57

frottis sanguin : ... 57

5.1. Les anomalies de la taille : ... 58

5.1.1. Anisocytose : ... 58

5.1.2. Microcytose : ... 58

5.1.3. Macrocytose : ... 58

5.2. Les anomalies de la teinte : ... 59

5.3.1. Les schizocytes : ... 60

5.3.2. Les elliptocytes :... 61

5.3.3. Les dacryocytes : ... 62

5.3.4. Les stomatocytes : ... 62

5.3.5. Les acanthocytes : ... 63

5.3.6. Les hématies cibles (codocytes) : ... 64

5.3.7. Les échinocytes : ... 65

5.3.8. Les drépanocytes (faucilles) : ... 66

5.3.9. Les sphérocytes : ... 67

5.3.10. Les hématies fantômes : ... 68

5.4. Les inclusions intra-érythrocytaires : ... 69

Conclusion ... 73 Annexe ... 75 Résumés ... 77 Bibliographie ... 81

1

2

L’anémie représente un problème de santé publique étendu, avec des conséquences majeures sur la santé de l’individu aussi bien que sur le développement économique et sociale. [1]

Elle concerne selon les estimations de l’OMS plus de 2 milliards de personnes dans le monde. [1]

Cette affection est la plus fréquente des anomalies de l’hémogramme. [1]

La découverte d’une anémie chez l’enfant pose la question de son étiologie. Si de nombreuses causes d’anémie sont d’identification aisée, il existe un certain nombre de situation dans lesquels aucun diagnostic précis n’est évident. [2]

Une démarche rigoureuse et hiérarchisée doit permettre d’appréhender son mécanisme et d’envisager son étiologie. [2]

Si les automates fournissent les arguments initiaux de cette enquête (réticulocytes et volume globulaire moyen), l’étude du frottis sanguin reste d’un grand intérêt. [2]

Cet examen simple, d’interprétation optimale dans le cadre d’une collaboration clinicien-biologiste, peut contribuer avantageusement à l’orientation diagnostique des anémies de l’enfant. [2]

Le problème, est que l’étude du frottis sanguin a perdu de son intérêt en dépit de toutes les richesses que peut comporter l’analyse d’un frottis sanguin.

Cependant, cette analyse quoique pourrait paraitre simple, ou élémentaire, nécessite un hématologue spécialisé averti.

L’analyse du frottis ne peut être contributive sans des renseignements cliniques complets.

3

L’objectif de notre étude est :

 De démontrer l’intérêt primordial du frottis sanguin dans le diagnostic des anémies de l’enfant.

 De sensibiliser les cliniciens et biologistes à l’intérêt d’une interprétation adéquate de l’hémogramme et de confectionner un frottis sanguin si nécessité.

4

Matériels

et

5

I. Patients :

1. Type et population d’étude :

Il s’agit d’une étude prospective, descriptive et analytique intéressant 100 patients (enfants et nourrissons) présentant une anémie.

2. Lieu et période d’étude :

Cette étude a été menée au sein de l’unité d’hémato-oncologie du service de pédiatrie (Chop) de l’Hôpital d’Enfant de Rabat, en collaboration avec le laboratoire d’Hématologie Central du CHU Ibn Sina de Rabat, s’étalant sur une période de trois mois (de Mai à Juillet 2019).

3. Critères d’inclusion :

Cette étude a impliquée tous les nourrissons et enfants avec suspicion clinique d’anémie ayant bénéficiés d’une numération formule sanguine et d’un frottis sanguin, aussi bien les patients hospitalisés au service de pédiatrie Chop de l’Hôpital d’Enfant de Rabat que ceux vue en hôpital de jour durant notre période d’étude.

II. Méthodes :

1. Collecte des données :

Les données de cette étude ont été recueillies par exploitation de la fiche de demande d’examen de laboratoire (Annexe 1) dument remplie pour chaque patient par le médecin prescripteur et comportant les renseignements nécessaires, à savoir l’âge du patient, son sexe, le motif de demande d’examen, et l’identifiant du patient qui permet de recueillir de manière plus précise les informations numérisés ainsi que les résultats fournis par l’automates.

