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(gèner échantillo n =

5. Analyse in silico des séquences

5.5 Modélisation des structures tridimensionnelles

6.2.13 Recherche de partenaires protéiques des GST de Laminaria digitata

6.2.13.2 Pull-down

Le Pull-down est une technique qui permet de mettre en évidence, in vitro, l'interaction entre deux ou plusieurs protéines. Pour réaliser cette technique, il est nécessaire d'avoir une protéine purifiée et étiquettée qui sert d'appât, et un extrait dans lequel se trouvent les partenaires potentiels (les proies).

La résine de nickel, Talon Metal Affinity Resin (Qiagen), utilisée pour fixer l'appât, est préparée à raison de 1 mL pour 1,5 mg de protéine dans un tube Eppendorf. La résine est lavée (agitation, centrifugation, élimination du surnageant) avec 10 volumes de tampon Tris-HCl 50 mM pH 7,5, 50 mM NaCl, 10 mM MgCl2. Puis l'appât, c'est-à-dire la GST recombinante (180 µg) possédant une étiquette composé de 6 résidus histidine, est fixé sur la résine par rotation pendant une heure à 4°C. La fraction non retenue est éliminée après centrifugation 10 mi à 4°C et 5000 rpm.

L'incubation avec les proies potentielles s'effectue par ajout de l'extrait protéique total (3800 µg) sur la résine et rotation pendant 18 heures à 4°C. La fraction ne présentant pas d'affinité pour l'appât ou la résine est éliminée après centrifugation. Les complexes appât – proies sont ensuite lavés avec 10 volumes de tampon Tris-HCl 50 mM pH7,5, 50 mM NaCl, 10 mM MgCl2 pour éliminer les interactions non spécifiques. Un aliquot de la résine est ensuite prélevé et directement déposé sur un gel dénaturant SDS-PAGE. Un contrôle sans appât est également réalisé afin d'identifier les interactions non-spécifiques générées par la résine sur

Tris-HCl 50 mM pH7,5, 50 mM NaCl, 10 mM MgCl2, 400 mM imidazole. Cependant cette étape dilue l'échantillon et rend l’analyse sur gel difficile.

Tableau 11: Liste des oligonucléotides utilisés au cours de mon travail de thèse. Gène Localisation ou utilisation Oligonucléotide Séquence Sens GST 8_1F 5’- GCACACACTCTCAGTCCCCTT-3’ LdGST1

Séquence codante Antisens

GST 8_1R 5’- CGCAATGTACGCACTACACAT-3’ Sens GST8_PCRq_3F 5’-GCAGAGCCTCGCCCAGATGA-3’ LdGST1 PCRq Antisens GST8_PCRq_3R 5’-CCATAGCTGCGTCGGCGAAT-3’ Sens 5'GST78 5’-ATGGCTCCCACCACATCTTTG-3’ LdGST2

Séquence codante Antisens

3'GST78 5’-TTACTTGTTGGTGGTCTCTGA-3’ Sens 78GST3 5’-AGGCTGGTCTGGCTGAAGGAA-3’ LdGST2 PCRq Antisens 78GST4 5’-TGGTCTCTGATCTCTCCTGGTGG-3’ Sens 5'GST54 5’-ATGGCTCCCAAGCTGGTCCTG-3’ LdGST3

Séquence codante Antisens

3'GST54 5’- CTACTTGTCGTGCTTGGCGAT-3’ Sens GST54_PCRq_1F 5’-ATACGCTGGGCTTTGGAGCAA-3’ LdGST3 PCRq Antisens GST54_PCRq_1R 5’-GGCTGGGCTTGACAACACCA-3’ Sens GST19_1F 5’-ACCATGCCGGCTGTCTTTA-3’ LdGST4

Séquence codante Antisens

GST19_1R 5’-TGCAGTTTACGCCTTGGAA-3’ Sens 19GST1 5’-GCGGAGGACGTGTTCATCA-3’ LdGST4 Intron Antisens 19GST2 5’-CAAAGTCTGGCACTTCTCCAACT-3’ Sens GST19_PCRq_1F 5’-ATACCAGATGGACGGCACCGA-3’ LdGST4 PCRq Antisens GST19_PCRq_1R 5’-AGGCTAAAGGGCATTCCGGG-3’

