CHAPITRE 2 : SYNTHESE DE MIMES ANTIPARALLELES DE QUADRUPLEXES
II. S YNTHESE ET CARACTERISATION D ’ UN MIME DE I - MOTIF
II.1. Synthèse du gabarit peptidique
La synthèse du gabarit peptidique se fait par synthèse supportée en phase solide (SPPS)
selon les principes développés par R.B. Merrifield en 1960
184et reste similaire à celle utilisée avec
le mime de G-quadruplexe parallèle. Toutefois des modifications sont nécessaires pour répondre
183 Bonnet, R.; Murat, P.; Spinelli, N.; Defrancq, E., Click-click chemistry on a peptidic scaffold for easy access to tetrameric DNA structures. Chem Commun 2012,48 (48), 5992-5994.
184 Merrifield, R. B., Solid Phase Peptide Synthesis. I. The Synthesis of a Tetrapeptide. J Am Chem Soc 1963,85 (14), 2149-2154.
Chapitre 2 : Mimes antiparallèles de quadruplexe Synthèse et caractérisation d’un mime de i-motif
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aux critères imposés pour l’obtention d’un édifice antiparallèle. Ainsi il présente deux fonctions
oxyamines et deux fonctions azotures sur sa face supérieure. Chacune de ces fonctions est
positionnée de manière à favoriser la formation du i-motif (Figure 86). Une biotine est insérée sur
sa face inférieure pour des études de surface. Deux stratégies ont été utilisées pour l’introduction
de ces fonctions : soit l’introduction d’acides-aminés modifiés (« building block ») lors de la
synthèse peptidique, soit par la post fonctionnalisation de chaînes latérales de lysines via
l’utilisation d’esters actifs.
Structures chimiques du « gabarit diagonal » 6.
Figure 86
Outils pour l’insertion des fonctions utiles aux chimies click
1a.
i) Insertion de la fonction biotine
Lors de la synthèse, la fonction biotine est introduite sur le gabarit peptidique sous forme
d’un « building block » préformé compatible avec la SPPS. Comme c’était le cas lors de la
synthèse du mime parallèle 1, celui-ci est constitué d’une lysine fonctionnalisée sur sa fonction
amine Ɛ par une biotine via la firmation d’une amide. Afin que cette lysine puisse être incorporée
en synthèse peptidique lors d’une synthèse de type Fmoc/tBu, l’amine α de la molécule a été
protégée par une fonction Fmoc (pour Fluorenylmethyloxycarbonyle). Ainsi l’obtention du
« building block » nécessite dans un premier temps d’activer la fonction carboxylique de la biotine
par un groupement N-hydroxysuccinimide. La DCC (N,N'-dicyclohexylcarbodiimide) est utilisée
comme agent de couplage. Par la suite, la biotine activée 7 est couplée à la Fmoc-Lys-OH en
milieu basique à pH 8 en présence de DIEA(N,N-Diisopropyléthylamine, Schéma 3). Après
recristallisation, le produit est obtenu avec un rendement global de 79% et sera utilisé lors de la
synthèse peptidique.
6a 6b
124
Schéma 3 Synthèse du « building block » Fmoc-Lysine(Biotine)-OH 8
ii) Insertion des fonctions oxyamines protégées.
Deux stratégies sont possibles pour l’insertion de la fonction oxyamine sur le gabarit
peptidique reposant chacune sur la fonctionnalisation en Ɛ de la lysine par un espaceur dérivé de
l’acide 2-aminooxyacétique (Schéma 4). La première consiste en la post fonctionnalisation du
gabarit par l’utilisation de l’acide Boc-aminooxyacétique activé sur sa fonction acide carboxylique
par un groupement N-hydroxysuccinimide. Ceci est effectué en utilisant la DCC comme agent de
couplage. Ainsi le linker 9 est obtenu avec un rendement de 87%. La seconde stratégie utilise une
oxyamine protégée par un groupement 1-éthoxyéthylidène (Acm). Elle a été développée pour
introduire la fonction oxyamine sous forme de « building block ». En effet, il a été montré que
ceci n’était pas possible en utilisant un groupement tert-butoxycarbonyle (Boc) car, malgré la
protection, l’oxyamine conserve une certaine réactivité qui peut conduire à des acylations
secondaires lors de la synthèse peptidique
185. De plus, le groupement 1-éthoxyéthylidène présente
l’avantage de pouvoir être enlevé dans des conditions acides plus douces. Ce groupement
protecteur est obtenu via la substitution nucléophile de l’ethyl-N-hydroxyacétimidate sur l’acide
iodoacétique. Par la suite, l’activation de la fonction acide carboxylique de ce dernier (composé
10a) se fait par une fonction N-hydroxysuccinimide dans les mêmes conditions que
précédemment. Le composé 10b, obtenu avec un rendement global de 69%, peut lui aussi être
introduit par post fonctionnalisation du gabarit. Lors des différentes stratégies utilisées pour les
synthèses de mime, il a été choisi d’introduire les oxyamines sur le châssis par post
fonctionnalisation via les composés 9 ou 10b afin de pouvoir garder une certaine modularité lors
des synthèse (voir partie III).
185 Foillard, S.; Rasmussen, M. O.; Razkin, J.; Boturyn, D.; Dumy, P., 1-Ethoxyethylidene, a New Group for the Stepwise SPPS of Aminooxyacetic Acid Containing Peptides. J Org Chem 2008,73 (3), 983-991.
7
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Schéma 4 Synthèse des « Linkers » présentant les fonctions oxyamines protégées
iii) Insertion des fonctions azotures
L’insertion des fonctions azotures sur le gabarit peptidique se fait sous forme d’un
« building block » en utilisant la Fmoc-azidonorleucine. Ceci peut être réalisé à condition de
respecter certaines conditions comme éviter l’utilisation d’agents réducteurs utilisés pour la
déprotection des groupements alloc (allyloxycarbonyle) tel que les complexes de palladium. Bien
que ce produit soit commercial, il a été choisi de le synthétiser au laboratoire par commodité.
Comme pour la Fmoc-Lysine(biotine)-OH, le produit de départ est la Fmoc-lysine-OH. La
fonction azoture est obtenue par l’utilisation d’un réactif de diazotransfert 11 qui réagit en milieu
basique et en présence d’un catalyseur métallique sur la fonction amine en Ɛ de la lysine (Schéma
5)
186. De nombreux travaux ont été rapportés décrivant l’utilisation de réactifs de diazotransferts
pour obtenir des fonctions azotures sur les amines de nombreux composés
187. La
Fmoc-azidonorleucine 12 est obtenue avec un rendement considéré comme quantitatif et une pureté
suffisante pour être utilisée pour la synthèse peptidique (supérieure à 95%, analysée par phase
inverse, RP-HPLC).
Schéma 5 Synthèse de la Fmoc-azidonorleucine 12 par diazotransfert
186 Nyffeler, P. T.; Liang, C.-H.; Koeller, K. M.; Wong, C.-H., The Chemistry of Amine−Azide Interconversion: Catalytic Diazotransfer and Regioselective Azide Reduction. J Am Chem Soc 2002,124 (36), 10773-10778.
187 Goddard-Borger, E. D.; Stick, R. V., An Efficient, Inexpensive, and Shelf-Stable Diazotransfer Reagent: Imidazole-1-sulfonyl Azide Hydrochloride. Org Lett 2007,9 (19), 3797-3800.
9
10b 10a
11