• Aucun résultat trouvé

1. Principaux résultats

Les travaux présentés dans le chapitre 2 (article) démontrent que nous avons développé une formulation capable d’encapsuler sélectivement de l’EA, le tVA et le tPA. Nous avons une structure nanométrique de type « vésiculaire » avec un diamètre autour de 100 nm encapsulant les TFA. Ces formulations sont stables physiquement et chimiquement durant une semaine. Après administration par voie orale, les TFA encapsulés dans ces vésicules sont absorbés et libérés dans la circulation sanguine. Les acides gras présents dans la lécithine ne semblent pas influencer le profil sanguin en lipides, étant donné l’abondance de ce phospholipide dans les aliments. Parce que les lipides d’intérêts peuvent être encapsulés, il est possible de mesurer sélectivement leur l’impact en physiologie. En ce sens, cela pourrait nous permettre de différencier les effets biologiques des TFA de ruminants par rapport à leurs homologues d’origine industrielle. Enfin, les formulations peuvent être aisément dispersées dans l’eau et incorporées dans des bouteilles d’eau pour faciliter les études comportementales. Cela offre de nouvelles possibilités d’évaluer simplement la préférence des animaux vivants pour les macronutriments.

2. Limitations

A l’étape de synthèse des formulations, nous avons utilisé des solvants organiques (chloroforme) pour solubiliser les phospholipides. L’utilisation de solvants organiques dans les produits alimentaires sont réglementés et sont utilisés pour dissoudre, diluer, extraire, disperser ou acheminer un additif alimentaire, un constituant, un ingrédient ou un autre aliment. Étant donné la règlementation, l’utilisation de chloroforme (même évaporé) peut être limité si ces formulations sont destinées à supplémenter un produit alimentaire. Actuellement, la limite d’acceptabilité du chloroforme dans les aliments est de 60 ppm (0.6 mg/jour) (163).

Également, les vésicules encapsulant les TFA étaient stables physiquement et chimiquement pendant 7 jours. Des études de stabilité complémentaires doivent être réalisées pour comprendre les changements micro- et macroscopiques observés au-delà de 7 jours. Aussi, pour améliorer la stabilité des formulations, l’incorporation de molécules tels que des antioxydants pourrait permettre de protéger les formulations de la dégradation. En ce sens, plusieurs études encapsulant de la vitamine C, E et des caroténoïdes ont démontré que ces molécules peuvent améliorer la stabilité de certaines formulations (164-166).

Lors des études comportementales en Intellicage, 800mL de formulation par cage étaient à prévoir pour assurer le bon déroulement de l’étude. Nous avons remarqué que la gestion du temps est un facteur limitant pour les études requérant une grande quantité de formulations. Par exemple, lors de la préparation des études en Intellicage, nous avons eu des difficultés à solubiliser le film lipidique à l’étape de synthèses des formulations. De ce fait, les formulations ont été diluées davantage pour faciliter la solubilisation du film de lipides. Par la suite ces formulations diluées ont dû être reconcentrées puis ajuster en fonction de la concentration en phosphore. Ainsi, toutes les étapes expérimentales réalisées pour des plus petits volumes (>20mL) sont sujettes à être adaptées ou modifiées pour de plus grands volumes de formulations. Étant donné que la réalisation de formulations en grands volumes reste limitée au laboratoire, l’ajout d’agents cryoprotecteurs dans les formulations permettrait de les lyophiliser et de les conserver pour répondre aux besoins des études in vivo futures.

La méthode colorimétrique SPV à initialement été développée pour déterminer la concentration en TFA dans nos échantillons sans systématiquement effectuer une analyse par GC-FID. L’hypothèse de pouvoir quantifier les TFA dans nos formulations n’a malheureusement pas pu être vérifiée, parce que la méthode a été abandonnée, puisque l’entente avec la plateforme de lipidomique a rendu le GC-FID davantage disponible. Dans les résultats complémentaires présentés au chapitre 3, les acides gras insaturés présents dans la lécithine interféraient dans la réaction de quantification des TFA. L’utilisation de cette méthode quantitative serait envisageable pour les formulations utilisant des phospholipides purifiés, tel le HSPC

(Hydrogenated soybean phosphatidylcholine). En raison de l’absence d’insaturation dans ce matériau, celui-ci n’interfère pas avec la réaction SPV. Dans ce cas les deux méthodes colorimétriques complémentaires permettraient de quantifier la concentration en phosphore et TFA dans un échantillon.