6

2. Prélèvements :

Les prélèvements ont été effectués indépendamment soit au lit des malades hospitalisés soit dans la salle de prélèvement pour les consultants de l’hôpital de jour. Pour chacun des nourrissons et enfants inclus dans notre étude, les prélèvements de 2 ml de sang minimum sont des échantillons de sang total mis dans des tubes à bouchon violet contenant de l’EDTA (acide éthylène diamine tétraacétique).

L’EDTA est l’anticoagulant utilisé pour les analyses courantes d’hématologies, parce qu’il assure la conservation des éléments figurés du sang. Il prévient la coagulation du sang par son action de chélation sur le calcium. [3]Cet anticoagulant lyophilisé permet également d’éviter les erreurs de comptage dues à la dilution du sang par un excès d’anticoagulant liquide comme l’héparine. [4]

Le sang est ensuite mélangé à l’anticoagulant en réalisant 8 retournements manuels. Il peut s’agir soit de prélèvement de sang veineux sur EDTA ou de sang capillaire (pulpe du doigt, talon chez le nourrisson) dans des microtubes calibrés. [4]L’identification des patients était notée sur les spécimens. Les échantillons sont ensuite acheminés au laboratoire d’Hématologie Centrale Du CHU Ibn Sina de Rabat pour la réalisation d’une numération formule sanguine (NFS) et d’un frottis sanguin. Par ailleurs, tous les prélèvements sont obligatoirement accompagnés de la feuille de demande d’examen de laboratoire contenant les renseignements nécessaires concernant le patient.

7

Figure 1: Tube EDTA.

3. Méthodes d’analyse :

Un bilan biologique a été réalisé pour chaque patient de notre étude comprenant un hémogramme et un frottis sanguin.

3.1. Hémogramme :

L’hémogramme appelé couramment numération formule sanguine (NFS) est l’examen le plus demandé en pratique quotidienne pédiatrique (parfois avec une fréquence excessive). [5]

Il renseigne sur l’existence de l’anémie, sa profondeur et sur la vitesse de son installation. [6]

8

C’est l’examen clé qui prodigue des renseignements utiles permettant de suspecter une anomalie hémoglobinique. [7]

C’est un examen biologique automatisé correspondant à l’analyse qualitative et quantitative des cellules sanguines (numération des hématies, des leucocytes et des plaquettes), mesure et/ou calcul des paramètres érythrocytaires, et du taux de réticulocytes. [8]

Ces constantes hématologiques sont le taux d’hémoglobine (Hb), l’hématocrite (Ht), le volume globulaire moyen (VGM), la teneur corpusculaire moyenne en hémoglobine (TCMH) et la concentration corpusculaire moyenne en hémoglobine (CCMH).

3.2. Frottis sanguin :

Malgré le progrès et le perfectionnement des analyseurs automatisés d’hématologie destinés à la confection des hémogrammes, l’examen du frottis sanguin reste indispensable lorsque les données fournies par les appareils sont qualitativement ou quantitativement anormales ou demandent confirmation. [9]

Le frottis sanguin apporte alors des informations que l’analyseur d’hématologie seul ne peut pas fournir, permettant dans de nombreuse situation la validation technique du résultat. [9]

3.2.1. Délai pour confectionner un frottis : [3]

Idéalement, pour un échantillon de sang avec EDTA, le frottis sanguin devrait être confectionné dans l’heure suivant le prélèvement. Cependant, un frottis de qualité

acceptable peut être confectionné dans les délais suivants :

 Pour un échantillon veineux avec EDTA, confectionner le frottis dans un délai de moins de 4 heures. Ne pas réfrigérer le spécimen avant la réalisation du frottis.

9

 Pour un échantillon capillaire, dans un tube à micro prélèvement contenant de l’EDTA, élaborer le frottis moins de 4 heures après le prélèvement.

3.2.2. Indications du frottis : [10]

Le frottis sanguin peut être demandé par un médecin prescripteur ou initié par le personnel du laboratoire.

Une demande de frottis initié par un médecin est généralement une réponse à des caractéristiques cliniques perçues ou à une anomalie montrée dans une numération complète précédente.

Alors qu’une demande de frottis émanant d’un laboratoire est habituellement le résultat d’anomalie de la formule sanguine complète ou d’une réponse à des alarmes produites par un instrument automatisé.

