• Aucun résultat trouvé

Chapitre 5. Discussion générale, conclusions et perspectives

5.1. Discussion générale

5.1.2. Limites des méthodes expérimentales

L’approvisionnement en eaux de cuisson a représenté un défi dans ce projet. En effet, ces dernières sont produites en Gaspésie durant les saisons de pêche respectives du crabe des neiges et du homard. Celles-ci durent seulement quelques semaines et leurs dates d’ouverture et de fermeture varient d’une année à l’autre157, 158. Ainsi, la principale limite de cette étude a été l’échantillonnage statistique des eaux de cuisson. Bien que les expériences aient été effectuées sur deux saisons de pêche distinctes, pour l’année 2016, des eaux d’une seule journée de production ont pu être obtenues pour le crabe des neiges et le homard. En 2017, seulement deux lots d’eau de cuisson de crabe des neiges ont pu être obtenus. Cela rend les comparaisons entre 2016 et 2017 impossibles d’un point de vue statistique. De plus, il n’est pas possible de faire des comparaisons statistiques entre le crabe des neiges et le homard. Certaines tendances globales ont toutefois pu être dégagées. Ainsi, il y a des différences entre la composition chimique et le profil aromatique du crabe des neiges et du homard. Les rétentats de homard contenaient moins de protéines, mais davantage de glucides que ceux du

81

crabe des neiges. La composition nutritionnelle du rétentat du crabe des neiges semble être constante d’une année à l’autre. Pour confirmer ces observations, d’autres analyses doivent être effectuées sur des lots de la saison de pêche 2018. Une autre conséquence de cet échantillonnage limité a été le manque de matière première pour réaliser certaines analyses pour les eaux de cuisson du lot 2016.

Une autre limite concerne l’analyse des composés responsables des flaveurs. En effet, bien que les composés volatils et non volatils aient été caractérisés, il est difficile de prédire avec certitude si le rétentat a des arômes et des saveurs agréables avant d’y avoir goûté. En effet, en plus de la quantification des molécules, le seuil de détection a une importance, puisqu’il permet d’évaluer la contribution d’une substance sur la saveur globale de l’aliment159. Ainsi, il se peut que certains composés non détectés ou détectés en faibles concentrations par chromatographie aient une grande influence sur le profil aromatique, alors que d’autres qui sont abondants n’ont que peu d’importance finalement. De plus, chez l’humain, il peut y avoir des interactions entre différents composés. Ce n’est pas le cas lors des analyses chromatographiques, puisque les molécules sont séparées160. Des analyses sensorielles seront donc nécessaires avant de mettre en marché cet ingrédient. De plus, certains composés non volatils ayant potentiellement un impact sur la saveur, soit les acides organiques, les bases organiques et les nucléotides, n’ont pas été dosés dans le cadre de cette étude.

L’innocuité microbiologique a été vérifiée à l’aide des comptes totaux. Cependant, la présence de pathogènes doit être investiguée, bien qu’ils aient probablement été inactivés par la cuisson56. Une seule toxine marine, l’acide domoïque, a pu être analysée et non trois, comme il était prévu de faire initialement. Cela est dû à des problèmes d’approvisionnement en acide okadaïque et en saxitoxine, cette dernière étant considérée comme une arme chimique161.

En outre, les caroténoïdes n’ont pas été dosés dans le cadre de ce projet de maîtrise, comme ces pigments sont liposolubles et que le rétentat contenait une quantité de lipides inférieure à 1 % en base sèche162. Cela est peu élevé en comparaison avec une étude dans laquelle de l’astaxanthine a été détectée dans des eaux de cuisson de crevettes qui contenaient 19 % de lipides en base sèche39. De plus, les rétentats ne présentaient pas de teinte orangée ou rosée

82

qui aurait pu indiquer la présence d’astaxanthine. Comme ce pigment sous sa forme libre est sensible à la chaleur, à la lumière et l’oxygène, il se peut également qu’il ait été dégradé163. 5.2. Conclusions et perspectives

En somme, un procédé de concentration des eaux de cuisson de crabe des neiges et de homard qui consiste en un traitement par osmose inverse suivi d’une lyophilisation a été développé. Cela a permis d’obtenir des rétentats riches en protéines et en minéraux. Les caractérisations effectuées sur ces rétentats démontrent que les rétentats d’eaux de cuisson lyophilisés sont susceptibles de pouvoir être utilisés comme ingrédients bioalimentaires concentrés en saveur, puisqu’ils contiennent des flaveurs désirables et sont sécuritaires pour la consommation humaine.