Antisens EsGST1_PCRq_2R 5’-TACAAAGCGCAGAGGGAAGGG-3’ Sens EsGST2_PCRq_2F 5’-CCTCCGCACTCTCCGCTTAC-3’ EsGST2 PCRq Antisens EsGST2_PCRq_2R 5’-GTCTTCCGCAACGCACTACTG-3’ Sens EsGST3_PCRq_2F 5’-ACAACATCGCCCGAAGGAC -3’ EsGST3 PCRq Antisens EsGST3_PCRq_2F 5’-TGTCTTATCTCAACAAACCTCACC-3’ Sens CL4853_PCRq_2F 5’-CGCATGTCTGTGGTTCACCTATTC-3’ EsGST9 PCRq Antisens CL4853_PCRq_2R 5’-GCCAACTACACACGGAAGGG-3’ Sens CL1683_PCRq_2F 5’-ATGCCCGTGTTGGAGGTAGATG-3’ EsGST12 PCRq Antisens CL1683_PCRq_2R 5’-GCACTGTCGGCGAAAGCG-3’ Sens CL3957_PCRq_1F 5’-AGCGAAAGGGAAGTACATGAAGGG-3’ EsGST13 PCRq Antisens CL3957_PCRq_1R 5’-TTGGGCGGCGAGCGTCTC-3’ Sens mEsGST1_PCRq_2F 5’-TTGGGTTGTTGACAGTCAGAGAG-3’ mEsGST1 PCRq Antisens mEsGST1_PCRq_2R 5’-CAAACCAATACGGACGCTATGC-3’ Sens CL1335_PCRq_1F 5’-CCGAACGGGCAGAAGGTCAC-3’ Esi0047_0117 PCRq Antisens CL1335_PCRq_1R 5’-CGACATGATGTTTGTGTACCAAGC-3’ Sens CL754_PCRq_1F 5’-CCTGCCCCTGGTGTCATCG-3’ Esi0019_0095 PCRq Antisens CL754_PCRq_1R 5’-TCATCCATGTAGGAGAAGGTCACG-3’ Sens mEsGST2_PCRq_2F 5’-TTGGTGGTACTCGCTGTGGTTAG-3’ mEsGST2 PCRq Antisens mEsGST2_PCRq_2R 5’-CCCGCACGCAGAGCAAATAC-3’ Sens EsEF1a5' 5’- GCAAGGGCCTCAGCTCTG -3’ EsEF1a PCRq Antisens EsEF1a3' 5’- ACAAGCCGTCTGGGTATATGTTAGC -3’ EsTUA PCRq Sens EsTUA5' 5’- TTTGAGGAGTTTCGTCGGAGAT-3’

Antisens EsTUA3' 5’- CACACAGCGCAAAACGGC-3’ Sens EsACT5' 5’- CCCAGATCATGTTCGAGACGTT -3’ EsACTIN PCRq Antisens EsACT3' 5’- CACGCCGTCACCCGAGTC -3’ Sens Tuba2-1 5’-TCGTGCAGTTGGGTTTCGA-3’ LdTUA PCRq Antisens Tuba2-2 5’-CAAGACGCCATGCGATACG-3’ Sens Pld17B08-fw1q 5’-ATCGCGGCTTGTGTCTCTTG -3’ LdRPL36 PCRq Antisens Pld17B08-rev1q 5’-ACCGCACACCAACCCTTTC -3’ Sens LdAct_fw3q 5’-GGATGTCGCGCACGATCT-3’ LdACTIN PCRq Antisens LdAct_rev3q 5’-ACCTGACGGACAACCTGATGA-3’ Sens 5’-GGGGGGGGATCCGCTCCCAAACTCATCCTCACGTA-3’ EsGST1

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTTACTTGGCGTGCTTGGCGAGGAAT-3’

Sens 5’-GGGGGGGGATCCTCTTCCACGCCCACCCTCAACT-3’

EsGST3

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTTACGCCTTGGAGGCGTAGTACGC-3’

Sens 5’-GGGGGGGGATCCGGCCCCAAGCTTATCCTCTCGT-3’

LdGST1

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTTATGGCCCGGACTCCAAGTACTTG-3’