Moins souvent il s’agit d’une réponse aux détails cliniques fournis avec la demande de numération sanguine complète lorsque le médecin n’a pas spécifiquement demandé l’examen d’un frottis.

Les examens de laboratoires effectués sur frottis sanguin destinés à des patients anémiques résultent généralement d’une politique de laboratoire selon laquelle un frottis sanguin est demandé chaque fois que la concentration en hémoglobine est étonnamment basse. Cette politique devrait être encouragée, car la prise en compte du frottis sanguin et des indices érythrocytaires est une première étape dans la recherche logique de toute anémie inexpliquée.

10

Tableau I: Indications cliniques nécessitant la réalisation du frottis sanguin. [10]

Indications cliniques : Raisons d’effectuer un frottis sanguin :

Lymphadénopathie ou splénomégalie Peut indiquer une mononucléose infectieuse

ou un autre état réactif, une leucémie ou un lymphome.

Anémie cliniquement évidente Aide dans le diagnostic différentiel

Tendance aux ecchymoses ou aux

saignements, y compris les hémorragies rétiniennes inexpliquées

Peut confirmer une thrombocytopénie ou montrer des plaquettes morphologiquement anormales (qui peuvent avoir une fonction défectueuse) une leucémie aigüe ou une autre condition provoquant une insuffisance de la moelle osseuse

Insuffisance rénale aigue Le syndrome hémolytique et urémique et le

purpura thrombotique thrombocytopénique doivent être confirmés ou exclus

Ictère Peut montrer des schizocytes

Douleur osseuse Peut indiquer une infiltration de la moelle

osseuse, ou une drépanocytose

Douleur thoracique ou abdominale

inexpliquée ou hypertrophie splénique aigue chez un enfant

Possible drépanocytose

Hyperbilirubinémie inexpliquée Evaluation de l’hémolyse possible

3.2.3. Identification du frottis sanguin : [11]

Le frottis doit, au moins, porter une double identification, c’est-à-dire ; nom et prénom du client et numéro d’identification personnalisé. De plus la date devrait être inscrite sur chaque frottis.

11

3.2.4. Confection du frottis :

Le frottis sanguin peut être confectionné manuellement ou mécaniquement à l’aide d’appareils automatiques et semi-automatiques. [12]

En ce qui concerne la technique manuelle d’étalement, elle suit les étapes décrites ci-dessous, et doit être exécutée par un opérateur habilité : [13]

 Préparer la ou les lames, posées horizontalement sur un plan dur non incliné.  Homogénéiser le sang dans le tube par retournements consécutifs.

 Déposer une goutte de sang à l’extrémité de la lame.

 Maintenir la lame posée avec la lame non directrice, et présenter avec la main directrice une seconde lame inclinée de 30° à 45° devant la goutte

 Placer la seconde lame en contact avec la goutte en tirant en arrière, puis laisser diffuser le sang le long de l’arête (il faut bien récupérer la totalité de la goutte)  Etaler le sang vers l’autre extrémité de la lame posée en glissant la seconde

lame d’un mouvement régulier, sans appuyer, de manière que la totalité du sang soit étalée sur la lame

 Identifier le frottis selon la procédure en vigueur dans le laboratoire, puis le laisser sécher à l’air libre sans forcer le séchage (pas d’agitation ou d’utilisation de séchoir qui peuvent abimer les cellules et compromettre leur identification ultérieure).

Lors de l’étalement, il faut adapter son geste à la viscosité du sang : [13]

 Sang de viscosité basse (anémie) : Le mouvement doit être plus rapide que la normale et/ou la lame tenue plus verticalement (angle supérieur à 45°). [13]  Sang de viscosité haute (en cas de polyglobulie par exemple) :

Le mouvement doit être lent et/ou la lame tenue moins verticalement (angle inférieur à 45°). [13]

12

Figure 2: Confection du frottis sanguin. [14]

Alors que la technique mécanique, elle met en cause des analyseurs modernes qui peuvent être équipés d’un étaleur, qui permet la préparation automatisée des frottis de sang. [13] L’étalement est accompli selon le même principe que la méthode manuelle avec une adaptation des paramètres d’étalement de l’automate au taux d’hématocrite afin d’acquérir une qualité de frottis reproductible quelle que soit la viscosité du sang. [13]

Le « Laboratoire Central d’Hématologie du CHU Ibn Sina de Rabat » est équipé d’un automate de type SP-1000i de Sysmex.