Concernant les travaux futurs, des formulations alimentaires pourraient être développées en incorporant les rétentats lyophilisés d’eau de cuisson dans des aliments, notamment des soupes, des sauces ou des trempettes. Cela devra être suivi d’analyses sensorielles. Les formulations élaborées pourraient être comparées à des produits commerciaux. La teneur en sodium des lyophilisats (8,87-10,37 %) devra être prise en compte lors de l’élaboration des formulations.

De plus, le procédé développé à l’échelle pilote pourrait éventuellement être mis à l’échelle industrielle et implanté en usine au sein de la chaîne de transformation des crustacés. Pour ce faire, une étude technico-économique devra être réalisée pour s’assurer de la rentabilité du procédé de concentration des eaux de cuisson et de la mise en marché du bio-ingrédient. Certains éléments devront être vérifiés dans la perspective d’une mise à l’échelle industrielle de ce procédé. Les paramètres opératoires du procédé membranaire devront à nouveau être optimisés. La faisabilité de concentrer davantage les eaux, c’est-à-dire de dépasser un FCV de 5X, pourrait être vérifiée. De plus, dans un souci de rentabilité, il serait souhaitable de tester un procédé moins onéreux que la lyophilisation, comme le séchage par atomisation, par exemple. Une optimisation des paramètres opératoires du séchage devrait être réalisée. De plus, des analyses sur la poudre obtenue devraient être effectuées pour évaluer l’impact du séchage sur ses caractéristiques, notamment concernant les composés responsables des flaveurs et les propriétés fonctionnelles.

83

Enfin, bien que ce projet de maîtrise était davantage focalisé sur le rétentat d’OI, des voies de valorisation du résidu pourraient également être explorées, pour l’alimentation animale, par exemple. Par ailleurs, réutiliser le perméat d’OI pourrait également être une option envisageable en industrie, puisque comme la membrane a retenu pratiquement toute la matière organique contenue dans les eaux, ces dernières sont beaucoup moins polluantes. Davantage de caractérisations sur le perméat doivent être cependant être effectuées pour s’assurer de la qualité de cette eau.

84

Bibliographie

1. Chandrasekaran, M., Need for Valorization of Food Processing By-Products and Wastes. Dans Valorization of Food Processing By-Products, Chandrasekaran, M., Ed. CRC Press: Boca Raton, 2013; pp 91-106.

2. Gowthaman, M. K.; Gowthaman, P.; Chandrasekaran, M., Principles of Food Technology and Types of Food Waste Processing Technologies. Dans Valorization

of Food Processing By-Products, Chandrasekaran, M., Ed. CRC Press: Boca Raton,

2013; Vol. 109, pp 109-145.

3. Roy, P.; Orikasa, T.; Nakamura, N.; Shiina, T., Environmental Sustainability in Food Processing. Dans Sustainable Food Processing, Tiwari, B. K.; Norton, T.; Holden, N. M., Eds. Wiley Blackwell: Chichester, 2014; pp 39-62.

4. Maxime, D.; Marcotte, M.; Arcand, Y., Consommation d'eau et formation d'effluents. Dans L’agriculture écologiquement durable au Canada: Série sur les indicateurs

agroenvironnementaux-Rapport No 2, Lefebvre, A.; Eilers, W.; Chunn, B., Eds.

Agriculture et Agroalimentaire Canada: Ottawa, 2005; pp 188-191.

5. Utilisation industrielle de l’eau-2011; Rapport 16-401-X; Statistique Canada; Ottawa, 2014; 91 p.

6. Jobidon, J. LIGNES DIRECTRICES SUR LES USINES DE TRANSFORMATION DE

PRODUITS MARINS; Ministère du Développement durable, de l'Environnement, de

la Faune et des Parcs (MDDEFP), Février 2013.

7. Theriault, M.; Courtenay, S. C.; Munkittrick, K.; Chiasson, A. G. WATER QUALITY

RESEARCH JOURNAL OF CANADA 2007, 42, 172-183.

8. Cros, S.; Lignot, B.; Jaouen, P.; Bourseau, P. J. Food Eng. 2006, 77, 697-707. 9. Amado, I. R.; Vazquez, J. A.; Murado, M. A.; Gonzalez, M. P. Food Bioprocess Tech.

