III. Traitement des échantillons au laboratoire
II.1. Observation des symptômes sur le terrain
Le verger dont on a fait l’échantillonnage montre la présence des symptômes caractéristiques de la maladie de la tuberculose sur différentes parties, ces symptômes se manifestent par la présence des tumeurs et des excroissances sur les différentes parties de l’olivier (figure n 19)
Figure n °19 : Symptômes de la tuberculose de l’olivier
II.2. Résultats du diagnostic au laboratoire :
A partir des échantillons prélevés dans le verger, nous avons pu isoler et purifier sur différents milieux de culture : milieu Levane, milieu King B et milieu LPGA 08 isolats bactériens Afin d’arriver à la caractérisation phénotypique des souches isolées à partir des tumeurs prélevés, le passage par les caractères macroscopiques a été indispensable.
Les souches, après une croissance de trois jours donnent des colonies à des caractères macroscopiques variés. La description des colonies est représentée dans le tableau n 05
Tableau n°05 : Description des colonies bactériennes obtenues sur différents milieux
Code de la colonie
Description sur milieu Levane
Description sur milieu King B
Description sur milieu LPGA
LPi(2)
-levane +-bordure régulière, forme circulaire, élévation convexe, surface lisse, opacité brillant, une couleur blanc cassé. -production de muqueuse
-colonie de taille moyenne à grande, brillante et lisse, à élévation convexe
légèrement et une couleur crème plus ou moins fluorescente.
-production de muqueuse.
-
colonie de taille moyenne à bordure régulière avec une forme circulaire, une élévation bombée et une couleur blanc cassée. -production de muqueuse.LPi(2)’
-levane +-une colonie de couleur blanc cassé, forme circulaire, élévation convexe, surface lisse et une forme circulaire. -production de muqueuse.
-colonie de taille moyenne à grande, brillante et lisse, à élévation convexe et une couleur crème plus ou moins fluorescente à bord
translucide.
-production de muqueuse.
-
colonie de taille moyenne à bordure régulière avec une forme circulaire, une élévation convexe et une couleur blanc cassée. -production de muqueuse.LPi(3)
-levane +-une colonie de couleur blanche, forme circulaire, élévation convexe, surface lisse et une forme circulaire. -production de muqueuse.
-colonie moyenne à petit régulière, lisse à couleur beige fluoresçante et à élévation plate.
-absence de muqueuse.
-colonie de taille moyenne, régulière, circulaire et à élévation convexe et une couleur blanc cassé. -production de muqueuse.
LPi(4)
-levane +-une colonie de couleur crème, forme circulaire, élévation bombée, surface lisse et une forme circulaire. -production de muqueuse.
-
colonie brillante de taille moyenne, lisse à élévation convexe et une couleur jaune opaque.-production de muqueuse.
-
colonie brillante de taille moyenne, lisse à élévation bombée et une couleur jaune.-production de muqueuse.
LVi(2)
-colonie de formefilamenteuse, irrégulière à couleur blanc cassé. -absence de muqueuse.
Contaminée
-colonie de formefilamenteuse, irrégulière à couleur blanc cassé, élévation bossue -absence de muqueuse
LVi(3)
-colonie de taille moyenne, régulière, forme circulaire et une élévation convexe, de couleur blanc jaunâtre. -production de muqueuse.-Colonie de taille moyenne à petite, brillante et une
surface lisse. Une couleur jaune très claire avec une élévation plate.
-absence de muqueuse.
-colonie de taille moyenne, régulière, forme circulaire et une élévation convexe, de couleur crème.
-production de muqueuse en faible quantité.
LVi(3)’
-colonie de taille moyenne, régulière, forme circulaire et une élévation convexe, de couleur blanc cassé. -production de muqueuse.-Colonie de taille moyenne à petite, brillante et une
surface lisse. Une couleur jaune translucide avec une élévation plate.
-production de muqueuse en petite quantité.
-colonie de taille moyenne, régulière, forme circulaire et une élévation convexe, de couleur blanc cassé.
-production de muqueuse en faible quantité
LVi(4)
-colonie de surface lisse, circulaire, régulière et une élévation légèrement bombée de couleur crème.-production de muqueuse en petite quantité.