Le SP-1000i est la troisième génération de produit de préparation et de coloration de lame intégrés éprouvés, développés, fabriqués et soutenus par Sysmex. [15]

Cet automate supprime un processus manuel à haut risque grâce à un processus sur, reproductible et de haute qualité, offrant un délai d’exécution rapide (120 échantillons par heure) et produisant des frottis codés à code pouvant être traités rapidement par les systèmes de microscope numérique automatisé Cellavision. [15]

13

Figure 3: Automate Sysmex SP-1000i du Laboratoire Central d’Hématologie du CHU Ibn Sina de Rabat.

Préparation du frottis par l’automate : [15]

Cet appareil utilise une lame d’étalement robuste et autonettoyante pour confectionner des frottis monocouches.

Il imprime instantanément sur la lame porte-objets des informations selon les options définies par le laboratoire qui peuvent comporter :

 Etiquettes de code à barres uni-ou bidimensionnelles.  Le nom du patient.

 Le numéro de code à barres.

 Le résultat spécifique à l’instrument.

Il sèche ensuite automatiquement les frottis avant la coloration. Puis il abrite les lames dans des cassettes individuelles.

Deux tours d’entreposage latéraux intégrés offrent la capacité d’abriter des lames de couleurs différentes afin de distinguer visuellement les frottis urgent des autres.

14

 Un frottis de bonne qualité doit respecter les critères suivants : [14,16]

 Il doit posséder une tête, un corps et une queue (figure 5) en empreinte de pouce ;

 Il ne doit être ni trop mince ni trop épais ;

 Il doit être régulier (sans coupures), avec des bords parallèles à la lame mais distant de ceux-ci avec l’extrémité arrondie ou en pinceau ;

 Il doit être correctement séché (sinon présence d’artefacts, hématies crénelées) ;

 Il ne doit pas présenter de stries (étaleur mal rodé) ou de trous (lame mal dégraissée).

Figure 4: Frottis de bonne qualité. [16]

15

 Exemples de frottis de mauvaise qualité (non accepté) : [17]

Frottis arborant des trous (lame mal dégraissée)

Frottis trop long et/ou trop fin avec des franges.

Frottis avec des stries (irrégularité du mouvement lors de sa confection)

Frottis avec un angle trop obtus (frottis trop épais et/ou trop court)

16

3.2.5. Coloration du frottis :

La coloration du frottis sanguin doit permettre d’identifier les éléments cellulaires en mettant en évidence les caractéristiques propres à chacun. [3]

Les hématologistes utilisent presque uniquement l’examen du frottis sanguin après coloration panoptique par des méthodes dérivées de celle de Romanovski (coloration de May-Grünwald Giemsa « MGG » et de Wright). [18]

Cette technique, en effet, met en relief un très grand nombre de caractère que nulle autre méthode ne permet d’apprécier simultanément. [18]

Elle donne presque tous les renseignements nécessaires à un diagnostic cellulaire correct, et c’est en raison, précisément, de son importance pratique pour le diagnostic des affections sanguines qu’elle a pris le pas sur les autres techniques d’étude cytologique. [18]

La coloration panoptique de MGG repose sur l’action complémentaire de deux colorants neutres : [19]

 Un colorant selon May Grünwald qui est composé d’un colorant acide, l’éosine et d’un colorant basique, le bleu de méthylène. [19]

 Un colorant selon Giemsa qui est composé lui aussi, d’éosine et d’un colorant basique qui est métachromatique, l’azur de méthylène. [19]

Le MG fixe le frottis par son méthanol, le MG dilué au ½ dans l’eau neutre colore les éléments acidophiles et les granulations azurophiles. [20]

Le Giemsa surcolore les noyaux et colore les granulations azurophiles. [20]

Etapes pré-analytiques : Séchage rapide et fixation au méthanol absolu. [21]