2015, 8, 371-381.

10. Tonon, R. V.; dos Santos, B. A.; Couto, C. C.; Mellinger-Silva, C.; Brigida, A. I. S.; Cabral, L. M. C. Food Chem. 2016, 198, 20-27.

11. Vandanjon, L.; Cros, S.; Jaouen, P.; Quemeneur, F.; Bourseau, P. Desalination 2002,

144, 379-385.

12. Bourseau, P.; Masse, A.; Cros, S.; Vandanjon, L.; Jaouen, P. J. Food Eng. 2014, 128, 157-166.

13. Communication personnelle, E. Gagnon et Fils Ltée, 2016.

14. Cambero, M. I.; Jaramillo, C. J.; Ordonez, J. A.; Cobos, A.; Pereira-Lima, C. I.; de Fernando, G. D. G. Eur. Food Res. Technol. 1998, 206, 311-322.

15. Jayarajah, C. N.; Lee, C. M. J. Food Sci. 1999, 64, 93-98.

16. Cha, Y. J.; Cadwallader, K. R.; Baek, H. H. J. Food Sci. 1993, 58, 525-530. 17. Monographie sur l'industrie du crabe des neiges au Québec; Publication 15-0069;

85

18. Pêche et aquaculture commerciales au Québec en un coup d'oeil; Publication 18-

0095; MAPAQ: Québec, 2018.

19. Coproduits de crabe des neiges; Merinov, 2013.

20. Sow, R. Monographie de l'industrie québécoise du homard d'Amérique; Publication 12-0016; MAPAQ, 2012.MAPAQ, Monographie de l'industrie québécoise du homard d'Amérique. 2012.

21. Gardner, M.; Marriott, H.; Rodger, R.; Sackton, J. From Trap to Table-A Long Term

Value Strategy for the Canadian Lobster Industry; 2010, 160 p.

22. Pêches et Océans Canada. Crabe des neiges (Chionoecetes opilio) Région de Terre- Neuve et du Labrador - 2009-2011. http://www.dfo-mpo.gc.ca/fm-gp/peches- fisheries/ifmp-gmp/snow-crab-neige/snow-crab-neiges2009-fra.htm (consulté le 6 juin 2018).

23. Pêches et Océans Canada.Canada. Pêches hauturières du homard et du crabe nordique - Régions maritimes - Septembre 2016. http://www.dfo-mpo.gc.ca/fm-gp/peches- fisheries/ifmp-gmp/lobster-crab-homard/index-fra.htm (consulté le 6 juin 2018). 24. Tchoukanova, N.; Gonzalez, M.; Poirier, S. Guide de bonnes pratiques de gestion de

la matière première, de l’eau et des effluents pour les usines de transformation de produits marins du Nouveau-Brunswick; Institut de recherche sur les zones côtières

Inc.: 2004; 40 p.

25. Waldron, K., Waste minimization, management and co-product recovery in food processing: an introduction. Dans Handbook of waste management and co-product

recovery in food processing; Waldron, K., Ed; CRC Press: Boca Raton, 2007; pp 3-

20.

26. Journal officiel de l'Union Européenne C 17, 19.1.2013 p.47.

27. Beaulieu, L.; Thibodeau, J.; Bryl, P.; Carbonneau, M. E. Bioresource Technology 2009, 100, 3332-3342.

28. Venugopal, V., Seafood Processing Wastes. Dans Marine Products for Healthcare:

Functional and Bioactive Nutraceutical Compounds from the Ocean; CRC Press:

Boca Raton, 2009; pp 185-219.

29. Beaulieu, L.; Thibodeau, J.; Desbiens, M.; Saint-Louis, R.; Zatylny-Gaudin, C.; Thibault, S. Probiotics and Antimicrobial Proteins 2010, 2, 197-209.

30. Beaulieu, L.; Thibodeau, J.; C., B.; Bryl, P.; Carbonneau, M. E. PharmaNutrition 2013, 1, 149–157.

31. Bueno-Solano, C.; Lopez-Cervantes, J.; Campas-Baypoli, O. N.; Lauterio-Garcia, R.; Adan-Bante, N. P.; Sanchez-Machado, D. I. Food Chem. 2009, 112, 671-675. 32. Ouellet, D.; Carbonneau, M.E.; Renaud, N. Portrait des caroténoïdes des coproduits

de crustacés marins; Rapport 15-03; Merinov, 2015.