Perspectives

Nous pourrions améliorer la méthode de synthèse des formulations en utilisant les solvants autorisés dans l’alimentation (167). Par exemple, l’éthanol figure parmi les solvants couramment utilisés pour solubiliser les acides gras (168). L’éthanol est le seul solvant organique qui peut être trouver en concentrations élevées dans certains produits destinés à la consommation humaine (les boissons alcoolisées). En utilisant préférablement ces solvants, cela permettrait aux nanovésicules d’être incorporées pour supplémenter un produit alimentaire. Également, nous avons fait les études comportementales en cages intelligentes, chez des animaux sains, en présence de formulations contenant de l’EA. Il serait intéressant de faire ces études comportementales avec le tVA et tPA; mais également avec d’autres acides gras. Toujours en Intellicage, il serait envisageable d’étudier le comportement d’animaux malades et/ou obèses, lorsqu’ils sont en présence des formulations contenant des acides gras d’intérêts. Ici, les études comportementales ont permis d’évaluer la palatabilité des formulations, et d’éviter les risques de déshydratation chez les animaux. Si c’était une étape nécessaire en absence d’information préalable, ce type d’études n’est pas nécessaire pour évaluer les facteurs de risques associés aux TFA. Pour poursuivre les recherches, une nouvelle demande de subvention a été demandée pour effectuer les études in vivo à court terme et long terme, en cage normale. En comparaison aux études en Intellicage, une seule bouteille de formulations (1 x 200 mL) est nécessaire en cage normale. Ainsi, les quantités moindres de formulations à prévoir pourraient augmenter la faisabilité de ces études.

Conclusion

Nos travaux reposent sur l’utilisation de vésicules de lécithine comme outil permettant de fournir des macronutriments hydrophobes pour les études animales. Nous avons observé que la lécithine comme ingrédient dans nos formulations à une bioactivité minime en raison de son abondance dans les aliments. Nous avons comparé et évaluer les étroites similitudes entre la composition en acides gras présents dans la lécithine et ceux trouvés dans différentes diètes pour rongeurs. Ces travaux justifient élégamment, par une expérience simple, la pertinence de cet excipient « neutre » pour préparer les vésicules. Cela pourrait offrir des perspectives pour utiliser cet ingrédient pour les applications en sciences de l’alimentation et dans la délivrance de médicaments. Également, notre étude a démontré que ces vésicules assurent la biodisponibilité des TFA et offrent un moyen de supplémenter l’alimentation des animaux à des lipides de manière individuelle. Ainsi, l’encapsulation des TFA dans des vésicules permet d’étudier leurs effets sans interférence des autres ingrédients des matrices alimentaires. Également, nous démontrons qu’il est possible d’effectuer des études comportementales chez les animaux avec des nanovesicules hydrodispersibles. L’utilisation des cages intelligentes sophistiquées pour les études comportementales est récente. Jusqu’à présent, ces cages étaient utilisées dans les études de palatabilité qui se limitaient à l’utilisation de composés hydrophiles qui pouvaient être facilement dissous dans l’eau. Les nanovésicules proposées dans ce travail ouvrent la voie à un large éventail d’investigations où les macronutriments peuvent influencer les comportements alimentaires. Cela ouvre la porte à l’élaboration de projets de recherche en nutrition et en science des aliments. En s’inspirant des méthodes utilisées dans le domaine pharmaceutique, il est possible de développer une formulation encapsulant des TFA biodisponibles permettant de faciliter les études dans des modèles animaux. Ces travaux serviront de base pour décrire et comprendre les effets à court terme des R-TFA sur les facteurs de risques associés au DT2.

Bibliographie

1. Pillon F, Tan K, Jouty P, Frullani Y. Diabète de type 2 : l’essentiel sur la pathologie. Actualités Pharmaceutiques. 2014;53(541):18-22.

2. Duckworth W, Abraira C, Moritz T, Reda D, Emanuele N, Reaven PD, et al. Glucose Control and Vascular Complications in Veterans with Type 2 Diabetes. New England Journal of Medicine. 2009;360(2):129-39.

3. Intensive Blood Glucose Control and Vascular Outcomes in Patients with Type 2 Diabetes. New England Journal of Medicine. 2008;358(24):2560-72.

4. Intensive blood-glucose control with sulphonylureas or insulin compared with conventional treatment and risk of complications in patients with type 2 diabetes (UKPDS 33). The Lancet. 1998;352(9131):837-53.

5. Federation ID. IDF Diabetes Atlas, 7th edn. 8th ed2017.

6. Chazelas E, Srour B, Desmetz E, Kesse-Guyot E, Julia C, Deschamps V, et al. Sugary drink consumption and risk of cancer: results from NutriNet-Santé prospective cohort. BMJ. 2019;366:l2408.

7. Orozco LJ, Buchleitner AM, Gimenez‐Perez G, Roqué i Figuls M, Richter B, Mauricio D. Exercise or exercise and diet for preventing type 2 diabetes mellitus. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2008(3).

8. Merlotti C, Morabito A, Pontiroli AE. Prevention of type 2 diabetes; a systematic review and meta-analysis of different intervention strategies. Diabetes, Obesity and Metabolism. 2014;16(8):719-27.

9. Reduction in the Incidence of Type 2 Diabetes with Lifestyle Intervention or Metformin. New England Journal of Medicine. 2002;346(6):393-403.