Les frottis doivent être séchés immédiatement après leur réalisation à l’air libre. [21]Ensuite, ils doivent être fixés après séchage pendant 3 à 10 minutes dans le méthanol absolu ou le May Grünwald pur en solution alcoolique. [21]

17

 Exemples de procédé opératoire en méthode manuelle :

Premier temps : May-Grünwald pur (fixation)

La préparation à colorer est placée dans le couvercle d’une boite de Laveran, le frottis étant à la face supérieure de la lame. [18]On verse le nombre de gouttes (ou de ml) de May-Grünwald nécessaire pour que les frottis soient entièrement couverts. [21]Le colorant est laissé en place trois à dix minutes. [21]L’alcool méthylique dans lequel il est dissous a pour effet de fixer les frottis qui n’ont pas besoin, dans ce cas, d’autre fixation. [18]Les frottis ne présentent encore aucune coloration, les colorants n’étant pas ionisés dans l’alcool méthylique pur. [18]

Deuxième temps :

On ajoute autant d’eau tamponné à ph 6,8 (v/v) que de May-Grünwald : 3 à 5 minutes. [21]L’homogénéité du mélange est obtenue par quelques mouvements imprimés à la boite. [18]

Troisième temps : Coloration de Giemsa [21]

On élimine le May-Grünwald dilué et, sans laver, on passe les lames dans la solution Giemsa. La durée de la coloration est de 10 à 30 minutes. Les frottis sont

ensuite lavés sous un fort courant d’eau (1 à 2 minutes), puis séchés. Il est recommandé d’utiliser une eau tamponnée : tampon de ph optimal 6,8Préparation

extemporanée de la coloration Giemsa30 ml d’eau tamponnée + 15 gouttes de Giemsa (ou Giemsa à 10 %dans le tampon) Frottis si possible à la face inférieure pour éviter les précipités sur les lames. [21]

 Résultats de la coloration panoptique (Avec la coloration de May-Grünwald-Giemsa) : [18]

18

Les éléments : Couleur au frottis sanguin :

Les noyaux Rouge-violet (basi-chromatine) et roses

(oxy-chromatine)

Les cytoplasmes basophiles Varient du bleu ciel au bleu foncé

Les cytoplasmes acidophiles Roses

Les cytoplasmes polychromatophiles Grisâtres avec des zones rosées et

d’autres bleutées

Les granulations neutrophiles Marron, rose sale

Les granulations acidophiles

(éosinophiles) Orangées

Les granulations basophiles

(métachromatiques) Violet foncé

Les granulations azurophiles Pourpre ou violet-pourpre

Les granulations basophiles des

érythrocytes Bleu cobalt

Le « Laboratoire Central d’Hématologie du CHU Ibn Sina de Rabat » utilise l’appareil semi-automatique de coloration RAL Stainer (figure 7) afin de confectionner des lames de bonne qualité et standardisées.

Il s’agit d’un système automatisé de coloration compact, simple, intelligent et sûr pour la coloration complète de frottis sanguins utilisé en combinaison avec les réactifs de coloration sans méthanol MCDh ( Micro Chromatic Detection for Haematology). [22]De plus, le temps de coloration est diminué de moitié par rapport aux méthodes manuelles. (Résultats obtenus en 11 minutes identiques à ceux obtenus avec les colorants traditionnels en 20 minutes). [22]L’autre avantage considérable de cet automate de coloration concerne la possibilité d’accomplir d’autres tâches en toute confiance, même lorsque le processus de coloration est en cours. [22]

19

MCDh est une méthode de coloration panoptique de type MGG. Formulé sans méthanol, elle est constituée d’une séquence de quatre réactifs spécifiques (MCDh 1, MCDh 2, MCDh 3, MCDh 4 concentré) utilisés dans la différenciation et le comptage des cellules sanguines et médullaires. [22]

Les réactifs MCDh sont fournis dans des conditionnements fermés pour prolonger leur durée de vie et élimine tout risque de contamination. Une puce RFID permet d’éviter l’utilisation des réactifs au-delà de leur date d’expiration ce qui réduit davantage les risques d’erreur. Les réactifs MCDh sont prêt à l’emploi et sont utilisés les uns après les autres et toujours dans un ordre spécifique au sein du colorateur. [22]