Sens 5’-GGGGGGGGATCCGCTCCCACCACATCTTTGACCC-3’

LdGST2

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCCAATTGTTACTTGTTGGTGGTCTCTGATCTC-3’

Sens 5’-GGGGGGGGATCCGCTCCCAAGCTGGTCCTGACG-3’

LdGST3

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTTACTTGTCGTGCTTGGCGATGAACG-3’

Sens 5’-GGGGGGGGATCCCCGGCTGTCTTTAACTACTTCG-3’

LdGST4

Clonage pFO4 Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTTACGCCTTGGAAGCG-3’

Sens 5'- GGGGGGGGATCCACCATGGCTGTGACCATCGAGCTCACACCC-3' mEsGST1

Clonage levure Antisens 5'-CCCCCCGAATTCCTACATGTAAACCTTCACGACGGA-3'

Sens 5'- GGGGGGGGATCCACCATGGCTGTGACCATCGAGCTCACACCC-3' mEsGST2 Clonage levure Antisens 5'-CCCCCCGAATTCCTAGGATATGCAAAGCTTCGTGGT-3' Sens 5’-GGGGGGGGATCCACCATGGCTACCATGACCATCGAACTTACC-3’ mCcGST1

Clonage levure Antisens 5’-CCCCCCGAATTCTCAGCAGCATGTCTTGACCACGAG-3’ Sens 5’-GGGGGGGGATCCACCATGGCTGAAGTAACGCTCCCGCCGCTG-3’ mCcGST2

Tableau 12: Numéros d'accession des séquences utilisées pour l’analyse phylogénétique des GST cytosoliques.

Classe Gène Organisme N°accession

EcGSTB Escherichia coli AAC74707

PmGSTB Proteus mirabilis P15214 Bêta

OaGSTB Ochrobactrum anthropi CAA76728

MsGSTR Micropterus salmoides AAQ91198

PmGSTR1 Pagrus major BAD98443 Rho

PpGSTR Pleuronectes platessa CAA45293

CeGSTO1 Caenorhabditis elegans AAA27959

TrGSTO Takifugu rubripes AAL08414 Omega

MmGSTO1 Mus musculus NP_034492

RnGSTA2 Rattus norvegicus P04903

HsGSTA1 Homo sapiens NP_665683

GgGSTA4 Gallus gallus NP_990149 Alpha

DrGSTA2 Danio rerio NP_998559

HsGSTM5 Homo sapiens NP_000842

BtGSTM1 Bos taurus AAI02051

MmGSTM3 Mus musculus AAH44927 Mu

MfGSTM2 Macaca fascicularis AAF08540

BtGSTP Bos taurus AAI02705

MmGSTP1 Mus musculus AAH61109

HsGSTP1 Homo sapiens AAH61109 Pi

RnGSTP Rattus norvegicus NP_036709

GgGSTS1 Gallus gallus CAA07005

OsGSTS Ommastrephes sloanei P46088

TjGSTS Tigriopus japonicus AAY89316

AgGSTS1 Anopheles gambiae L07880

AgGSTS Anopheles gambiae P46428

SiGSTS Solenopsis invicta Q6X4T7

BgGSTS Blatella germanica O18598

BmGSTS Bombyx mori Q5CCJ4

MdGSTS Musca domestica P46437

HsPDGS Homo sapiens AAH20734

RnPGDS Rattus Norvegicus 035543

CiPGDS3 Ciona intestinalis Q0PMD3 Sigma

XtPGDS2 Xenopus tropicalis Q6DES8

CeGSTG1 Cunninghamella elegans AAL02368 Gamma

CeGSTG2 Cunninghamella elegans AAL02369

AcGSTN1 Ancylostoma caninum AAT37718

NdGSTN2 Nematospiroides dubius AAF36480 Nu

HcGSTN1 Haemonchus contortus AAF81283

AgGSTD2 Anopheles gambiae CAA96104

AgGSTD1-5 Anopheles gambiae CAB03592

SsGSTD Sarcoptes scabiei AAV65948 Delta

DmGSTD Drosophila melanogaster AAB26519

AgGSTE2 Anopheles gambiae AAV68398

DmGSTE17534 Drosophila melanogaster AAF57693 DmGSTE17522 Drosophila melanogaster AAF57702 AtGSTT10 Arabidopsis thaliana CAA10457