33. Boardman, G. D., Waste Treatment. Dans The Seafood Industry: Species, Products,

Processing, and Safety, Second Edition; Granata, L. A.; Flick, G. J.; Roy, M. E., Eds.

86

34. Direction générale de la pollution des eaux. Lignes directrices concernant l’effluent

du traitement du poisson; Rapport EPS-1-WP-75-1; Environnement Canada: Ottawa,

Juin 1975.

35. Jamieson, B. L.; Goncalves, A. A.; Gagnon, G. A. Can. J. Civil Eng. 2010, 37, 167- 178.

36. Konosu, S.; Yamaguchi, K., The Flavor Components in Fish and Shellfish. Dans

Chemistry & biochemistry of marine food products; Martin, R. E., Ed. AVI Pub. Co:

Westport, Conn, 1982; pp 367-404.

37. Cerny, C., Savory Flavors. Dans Handbook of Meat, Poultry and Seafood Quality; Nollet, L. M. L., Ed. Blackwell Publishing Ltd.: Chichester, 2012; pp 105-126. 38. Harnedy, P. A.; FitzGerald, R. J. Journal Funct. Foods 2012, 4, 6-24.

39. Pérez-Santín, E.; Calvo, M. M.; Lopez-Caballero, M. E.; Montero, P.; Gomez- Guillen, M. C. Lwt-Food Science and Technology 2013, 54, 87-94.

40. Wilding, P.; Lillford, P. J.; Regenstein, J. M. Journal of Chemical Technology and

Biotechnology B-Biotechnology 1984, 34, 182-189.

41. Shamasunder, B. A.; Prakash, V. J. Agric. Food Chem. 1994, 42, 169-174.

42. Bragadottir, M.; Reynisson, E.; Porainsdottir, K. A.; Arason, S. J. Aquat. Food Prod.

Technol. 2007, 16, 115-136.

43. Venugopal, V.; Chawla, S. P.; Nair, P. M. J. Muscle Foods 1996, 7, 55-71.

44. Simpson, B. K.; Nayeri, G.; Yaylayan, V.; Ashie, I. N. A. Food Chem. 1998, 61, 131- 138.

45. Kim, H.; Cadwallader, K. R., Instrumental Analysis of Seafood Flavour. Dans

Handbook of Seafood Quality, Safety and Health Applications; Alasavar, C.; Shahidi,

F.; Miyashita, K.; Wanasudara, U., Eds. Wiley‐Blackwell: Chichester, 2010; pp 50- 67.

46. Skoog, D. A.; Crouch, S. R.; Holler, F. J., Principles of Instrumental Analysis, 6th ed. Thomson Brooks/Cole: Belmont, CA, 2007; 1039 p.

47. Chung, H. Y.; Cadwallader, K. R. J. Agric. Food Chem. 1994, 42, 2867-2870. 48. Lee, G. H.; Suriyaphan, O.; Cadwallader, K. R. J. Agric. Food Chem. 2001, 49, 4324-

4332.

49. Sarnoski, P. J.; O'Keefe, S. F.; Jahncke, M. L.; Mallikarjunan, P.; Flick, G. J., Food

Chem, 2010, 122, 930-935.

50. Konosu, S.; Yamaguchi, K.; Hayashi, T. B. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1978, 44, 505-510. 51. Hayashi, T.; Yamaguchi, K.; Konosu, S. B. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1978, 44, 1357-

1362.

52. Hayashi, T.; Asakawa, A.; Yamaguchi, K.; Konosu, S. B. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1979,

45, 1325-1329.

53. Hayashi, T.; Yamaguchi, K.; Konosu, S. J. Food Sci. 1981, 46, 479-483, 496. 54. Jay, J. M.; Loessner, M. J.; Golden, D. A., Processed Meats and Seafoods. Dans

87

55. ACIA. Manuel des normes et méthodes, Poissons et produits de la mer.

http://www.inspection.gc.ca/aliments/poisson-et-produits-de-la- mer/manuels/manuel-des-normes-et-

methodes/fra/1348608971859/1348609209602?chap=7#s19c7

(consulté le 17 octobre 2017).

56. International Commission on Microbiological Specifications for Foods (ICMSF), Fish and Seafoods Products. Dans Microorganisms in foods 8: Use of Data for

Assessing Process Control and Product Acceptance; Springer: New York, 2011., pp

107-133.