La grande rapidité de l’automate de coloration est due à la possibilité de charger 10 lames par porte-lames, qui est ensuite placé dans l’un des deux tiroirs de chargement. Il suffit d’appuyer sur le bouton Start et le porte-lame est plongé dans chacune des 5 stations de coloration. Le protocole de coloration standard MCDh a été optimisé pour les frottis sanguins périphériques, colorés en 13 minutes. [22]

 Avantages clés du RAL Stainer : [22]

Simple Kit de préparation prêt à l’emploi pour un chargement direct

Aucune préparation des colorants

Protocoles de coloration personnalisable

Sécuritaire Mécanisme fiable et robuste

Aucune exposition dangereuse

Un filtre au charbon actif neutralise les vapeurs des colorants Vidange automatique des colorants usagés

Intelligent RFID (identification par radiofréquence)

Détection et gestion automatique des kits de réactifs Traçabilité de la performance des cycles de coloration Détection des niveaux de liquide de rinçage et d’effluents

20

 Mécanismes de coloration : [22]

MCDh 1 Il s’agit d’un mélange de colorants neutres utilisé pour fixer les frottis et

préparer la coloration, principalement des éléments hydrosolubles (granulations basophiles). Ces colorants ne sont pas actifs dans un milieu alcoolique et ne s’activent de manière sélective que lorsqu’ils sont libérés dans une solution aqueuse tamponnée.

MCDh 2 Ce réactif mène à la concentration et la précipitation du colorant sur les

hématies, le cytoplasme des granulations neutrophiles et sur les granulations éosinophiles

MCDh 3 Il est utilisé pour colorer le cytoplasme des monocytes et des lymphocytes et

exécuter la coloration métachromatique des granulations azurophiles en rouge

MCDH 4 Il s’agit d’un liquide de rinçage pour enlever l’excès de colorant et finaliser la

coloration.

 Caractéristiques techniques : [22]

Kit de réactifs MCDh pour RAL Stainer : (figure 6)

 Prêt à l’emploi

 Capacité de coloration maximale 500 lames

 Durée de conservation 18 mois avant ouverture, 20 jours après ouverture  Température de stockage entre 15° c et 30° c

Débit : (selon le protocole de coloration utilisé)

 Protocole de coloration standard 11 minutes  Cycle de séchage : 2 minutes

 Coloration, 4 bains de coloration et 1 bain de rinçage  2 Stations de chargement.

21

Figure 6: KIT RAL STAINER MCDh. [22]

 Mode opératoire : [22]

RAL Stainer est un appareil semi-automatique de bain de coloration.

Le bras de l’automate suit une trajectoire circulaire et verticale successivement :  Il accroche le porteur de lames déposé par l’utilisateur ;

 Apporte le porteur de lames dans chaque réservoir de colorations et ensuite dans le réservoir en fonction de l’enregistrement protocole ;  Fait retourner le porteur de lames à sa position initiale

 Les lames sont ensuite séchées. La coloration est ainsi terminée.

22

Figure 7: Automate semi automatique RAL STAINER du Laboratoire Central d’Hématologie de CHU Ibn Sina de Rabat.

3.2.6. Examen du frottis sanguin :

L’examen du frottis sanguin a pour but l’analyse morphologique des éléments figurés du sang (leucocytes, hématies, plaquettes) ainsi que, si nécessaire, l’établissement d’une formule leucocytaire manuelle. [13]

Cet examen est interprété parallèlement aux donnés cliniques du patient fournies par le médecin prescripteur, et aux résultats d’autres analyses de laboratoire de routine, notamment la numération formule sanguine. [23]

Une bonne préparation est absolument indispensable, même pour un examen routinier, car le diagnostic dépend souvent de l’interprétation adéquate d’images situées à la limite de la visibilité (par exemple, les ponctuations basophiles des érythrocytes). [18]

23

Même lorsque la préparation semble satisfaisante, il est possible qu’elle ne le soit pas sur toute sa surface ; il faut choisir le meilleur endroit pour l’examen avec l’objectif à immersion. [18]

On commence par un examen macroscopique pour vérifier la qualité de l’étalement du frottis, et sommairement la qualité de la coloration. [3]