EeGSTT1 Euphorbia esula AAF64449

HsGSTT1 Homo sapiens AAL31549 Thêta

RnGSTT2 Rattus norvegicus AAH61856

BnGSTZ Brassica napus AAO60042

OsGSTZ Oryza sativa AAG32474

HsGSTZ1 Homo sapiens NP_665877 Zêta

MmGSTZ1 Mus musculus AAH31777

NtGSTF1 Nicotiana tabacum A41789

NtGSTF2 Nicotiana tabacum P46440

AtGSTF4 Arabidopsis thaliana CAB80745 Phi

ZmGSTF3 Zea mays CAA29929

AtGSTL Arabidopsis thaliana CAB86032

GmGSTL Glycine max AAG34872

PsGSTL Pisum sativum BAC81649 Lambda

TaGSTL Triticum aestivum CAA76758

AtGSTU4 Aegilops tauschii AAM89393

OsGSTU3 Oryza sativa AAQ02687

PtGSTU Pinus tabuliformis AAY64044 Tau

CmGSTU3 Cucurbita maxima BAC21263

LdGST1 Laminaria digitata EF422836

LdGST2 Laminaria digitata EF422837

LdGST3 Laminaria digitata EF422838

LdGST4 Laminaria digitata EF422839

EsGST1 Ectocarpus siliculosus FP089530

EsGST2 Ectocarpus siliculosus FP089529

EsGST3 Ectocarpus siliculosus FP089528

EsGST4 Ectocarpus siliculosus FP089527

EsGST5 Ectocarpus siliculosus FP089526

EsGST6 Ectocarpus siliculosus FP089525

EsGST7 Ectocarpus siliculosus FP089524

EsGST8 Ectocarpus siliculosus FP089523

EsGST9 Ectocarpus siliculosus FP089522

EsGST10 Ectocarpus siliculosus FP089521

EsGST11 Ectocarpus siliculosus FP089520

EsGST12 Ectocarpus siliculosus FP089519

SbGST2 Sargassum binderi DV669544

FvGST1 Fucus vesiculosus CL225Contig1a

FsGST1 Fucus sp CL169Contig1a

Algues brunes

FsGST2 Fucus sp CL290Contig1a

a

http://www.sb-roscoff.fr/SIG/blast/blast_private.html

b

http://gracilaria.ib.usp.br/cgi-bin/gracilaria/cap3/cluster_editor/gene_list.pl?categ=ALL

Numéro d’accession pour EsGST13 = FP089518

Tableau 13: Numéros d'accession des séquences utilisées pour l’analyse phylogénétique des GST microsomales.

Cluster Espèces Numéro d’accession

Pseudomonas syringae NP_790229 Rhodopseudomonas palustris ZP_00009790 Bacteria Chromobacterium violaceum NP_899939 Homo sapiens P10620 Rattus norvegicus P08011 MGST1 Danio rerio BM532930

Anopheles gambiae AAP37005 Insectes

Anopheles gambiae AAP37004

Ciona intestinalis BW302022

Homo sapiens O14684 PGES

Rattus norvegicus AAG24803

Rattus norvegicus P20291

Homo sapiens P20292 FLAP

Danio rerio AAH53181

Gallus gallus BU419439

Rattus norvegicus BAB58882 LTC4 synthase

Homo sapiens Q16873

Hydra magnipapillata BP512502

Homo sapiens Q99735

Danio rerio AL921814 MGST2

Salmo salar CA038571

Synechocystis sp. P73795

Synechocystis cluster

Rhodopseudomonas palustris ZP_00009580

Xenopus laevi AW644270

Homo sapiens O14880

Arabidopsis thaliana AAM66941

Chondrus crispus mGST1 CO650933

Chondrus crispus mGST2 CO649734

Ectocarpus siliculosus mGST1 FP089517 Ectocarpus siliculosus mGST2 FP089516 MGST3 Ectocarpus siliculosus mGST3 FP089515 Magnetospirillum magnetotacticum ZP_00052499 Escherichia coli P64515 E. coli cluster Yersinia pestis NP_405603