-colonie de petite taille, croissante lente, brillante à surface frisée. Une couleur plus ou moins fluorescente avec une élévation plate. -absence de muqueuse.
-colonie de surface lisse, circulaire, régulière et une élévation convexe de couleur jaune.
-production de muqueuse.
Les ensemencements des isolats sur les différents milieux (King B, Levane, LPGA) ont permis d’observer des colonies bactériennes présentant les caractéristiques morphologiques
des Pseudomonas citées dans la littérature (Botelho & Leda, 2006), ce qui est montré dans la figure n 20. La différence macroscopique observée entre quelques isolats peut revenir à la différence d’espèces
La majorité des souches obtenues sur milieu LPGA ont une couleur crème, forme circulaire, convexe, lisse, brillante à taille moyenne (figure 20) identique à celle décrite par (Bergey, 2003). On a observé presque les mêmes caractéristiques sur milieu King B avec la présence d’une légère fluorescence pour certains isolats.
King B LPGA
Levane
Figure n °20 : Résultat de purification des colonies bactériennes sur les trois milieux (King B , Levane, LPGA)
Par contre sur le milieu Levane on a obtenu la même description des colonies que celle de Guido M et al (2005), les colonies décrites sont de couleur blanc gris avec un aspect visqueux, forme circulaire, convexe, translucide (figure n 20).
II.3. Caractérisation biochimiques des isolats bactériens
Les résultats de la caractérisation biochimique des isoltats bactériens sont résumés dans le tableau n°06
Tableau n°06 : Résultats des tests biochimiques
II.3.1
Test oxydase :Parmi les 8 isolats testés pour la réaction d’oxydase, 7 isolats se sont révélés oxydase négatif ce qui traduit l’absence de l’enzyme oxydase intracellulaire. Un seul isolat présente une réaction oxydase positif, il s’agit du la souche LPi(4). La réaction positive se traduit par l’apparition d’une coloration violacée sur le papier filtre. Un exemple de résultat est montré dans figure n 21.
Les 7 isolats bactériens oxydase négatif présentent la réaction typique de Pseudomonas
savastanoi selon les données bibliographiques rapportées par Boulssen et al (2016)
Test
code
Oxydase Gram(KOH) Catalase
Pectinase
Arginine
LPi(2)
-
+
+
-
-
LPi(2)’ -
+
+
-
-
LPi(3)
-
+
+
+
-
LPi(4)
+
-
+
-
-
LVi(2) -
-
+
-
-
LVi(3) -
-
+
-
-
LVi(3) ‘ -
-
+
-
-
LVi(4) -
-
+
-
-
(A) (B)
Figure n°21 : résultats de test oxydase (A) : test négatif, ,(B) : test positif
(B) II.3-2 Test péctinase
Un total de 7 isolats n’a pas montré la capacité à dégrader la pectine présente dans les rondelles de la pomme de terre, Ce résultat se concorde avec celui trouvé par Boulssen et al (2016). Selon Guide et al.,(2005) Pseudomonas savastanoi ne dégrade pas la péctine.
La seule souche qui s’est révélée pectinase positif est la LPi(3), Cette souche possède la pectinase, l’enzyme nécessaire pour dégrader la pectine de la pomme de terre (figure n 23).
Figure n°22 : Résultat de test péctinase figure n°23 : Résultat de test péctinase
Test négatif Test positif II.3.3. Test catalase :
Ce test est positif pour la totalité de nos isolats, une réaction positif se traduit par le dégagement du bulle d’aire (figure n 24) , c’est un résultat est identique à celui trouvé par Kirde et al, (2011). Ces auteurs rapportent que Pseudomonas savastanoi est capable de dégrader le H2O2 en eau et en oxygène.
Figure n°24 :Résultat de test catalase
II.3.4. Test de Gram :
Cinq isolats sur huit analysés forment un filament continu (figure 25) en présence de KOH à 3%, ce qui montre que ces souches sont gram négatif. Les autres isolats : LPi(2), LPi(2)’, LPi(3) sont gram positif.
II.3.5. Test arginine :
Comme c’est mentionné dans le tableau ci-dessus le test est complètement négatif pour les huit isolats, On n’a pas observé un changement de couleur, et d’après (Guido et al, 2005). les Pseudomonas savastanoi sont des arginine négatifs.