57. MAPAQ. 2009. Lignes directrices et normes pour l'interprétation des résultats analytiques en microbiologie alimentaire.

58. Reddy, N. R.; Armstrong, D. J.; Rhodehamel, E. J.; Kautter, D. A. J. Food Safety 1992, 12, 87-118.

59. Hajeb, P.; Sloth, J. J.; Shakibazadeh, S.; Mahyudin, N. A.; Afsah-Hejri, L., Compr.

Rev. Food Sci. and Food Saf. 2014, 13, 457-472.

60. Reilly, C., Metal Contamination of Food: Its Significance for Food Quality and

Human Health. Blackwell Science: Osney Mead, Oxford, 2002; 266 p.

61. Llobett, J. M.; Falco, G.; Casas, C.; Teixido, A.; Domingo, J. L., J. Agric. Food

Chem. 2003, 51, 838-842.

62. Santé Canada. Concentrations maximales établies par Santé Canada à l'égard de contaminants chimiques dans les aliments. http://www.hc-sc.gc.ca/fn- an/securit/chem-chim/contaminants-guidelines-directives-fra.php (consulté le 21 mars 2017).

63. FAO. Heavy Metals Regulations Legal Notice No 66/2003.

64. Metian, M.; Charbonnier, L.; Oberhaensli, F.; Bustamante, P.; Jeffree, R.; Amiard, J. C.; Warnau, M. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2009, 72, 1499-1502.

65. Houlbreque, F.; Herve-Fernandez, P.; Teyssie, J. L.; Oberhaensli, F.; Boisson, F.; Jeffree, R., Food Chem. 2011, 126, 917-921.

66. Jorhem, L.; Engman, J.; Sundstrom, B.; Thim, A. M. Arch. Environ. l Contam.

Toxicol. 1994, 26, 137-142.

67. Santé Canada. Toxines naturelles - Contaminants chimiques - Salubrité des aliments - Santé Canada. http://www.hc-sc.gc.ca/fn-an/securit/chem-chim/toxin-natur/index- fra.php (consulté le 28 février 2017).

68. ACIA. Marine Toxins in Bivalve Shellfish: Paralytic Shellfish Poisoning, Amnesic Shellfish Poisoning and Diarrhetic Shellfish Poisoning. http://www.inspection.gc.ca/food/information-for-consumers/fact-sheets-and-

infographics/specific-products-and-risks/fish-and-seafood/toxins-in-

shellfish/eng/1332275144981/1332275222849 (consulté le 28 février 2017).

69. Dubois, M.; Demoulin, L.; Charlier, C.; Singh, G.; S.B., G.; Campbell, K.; Elliott, C. T.; Delahaut, Ph. Food Addit. & Contam. Part A 2010, 27, 859-868.

88

71. Cros, S.; Lignot, B.; Bourseau, P.; Jaouen, P.; Prost, C. J. Food Eng. 2005, 69, 425- 436.

72. Lee, A.; Elam, J. W.; Darling, S. B. Environ. Sci.: Water Res. Technol. 2016, 2, 17- 42.

73. Bazinet, L.; Castaigne, F., Débactérisation, concentration et purification par procédés baromembranaires. Dans Concepts de génie alimentaire, TEC & DOC: Paris, 2011; pp 461-526.

74. Uragami, T., Comparison of Pressure-Driven Membrane Separation Processes. Dans

Science and Technology of Separation Membranes, Wiley: Chichester, West Sussex,

UK, 2017; pp 379-383.

75. Baker, R. W., Reverse Osmosis. Dans Membrane Technology and Applications, Wiley-Blackwell: Oxford, 2012; pp 207-251.

76. Brans, G.; Schroen, C.; van der Sman, R. G. M.; Boom, R. M., J. Membr. Sci. 2004,

243, 263-272.

77. Bazinet, L.; Castaigne, F., Déminéralisation, enrichissement et stabilisation par procédés électromembranaires. Dans Concepts de génie alimentaire, TEC & DOC: Paris, 2011; pp 528-568.

78. Berk, Z., Membranes Processes. Dans Food Process Engineering and Technology, Academic Press: Amsterdam, 2009; pp 233-257.

79. Ghosh, R., Ultrafiltration-Based Protein Bioseparation. Dans Handbook of

Membrane Separations, Pabby, A. K.; Rizvi, S. S. H.; Sastre, A. M., Eds. CRC

Press: Boca Raton, 2009; pp 497-511.