Puis on passe à l’analyse du frottis microscopiquement à faible grossissement (objectif x10 ou x20) pour vérifier la coloration, la distribution des éléments figurés du sang, la présence ou l’absence d’anémie, estimer la numération leucocytaire ainsi que choisir la zone adéquate pour réaliser la formule leucocytaire. [3]

L’examen microscopique est réalisé dans la partie moyenne du frottis, où les éléments ne sont ni trop tassés ni trop étalés. [13]Les hématies servent de point de repère : elles doivent être étalées en couche monocellulaire, bien séparées les unes des autres, et leur centre clair doit être visible. [13]Les cellules les mieux étalées se trouvent en général vers 1 cm avant la fin des franges. [24]

Enfin on réalise un examen microscopique à fort grossissement en parcourant le frottis selon un trajet en créneaux ; pour effectuer la formule leucocytaire, l’estimation plaquettaire et l’évaluation morphologique des éléments figurés du sang. [13,3]

A l’issue de cet examen, le biologiste doit informer le clinicien de toutes les anomalies érythrocytaires détectées ainsi que l’éventuelle présence de parasite.

4. Méthodes d’analyse et traitement des données :

Les données de notre étude ont été saisies et traitées par le logiciel Excel 2007, permettant une analyse statistique descriptive afin de démontrer l’intérêt capital du frottis sanguin dans le diagnostic des anémies de l’enfant.

24

25

I. Répartition des patients selon le sexe :

Les patients de notre étude sont répartis en 56 sujets masculins (soit 56% des cas), et 44 sujets féminins (soit 44% des cas).

Les résultats sont représentés dans la figure suivante :

Figure 8: Répartition des patients selon le sexe.

44%

26

II. Répartition des patients selon l’âge :

L’âge des nourrissons et enfants de notre étude se situe entre 1 mois et 18 ans, avec une moyenne de 7 ans et 5 mois, et un écart type de 5 ans.

 34 patients ont un âge situé entre 1 mois et 5 ans (soit 34 % des cas de notre étude) : avec 18 % de cas masculin et 16 % de cas féminin.

 30 patients ont un âge situé entre 5 et 10 ans (soit 30 % des cas) : avec 19 % de cas masculin et 11 % de cas féminin.

 28 patients ont un âge entre 10 et 15 ans (soit 28 % des cas) : avec 15 % de cas masculin et 13 % de cas féminin.

 8 patients ont un âge entre 15 et 18 ans (soit 8 % des cas) : avec 4 % de cas masculin et 4% de cas féminin.

Figure 9: Répartition des patients selon l’âge.

34% 30% _28% 8% 0% 5% 10% 15% 20% 25% 30% 35% 40%

entre 1 mois et 5 ans entre 5 et 10 ans entre 10 et 15 ans entre 15 et 18 ans

p o u rc e n ta ge d e s ca s Age

27

III. Répartition des patients selon le taux d’hémoglobine :

Les valeurs d’Hb ont variés entre 3,6 et 13,2 g/dl avec une moyenne de 8,61 g/dl et un écart type de 2,04 g/dl. Le taux d’Hb permet de distinguer la sévérité de l’anémie des nourrissons et enfants de notre étude. Ainsi, on constate que 29 patients ont une anémie légère (soit 29% des cas de notre étude) dont 16 cas de sexe masculin (soit 16% des cas) et 13 cas de sexe féminin (soit 13 % des cas).Et que 51 patients ont une anémie modérée (soit 51 % des cas de notre étude) dont 29 cas de sexe masculin (soit 29 % des cas) et 22 cas de sexe féminin (soit 22 % des cas).Les 20 patients restant ont un taux d’Hb inférieur à 7 g/dl (par conséquent 20 % des cas de notre étude ont une anémie sévère) dont 12 cas de sexe masculin (soit 12% des cas) et 8 cas de sexe féminin (soit 8% des cas).

Figure 10: Répartition des cas selon le taux d’Hb.

29% 51% 20% 0% 10% 20% 30% 40% 50% 60% anémie légére (10 ≤Hb<11) anémie modérée ( 7≤Hb ≤9,9 g/dl) anémie sévére ( Hb inf à 7 g/dl)

Pourcentage des cas

T yp e d 'a n é m ie