Témoin
Figure n°26 : Résultat de test arginine (test négatif)
Les essais effectués au laboratoire nous ont permis d’identifier les isolats les plus susceptibles d’être Pseudomonas savastaoi, il s’agit de LVi(2), LVi(3), LVi(3)’et LVi(4),
Ces résultats ne permettent pas de confirmer si ces bactéries sont phytopathogénes, car le test d’hypersensibilité sur les feuilles de tabac n’a pas été effectué. D‘autres tests plus précis peuvent être utilisé pour savoir si ces souches sont bien Pseudomonas savastanoi , on peut citer le test d’immunofluoercence, les test de biologie moléculaire (PCR)
D’un autre coté, les tumeurs formés sur l’arbre de l’olivier sont des niches idéales pour la croissance bactérienne non seulement de l’agent causal de la maladie (Pseudomonas
savastanoi pv.savastanoi), mais aussi d'un nombre de Gammaproteobacteria endophytes tels
que Erwiniatoletana, Pantoea agglomerans et d'autres bactéries des genres Burkholderia,
La wilaya de Bouira est parmi les régions les plus connues par la culture de l’olivier, comme toutes autres régions nationales et même internationales qui sont situées à proximité au bassin méditerranéen. Cette importance donnée à cette culture revient à son intérêt économique, thérapeutique et alimentaire.
Notre travail vise à étudier deux maladies microbiennes les plus redoutables de l’olivier dans cette région (la verticilliose et la tuberculose), cette étude a été effectuée dans une période bien déterminé (Mars à Mai 2018) dans la station d’Ath mansour.
Après la collecte de plusieurs échantillons présentant les symptômes des deux maladies de l’olivier l’arbre. Les tests effectués au laboratoire ont permis de :
- Identifier cinq genre fongiques sur les échantillons présentant les symptômes de la verticilliose, il s’agit d’Altenaria, Rhizoctonia, Stemphylium, Penicilium et Absidia.
- Conclure que les symptômes de dépérissement observés sur les échantillons analysés ne sont pas dus à la verticilliose, mais peuvent être dus à Rhizoctonia et à stemphylium.
- Identifier quatre isolats bactériens avec des caractéristiques biochimiques similaires à ceux de Pseudomonas savastanoi (LVi2, LVi3, LVi3’, LVi4)
Les résultats de ce travail nous ouvrent des voies de recherche intéressantes telles que: • L’élargissement des prospections dans d’autres oliveraies algériennes afin
d’évaluer leur état phytosanitaire et d’estimer les incidences économiques. • Améliorer les découvertes sur des techniques et des méthodes plus rapides et
plus exactes dans l’identification des bactéries et des champignons. • L’étude de l’interaction hôte / pathogène, pour mieux comprendre le mode
pathogénique des champignons et des bactéries.
• La recherche des mesures de lutte biologique ou autre afin de diminuer les dégâts dus à ces deux maladies.
• Achour A, 1995 – l’huile d’olive, 1er Edit, Maison de livre Ain M'Lila 1995, 110p.
• Agroconsult, 2008. L’olivier dans le monde. La mediterranée, edition du temps : « l’olivier, un arbre et une culture au cours de la mediterranée» ,113-128 p.
• Allal M, 2016. L’Econews l’info économique et financière en continu, 18 décembre 2016.
• Anonyme, 2001, site : www.tela-botanica.org/bdtfx-nn-44593,2001
• Anonyme, 2001. Pseudomonas syringae sp. savastanoi pv. oleae. http://www.inra.fr/internet/produits/HYP3/pathogen/6pssysa.htm.
• AOP, 2016. Appellation d'origine Protégée, huile d’olive et olive. (Ph. D.). Universidad Politécnica de Valencia, Spain.
• Argenson C., 1999. L’olivier : Centre Technique Interprofessionnel des Fruits et Légumes (CTIFL), 204p.
• Argeson L., 1999 – L’olivier dans le monde, Edition Luis Gérard, 55p. • Artaud M., 2008. L’OLIVIER, Sa contribution dans la prévention et le
traitement du syndrome métabolique.28 p.