80. Freger, V.; Arnot, T. C.; Howell, J. A. J. Membr. Sci. 2000, 178, 185-193.

81. Walha, K.; Ben Amar, R.; Masse, A.; Bourseau, P.; Cardinal, M.; Cornet, J.; Prost, C.; Jaouen, P. 2011, 44, 153-157.

82. Bazinet, L.; Castaigne, F., Le séchage ou la déshydratation des aliments. Dans

Concepts de génie alimentaire, TEC & DOC: Paris, 2011; pp 411-460.

83. Brennan, J. G., Evaporation and Dehydration. In Food Processing Handbook, Brennan, J. G., Ed. Wiley-VCH: Weinheim, 2006; pp 71-124.

84. Brennan, J. G.; Grandison, A. S.; Lewis, M. J., Separations in Food Processing. In

Food Processing Handbook, Brennan, J. G., Ed. Wiley-VCH: Weinheim, 2006; pp

429-511.

85. Fellows, P. J., Dehydration. Dans Food Processing Technology : Principles and

Practice, 4th ed.; Woodhead Publishing/Elsevier Science: Kent, 2017; pp 661-716. 86. Singh, R. P.; Heldman, D. R., Introduction to Food Engineering; Elsevier/Academic

Press: Amsterdam, 2009; 841 p.

87. Fellows, P. J., Freeze drying and freeze concentration. In Food Processing

Technology : Principles and Practice, 4th ed.; Woodhead Publishing/Elsevier Science: Kent, 2017; pp 929-945.

88. Communication personnelle, Service de soutien à l'innovation de l'Institut sur la nutrition et les aliments fonctionnels (INAF), 2016.

89 89. Nestlé Professional. Minor's Crab Base.

https://www.nestleprofessional.us/minors/minors-crab-base-no-added-msg-gluten-

90. Nestlé Professional. Minor's Lobster Base.

https://www.nestleprofessional.us/minors/minors-lobster-base-no-added-msg- gluten-free-6-x-1-pound (consulté le 6 décembre 2016).

91. North Taste. All-Natural Seafood Flavorings. http://www.northtaste.ca/index.php

(consulté le 2 juillet 2018).

92. Sogelco. Lobsterine et Crabterine. http://www.sogelco.com/?lang=fr/#company

(consulté le 6 décembre 2016).

93. Joh, Y.; Hood, L. F. J. Food Sci. 1979, 44, 1612-1614 et 1624.

94. Burnette, J. A.; Flick, G. J.; Miles, J. R.; Ory, R. L.; Stangelo, A. J.; Dupuy, H. P.

J. Food Sci. 1983, 48, 353-359.

95. Reddy, N. R.; Flick, G. J.; Dupuy, H. P.; Boardman, G. D. J. Food Sci. 1989, 54, 55-59 et 182.

96. Shiau, C. Y.; Chai, T. J. Food Sci. 1990, 55, 374-378.

97. Cros, S.; Lignot, B.; Bourseau, P.; Jaouen, P. Desalination 2005, 180, 263-269. 98. Les crustacés du Québec; Publication 09-0017; MAPAQ, 2009.

99. AMEC Earth and Environemental Limited. Management of wastes from Atlantic

seafood processing operations; Rapport TE23016; Soumis au National Programme

of Action Atlantic Regional Team, Dartmouth, 2003; 135 p.

100. Direction de l'innovation et des technologies (DIT). Rapport d'activités 2005-2006; Publication 07-0017; MAPAQ, 2007.

101. Matiella, J. E.; Hsieh, T. C. Y. J. Food Sci. 1990, 55, 962-966. 102. Chung, H. Y. J. Agric. Food Chem. 1999, 47, 2280-2287. 103. Yu, H. Z.; Chen, S. S. Food Res. Int. 2010, 43, 2081-2086.

104. Wu, N.; Gu, S. Q.; Tao, N. P.; Wang, X. C.; Ji, S. R. J. Food Sci. 2014, 79, C1250- C1259.

105. AOAC International. 2012. Official methods of analysis. AOAC International: Gaithersburg, MD.http://www.eoma.aoac.org, Méthodes officielles 950.46 et 938.08.

106. Spinelli, J.; Lehman, L.; Wieg, D. Journal of the Fisheries Research Board of Canada 1974, 31, 1025-1029.

107. Tieman, D. M.; Zeigler, M.; Schmelz, E. A.; Taylor, M. G.; Bliss, P.; Kirst, M.; Klee, H. J. J. Exp. Bot. 2006, 57, 887-896.