• Barnett H.L., Barry Hunter B., 1972. Illustrated genera of imperfecti fungi. Third Edition. Burgess Publishing Company. 239p.
• Bellahcene M., 2004. La verticilliose de l’olivier : étude épidémiologique et diversité génétique de verticillium Dahliea Kleb., Agent de la verticilliose. Thèse. Doct. D’Etat. Univ. Oran (Algérie). 144p.
• Benchabane M., 1990 - Observation des cas de Verticilliose à Cap Djanet et Sidi
• Benghanem A., 1995 – Etude sur la production d'olive dans la région de Tizi-Ouzou, Mémoire de fin d'étude, INA, 100p
• Benhayoun G. , Lazzeri Y., 2007. L’olivier en méditerranée : du symbole à l'économie. Ed l’Harmattan.
chez les variants morphologiques. Cano I Bot., Vol. 61 (12) pp. 3536-3542. • Boukenadel F., 2002. Contribution a l’etude de Verticillium dahlias, agent
de la verticilliose de l’olivier,p 130.
• Boulouha M., 1986 – Croissance et fructification et leurs interactions sur la production chez la Picholine marocaine. Revue Olivae n°17. Décembre 1986. PP : 41-47.
• Boulssen B.Z., Bouraoui N.E.H., 2016. Etude sur la tuberculose de l’olivier ; isolement et identification présomptifs de quelques isolats bactériens à partir des tumeurs, 54p.
• Botelho, G. R and Leda, C. M., 2006. Fluorescent Pseudomonad associated with the rhizosphére of Crops – an overview. Brazilian Journal
of Microbiology. 37: 401-416.
• Bradbury, J.F., 1986. Guide to plant pathogénique bacteria. CAB International Mycological Institute, Kew, UK, p 332.
• Breton, C., 2006. Adaptation et évolution de l’olivier et de l’oléastredans diverses conditions d’isolement, de culture et d’environnement. Tela Botanica.
http://www.telabotanica.org/page:adaptation_evolution_olivier?langue=fr (consulté en Mai 2016),
• Bubici G. , et Cirulli M., 2011.Verticillium wilt of olive.In : Schena L,Agostio GE , Cacciola SO (eds) Olive diseases and disorders. Research Signposte, Kerala, (India),ISBN:1-14.
• Chawla S., Woodward JE., Wheeler T.A., 2012. Influence of Verticillium
dahliae Infested Peanut Residue on Wilt Development in Subsequent
Cotton. International Journal of Agronomy, Volume 2012, 212075, 5 pages.
• Cherrab M., Zaouid D., Bennani A., Serrhini M.N., 2002. Étude du pouvoir pathogène des isolats de Verticillium dahliae Kleb. issus de
• Civantos L., 1998 – L'olivier, l’huile d’olive et l’olive, Ed, Conseil oléicole international, 130 p.
• C.O.I, 2007. Conseil Oléicole International, Techniques de production en oléiculture. Espagne. 348p
• C.O.I, 2006. Conseil Oléicole International, Techniques de production en oléiculture.
• Criquet S., and Clavert V., 2008.IMEP UMR CNRS 6116.Planche Tp mycologie publié sur internet le 03/03/2008.
• Daoudi L., 1994 – Etude des caractères végétatifs et fructifères de quelques variétés d’olives locales et étrangères cultivées à la station expérimentale de Sidi-Aiche (Bejaia), Thèse de Magistère, Inst, Nat, Agr, El-Harrach, 130p.
• DSA, 2017. Direction des services agricoles à Bouira.
• El Shabel , 2005. Stydies on fungal olive diseases on EL joouf and Riyadh region of kingdom of saoudi Arabia. N° SP 8-46.
• Ercolani, G.L., 1993. Comparison of strains of Pseudomonas syringae pv.
savastanoi from olive leaves and knots. Letters in Applied Microbiology,
Vol. 16, No. 4, (April 1993), pp. 199- 202, ISSN 0266-8254. • Eurostat., 2016. Agricultural production – orchards, Olive trees.
• Fradin E.F., Thoma B.P.H.J., 2006. Physiology and molecular aspects of Verticillium wilt diseases caused by V.dahliae and V.albo-atrum. Mol. Plant. Pathol., 7: 71-86.
• Gautier M., 1987 – La culture fruitière (l’arbre fruitier) Vol 1, J.B. Baillière, Paris, 492p
• Garber R.H., Houston B., 1966. Penetration and development of
Verticillium albo-atrum in cotton plants. J. Phytopathol., 56:1121–1126.
• Goszczynska T., Serfontein J. J., Serfontein S. et Safrinet., 2000. Introduction to practical phytopathology: A manual for phytobacteriology. ISBN: 0-620-25487-4. Ultra litho (Pty) Ltd, Heriotdale. Johannesburg. • Guignard & Dupont, 2004. Botanique : systématique moléculaire.
agent of olive knot, in central Italy, European journal of plant pathology (2005). 112: 101-112.
• Hall, B.H., Cothe, E.J., whattam, M.D., Noble, D., Luck, J. & Cartwrignt, D., 2004. First repot of olive knot caused by pseudomonas savastanoi pv savastanoi on olives (Olea europea) in Australia. Australasian. Plant. Pathology. 33 : 219-228 p.
• Harir M., 2010. Effet antagonistes entre les souches d’Actinomycetes et le
Verticillium dahlae Kleb., agent de la verticilliose de l’olivier. Mém.
Magis. Univ. Oran (Algérie). 77p.
• Heimstra J.A., Harris D.C., 1998. Some general features of verticillium wilts in trees. In: Heimstra JA, Harris DC (Eds) A compendium of verticillium wilts in tree species. Ponsen and Looijen, Wageningen.5-11. • Horne, T., Parker, B., & Daines, L.L., 1912. The method of spreading of
the olive knot disease. Phytopathology. Vol. 2, pp. 101-105, ISSN: 0031- 949X.
• Iacobellis, N.S., 2001.Olive knot. In: Encyclopedia of Plant Pathology, Vol. 2, O.C. Maloy& T.D Murray (Eds.), pp. 713-715, John Wiley and sons, ISBN 0471298174, New York, USA.
• Jabnoun-Khiareddine, H., Daami-Remadi, M., Barbara, D.J., and El Mahjoub, M., 2010. Morphological variability within and among
Verticillium species collected in Tunisia. Tunisian Journal of Plant
Protection, 5: 19-38.
• Janse, J.D., 1982. Pseudomonas syringae subsp. savastanoi ex Smith subsp. nov., nom. rev.,the bacterium causing excrescences on Oleaceaeand
Nerium oleander L. International Journal of Systematic Bacteriology, Vol.
32, No. 2, (April 1982), pp. 166-169, ISSN: 1466-5026.
• Jiménez-Diaz R.M, Tjamos E.C. , Cirulli M., 1998. Verticillium wilts of major tree hosts. In J.Hiemstra et D. Harris (Eds),compendium of Verticilliose wilts in tree species. Ponsen and Looijen, Wageningen: Ponsen and Looijen. 55-57.
identification, applications, Balows, A., Truper, H. G.,Dworkin, M.,
Harder, W. & Schleifer, K.H., Vol. I, pp. 659-674, Springer-Verlag, ISBN 0387972587, New York, USA.
• Kasraoui, M.F., 2016. L'olivier. http://www.kasraoui.com.
• Kirde S., Gharsallaoui M, Mohamed Ali Triki A.M., et Rhouma A., 2011. Epidemiologie et etiologie de Pseudomonas savastanoi pv.savastanoi, agent causal de la tuberculosede l’olivier en Tunisie. Revue ezzaitouna. 12(1) : 1-4.
• Klebahn, H., 1913. Beitrage zur kenntnis der Fungi Imperfecti I.Eine Verticillium Krankheit auf Dahliaen. Mycologisches Zentralblatt 3: 49-66 • Klement Z.,Rudolph K., Sands D.C., 1990. Methods in
phytobacteriology. Kluwer academic publichers. Budapest 568p • Klosterman SJ, Atallah ZK, Vallad GE, Subbarao K.V., 2009.
Diversity, pathogenicity and management of Verticillium species. Annu. Rev. Phytopathol., 47:39–62.