108. Szkudzinska, K.; Smutniak, I.; Rubaj, J.; Korol, W.; Bielecka, G. Accredit. and

Qual. Assur. 2017, 22, 247-252.

109. Sanchez-Machado, D. I.; Chavira-Willys, B.; Lopez-Cervantes, J. J. Chromatogr. B-

Analyt. Technol. Biomed. and Life Sci. 2008, 863, 88-93.

90

111. Cros, S.; Lignot, B.; Razafintsalama, C.; Jaouen, P.; Bourseau, P. J. Food Sci. 2004,

69, C435-C442.

112. Hamed, I.; Ozogul, F.; Regenstein, J. M. Trends Food Sci. Technol. 2016, 48, 40-50. 113. Bu, J. Z.; Dai, Z. Y.; Zhou, T.; Lu, Y. B.; Jiang, Q. Q. J. Sci. Food Agric. 2013, 93,

2267-2275.

114. Saidel, L. J.; Goldfarb, A. R.; Waldman, S. J. Biol. Chem. 1952, 197, 285-291. 115. Kuipers, B. J. H.; Gruppen, H. J. Agric. Food Chem. 2007, 55, 5445-5451.

116. Jonsdottir, R.; Olafsdottir, G.; Hauksson, S.; Einarsson Jon, M. Flavorants from Seafood Byproducts. Dans Handbook of Food Products Manufacturing, Hui, Y. H., Ed. John Wiley & Sons: Hoboken, 2006; pp 931-945.

117. Vejaphan, W.; Hsieh, T. C. Y.; Williams, S. S. J. Food Sci. 1988, 53, 1666-1670. 118. Forss, D. A. Prog. Chem. Fats Other Lipids 1973, 13, 177-258.

119. Whitfield, F. B., Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 1992, 31, 1-58.

120. Heath, H. B.; Reineccius, G. Flavor Formed via Fermentation. Dans Flavor

Chemistry and Technology. AVI Publishing Co.: Wesport, 1986.

121. Iglesias, J.; Gallardo, J. M.; Medina, I., Food Chem. 2010, 123, 771-778. 122. Hayashi, T.; Ishii, H.; Shinohara, A. Food Rev. Int. 1990, 6, 521-536.

123. Cha, Y. J.; Baek, H. H.; Hsieh, T. C. Y. J. Sci. Food Agric. 1992, 58, 239-248. 124. Chung, H. Y.; Cadwallader, K. R. J. Food Sci. 1993, 58, 1203-1207.

125. Zhang, Y. G.; Ho, C. T. J. Agric. Food Chem. 1991, 39, 760-763.

126. Pan, B. S.; Tsai, J. R.; Chen, L. M.; Wu, C. M., Lipoxygenase and Sulfur-Containing Amino Acids in Seafood Flavor Formation. Dans Flavor and Lipid Chemistry of

Seafoods, Cadwallader, K. R.; Shahidi, F., Eds. American Chemical Society:

Washington, DC, 1997, pp 64-75.

127. Pang, X. L.; Guo, X. F.; Qin, Z. H.; Yao, Y. B.; Hu, X. S.; Wu, J. H. J. Agric. Food

Chem. 2012, 60, 4179-4185.

128. Cheremisinoff, N. P., Handbook of Industrial Toxicology and Hazardous Materials. Marcel Dekker: New York, 1999.

129. Fisheries and Oceans Canada. Canada's Fisheries Fast Facts 2017. http://www.dfo- mpo.gc.ca/stats/FastFacts_17-eng.pdf (consulté le 27 août 2018).

130. Dubois, M.; Gilles, K. A.; Hamilton, J. K.; Rebers, P. A.; Smith, F. Anal. Chem. 1956,

28, 350-356.

131. American Public Health Association (APHA), Standard methods for the examination

of water and wastewater, 21st ed.; APHA, American Water Works Association, Water Environmental Federation : Washington DC, 2005. Méthode 4500-H+.

132. Santé Canada. 2015. Méthodes officielles pour l’analyse microbiologique des aliments, Méthode MFHPB-18.

133. AACC International. 1999. Approved Methods of Analysis, 11th Ed, AACC International: St. Paul, MN http://dx.doi.org/10.1094/AACCIntMethod-56-30.01, Méthode 56-30.01.