• Kumar R., Tapwal A., Kumar Borah R., 2012. Verticillium Wilt infecting Parkia roxburghi seedling in manipur india. Academic Journal Inc., 1-6.
• Lavermicocca, P., Lonigro, S. L., Valerio, F., Evidente, A., Visconti, A., 2002.Reduction of Olive Knot Disease by a Bacteriocin from Pseudomonas
syringae pv.ciccaronei. Applied and Environmental Microbiology, 68, (3),
1403-1407. DOI: 10.1128/AEM.68.3.1403-1407.2002.
• Lola J., Mehna AM., Abou Chaar M., Selti MN., Adama F., 2011. Diversité genétique de Verticillium dahliae Kleb ; Agent causal de la verticillioe du coton en syrie. Arab J. Pl. Prot. Vol. 29, No. 1. 8 pages. • Loussert R. et Brousse C., 1978 – L’olivier, Techniques culturales et
productions méditerranéennes, Edit, C.P, Maisonneuve et larouse, Paris, 437p
• Lopez-Escudero F.J., Mercado-Blanco J., 2010. Verticillium wilt of olive : a case study to implement an integrated strategy to control a soil- borne pathogen. Plant. Soil., 1-50.
Systemic spread of Pseudomonas savastanoi pv. savastanoi in olive explants. Plant Pathology, 58:152-158.
• Martin-Lpierre A., 2011. Application de compost et de fumigants pour lutter contre la verticilliose de fraisier. Thèse. Doct. D’Etat. Univ. Laval (Canada). 108 p.
• Mataix J., Barbancho F,G., 2006. Olive oil in Mediterranean food. In : Olive oil and H ealth. Quiles J.L., Raminez-Tortosa M.C., Yaqoob P(Eds.), CAB Inernational, 41p.
• Ministère de l’agriculture, 2005 - Fiche des données statistiques. • MOURIDA.A, 2014. Contribution a l’étude des maladies cryptogamique
d’olivier dans la région hennaya – tlemcen. Mémoire en vue de l’obtention du diplôme de mastère en agronomie. Option: production et amélioration végétale. P69
• Nait taheen R., Boulouha B., et Benchabane., 1995 – étude des caractéristiques de la biologie florale chez les clones sélectionnés de la variété population « picholine marocaine» Olivae N° 58 pp : 48-53.
• Nicole, W., 2015. Europe’s Olive Trees Are Dying. Here’s Why You Should Care.
• P.Villa., 2003. La culture de l’olivier. DE.vitthi.95p
• Pangol, J., 1975.Précis de botanique pharmaceutique TOME 2, édition librairie Maloine, Paris.
• Pegg G.F., Brady B.L., 2002. Verticillium wilts. (Éditeur : CAB Internationnal). CABI Publishing, Wallingford, UK. 552p.
• Penyalver, R., García, A., Ferrer, A., Bertolini, E., Quesada, J.M., Salcedo, C.I., Piquer, J., Pérez-Panadés, J.,Carbonell, E.A., del Río,C., Caballero, J.M. & López, M.M., 2006. Factors affecting Pseudomonas
savastanoi pv. savastanoi plant inoculations and their use for evaluation of
olive cultivar susceptibility. Phytopathology, Vol. 96, No.3, (March 2006), pp. 313-319, ISSN 0031-949X.
• Protta, U., 1995. Le malattie dell’ olivo. InformatoreFitopatologico, No. 12, pp. 16-26, ISSN 0020-0735.
Penyalver, R., 2008. IS53: an insertion element for molecular typing of Pseudomonas savastanoi pv. savastanoi. Research in Microbiology 159, 207–15.
• Roland D., 1982 – l’olivier : trésor inconnu, Edit maison de livre, Chilsy, 55p.
• Schiff-Giorgini, R., 1906. Untersuchungenüber die tuberkelkrankheit des oelbaumes. Centralb. Bakteriol., Parasitenk. Abt. 2. 15, pp. 200-211
• Schnathorst W.C., Mathre D.E., 1966. Host range and differentiation of a severe form of Verticillium albo-atrum in cotton. Phytopathology, 56: 1155 – 1161.
• Schnathorst W.C., 1981. Verticillium wilt of olive and olive wilt.. Botanical Garden. J. Cramer.
• Serrhini M- N., 1992.- Les maladies cryptogamiques importantes sur olivier au Maroc.
• Smith, E.F., 1908. Recent studies on the olive-tubercle organism. U.S. Dept. Agr. Bur. Plant Indust. Bull. No. 131 Part, IV.
• Smith, E.F., 1920. Pathogenicity of the olive knot organism on hosts related to the olive. Phytopathology, Vol. 12, pp. 271-278, ISSN 0031- 949X.
• Surico, G., 1986. Indoleacetic acid and cytokinins in the olive knot disease. An overwiew of their role and their genetic determinants. In: Bailey J. (ed.). Biology and Molecular Biology of Plant Pathogen Interactions, Vol. H1, pp. 315- 329. NATO ASI Series. Springer-Verlag, Berlin, Germany. • Suslow T. V. , Schroth M.N., Isaka M., 1982. Application of rapide
method for Gram diferenciation of plant pathogenic and saprophytic bacteria without staining. Phytopathology , vol 72: 917-918.
• Tawil M.Z., Halak H. A. et Abdin M. M., 1991- Introduction a la lutte contre la Verticiliose de l'olivier.Olivae 39, 36-40.
• Tjamos E .C, 1983 - prospects for controlling Verticilium wilt of olive tree by soil solarisation .In Hellenic Congress on plant Diseased and Athens Greece(abstract p.15).
Internationale. Techniques de production en oléiculture. Madrid (Espagne). ISBN. 1 ère édition, 348p.
• Triki M.A., Hassairi A., Mahjoub M., 2006. Premières observations de Verticillium dahliae sur olivier en Tunisie-Bull EPPO Bull., 36(1) : 69-71. • Vallad G.E., Subbarao K.V., 2008. Colonization of resistant and
susceptible lettuce cultivars by a green fluorescent protein-tagged isolate of
Verticillium dahliae. Phytopathology, 98 : 871–885.
• Vigouroux A, 1975. Verticillium dahliae, agent d’un dépérissement de l’olivier en France. Ann. Phytopathol., 7 : 37-44.
• Villemer S et Dosba J, 1997 – mécanisme de fructification chez Olea
europea, Arboriculture, Vol III, Edit, 78p.
• Watanabe, 2001. Pictorial Atlas of Soil and Seed Fungi: Morphologies of Cultured Fungi and Key to Species. Second Edition,CRC Press, 486p. • Wilhelm S., 1955. Longevity of the Verticillium wilt fungus in laboratory
and field. Phytopathology, 45:180–181.
• Wilson, E.E., 1935. The olive knot disease: its inception, development and control.Hilgardia, 9, pp 233-264.
• Wilson, E.E. & Magie, A.R., 1964. Systemic invasion of the host plant by the tumorinducing bacterium, Pseudomonas savastanoi. Phytopathology, Vol. 54, pp. 576-579, ISSN 0031-949X.
• Wilson, E.E. & Ogawa, J.M., 1979. Fungal, bacterial, and certain nonparasitic diseases of fruit and nut crops in California, Division of Agricultural Sciences, University of California, ISBN 093187629X, Berkeley, USA.
• Young, J., 2004. Olive knot and its pathogens. Australien Plant Pathology, 33: 33–39.
• Young, J.M., Saddler, G.S., Takikawa, Y., De Boer, S.H.,Vaquterin, L.,Gardan,L.,Gvozdyak, R.I. & Stead De., 1996. Names of plant pathogenie bacteria. Review of plant pathology, 75: 721-763
77:195-207.
• Zohary, D. & Spiegel-Roy, P., 1975. Beginning of fruits growing in the old world. Science, 187: 319- 27
http://www.fao.org/docrep/004/X6545F/X6545F01.htm
• ZOUBIR, B. E. K. , 2017. Enquête sur la verticilliose de l’olivier dans la région de Tlemcen, Mémoire en Master, Option : Amélioration végétale. Université Abou Bekr Belkaid Tlemcen. P56.
PDA déshydraté ……….42g Eau distilée………1l Milieu levane Nutrient agar………....23 g /l D-glucose………...2.5g/l Sucre de table………50g /l Eau distillée………....…1l