91

134. AOAC International. 2012. Official methods of analysis. AOAC International: Gaithersburg, MD http://www.eoma.aoac.org, Méthode officielle 991.20.

135. Bondu, S.; Bonnet, C.; Gaubert, J.; Deslandes, E.; Turgeon, S. L.; Beaulieu, L., J.

Appl. Phycol. 2015, 27, 2059-2074.

136. Hell, A.; Labrie, S.; Beaulieu, L. International Journal of Food Science and

Technology 2018, 53, 1054-1064.

137. Chang, S. K. C.; Zhang, Y., Protein Analysis. Dans Food Analysis, 5th ed.; Nielsen, S. S., Ed. Springer International Publishing: Cham, 2017; pp 315-331.

138. World Health Organization. pH in Drinking-water; Genève, 2007; 2 p.

139. Mandeville, S.; Yaylayan, V.; Simpson, B. K. Food Biotechnol. 1992, 6, 51-64. 140. Christensen, L. P.; Edelenbos, M.; Kreutzmann, S., Fruits and Vegetables of

Moderate Climate. Dans Flavours and Fragrances: Chemistry, Bioprocessing and

Sustainability, Berger, R. G., Ed. Springer Berlin Heidelberg: Berlin, Heidelberg,

2007; pp 135-187.

141. Jin, Y. F.; Deng, Y.; Yue, J.; Zhao, Y. Y.; Yu, W. J.; Liu, Z. D.; Huang, H. L.,

CyTA-Journal of Food 2015, 13, 434-444.

142. Baek, H. H.; Cadwallader, K. R., Character-Impact Aroma Compounds of Crustaceans. Dans Flavor and Lipid Chemistry of Seafoods, Cadwallader, K. R.; Shahidi, F., Eds. American Chemical Society: Washington, DC, 1997, pp 85-94. 143. Mottram, D. S.; Mottram, H. R., An overview of the contribution of sulfur-containing

compounds to the aroma in heated foods. Dans Heteroatomic Aroma Compounds, Reineccius, G.A.; Reineccius, T.A., Eds. American Chemical Society: Washington, DC, 2002, pp 81-100.

144. AOAC International, Guidelines for Single Laboratory Validation of Chemical

Methods for Dietary Supplements and Botanicals.

http://www.eoma.aoac.org/app_k.pdf (consulté le 6 juillet 2017).

145. Kinsella, J. E.; Melachouris, N., Functional properties of proteins in foods: A survey. C R C Crit. Rev. Food Sci. Nut. 1976, 7, 219-280.

146. US Food and Drug Administration (FDA). Approximate pH of Foods and Food Products.

http://www.webpal.org/SAFE/aaarecovery/2_food_storage/Processing/lacf-phs.htm

(consulté le 15 novembre 2017).

147. Belitz, H. D.; Grosch, W.; Schieberle, P., Amino Acids, Peptides, Proteins. Dans

Food Chemistry, 4th ed.; Springer-Verlag: Berlin, 2009; pp 8-92. 148. Quinn, J. R.; Paton, D., Cereal Chem. 1979, 56, 38-40.

149. Chen, J. Y.; Piva, M.; Labuza, T. P. J. Food Sci. 1984, 49, 59-63.

150. Hutton, C. W.; Campbell, A. M. Abstr. Pap. Am. Chem. Soc. 1980, 179, 178-200. 151. Dudonne, S.; Vitrac, X.; Coutiere, P.; Woillez, M.; Merillon, J. M. J. Agric. Food

Chem. 2009, 57, 1768-1774.

152. Harada, K.; Maeda, T.; Hasegawa, Y.; Tokunaga, T.; Ogawa, S.; Fukuda, K.; Nagatsuka, N.; Nagao, K.; Ueno, S. Mol. Med. Rep. 2011, 4, 919-922.

92

153. Wu, X. L.; Beecher, G. R.; Holden, J. M.; Haytowitz, D. B.; Gebhardt, S. E.; Prior, R. L. J. Agric. Food Chem. 2004, 52, 4026-4037.

154. Theodore, A. E.; Raghavan, S.; Kristinsson, H. G. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 7459-7466.

155. Prior, R. L.; Wu, X. L.; Schaich, K. J. Agric. Food Chem. 2005, 53, 4290-4302. 156. Perez-Jimenez, J.; Saura-Calixto, F., Food Res. Int. 2006, 39, 791-800.

Documents relatifs