10. Pernicova I, Korbonits M. Metformin—mode of action and clinical implications for diabetes and cancer. Nature Reviews Endocrinology. 2014;10:143.

11. Salpeter SR, Greyber E, Pasternak GA, Salpeter EE. Risk of fatal and nonfatal lactic acidosis with metformin use in type 2 diabetes mellitus. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2010(1).

12. Inzucchi SE, Lipska KJ, Mayo H, Bailey CJ, McGuire DK. Metformin in Patients With Type 2 Diabetes and Kidney Disease: A Systematic ReviewMetformin in Type 2 Diabetes and Kidney DiseaseMetformin in Type 2 Diabetes and Kidney Disease. JAMA. 2014;312(24):2668-75.

13. Kuhnt K, Degen C, Jahreis G. Evaluation of the Impact of Ruminant Trans Fatty Acids on Human Health: Important Aspects to Consider. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2016;56(12):1964-80.

14. Gebauer SK, Chardigny J-M, Jakobsen MU, Lamarche B, Lock AL, Proctor SD, et al. Effects of Ruminant trans Fatty Acids on Cardiovascular Disease and Cancer: A Comprehensive Review of Epidemiological, Clinical, and Mechanistic Studies. Advances in Nutrition: An International Review Journal. 2011;2(4):332-54. 15. Katan MB, Zock PL, Mensink RP. Trans Fatty Acids and Their Effects on Lipoproteins in Humans. Annual Review of Nutrition. 1995;15(1):473-93.

16. Kester ADM, Katan MB, Zock PL, Mensink RP. Effects of dietary fatty acids and carbohydrates on the ratio of serum total to HDL cholesterol and on serum lipids and apolipoproteins: a meta-analysis of 60 controlled trials. The American Journal of Clinical Nutrition. 2003;77(5):1146-55.

17. Mozaffarian D. Trans fatty acids – Effects on systemic inflammation and endothelial function. Atherosclerosis Supplements. 2006;7(2):29-32.

18. Micha R, Mozaffarian D. Trans fatty acids: effects on metabolic syndrome, heart disease and diabetes. Nature Reviews Endocrinology. 2009;5:335.

19. Mozaffarian D, Aro A, Willett WC. Health effects of trans-fatty acids: experimental and observational evidence. European Journal Of Clinical Nutrition. 2009;63:S5.

20. Gayet-Boyer C, Tenenhaus-Aziza F, Prunet C, Marmonier C, Malpuech- Brugère C, Lamarche B, et al. Is there a linear relationship between the dose of ruminant trans-fatty acids and cardiovascular risk markers in healthy subjects: results from a systematic review and meta-regression of randomised clinical trials. British Journal of Nutrition. 2014;112(12):1914-22.

21. Da Silva MS, Julien P, Pérusse L, Vohl M-C, Rudkowska I. Natural Rumen- Derived trans Fatty Acids Are Associated with Metabolic Markers of Cardiac Health. Lipids. 2015;50(9):873-82.

22. Marsanasco M, Piotrkowski B, Calabró V, del Valle Alonso S, Chiaramoni NS. Bioactive constituents in liposomes incorporated in orange juice as new functional food: thermal stability, rheological and organoleptic properties. Journal of Food Science and Technology. 2015;52(12):7828-38.

23. Sugasini D, Devaraj VC, Ramesh M, Lokesh BR. Lymphatic Transport of α- Linolenic Acid and Its Conversion to Long Chain n-3 Fatty Acids in Rats Fed Microemulsions of Linseed Oil. Lipids. 2014;49(3):225-33.

24. Sugasini D, Lokesh BR. Rats given linseed oil in microemulsion forms enriches the brain synaptic membrane with docosahexaenoic acid and enhances the neurotransmitter levels in the brain. Nutritional Neuroscience. 2015;18(2):87-96. 25. Sugasini D, Lokesh BR. Uptake of α-Linolenic Acid and Its Conversion to Long Chain Omega-3 Fatty Acids in Rats Fed Microemulsions of Linseed Oil. Lipids. 2012;47(12):1155-67.

26. Ratnayake WMN, Galli C. Fat and Fatty Acid Terminology, Methods of Analysis and Fat Digestion and Metabolism: A Background Review Paper. Annals of Nutrition and Metabolism. 2009;55(1-3):8-43.

27. Hall EB, Oken H, Arterburn LM. Distribution, interconversion, and dose response of n−3 fatty acids in humans. The American Journal of Clinical Nutrition. 2006;83(6):1467S-76S.

28. Salem N, Pawlosky R, Wegher B, Hibbeln J. In vivo conversion of linoleic acid to arachidonic acid in human adults. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. 1999;60(5):407-10.

29. Boeckaert C, Vlaeminck B, Fievez V, Maignien L, Dijkstra J, Boon N. Accumulation of <em>trans</em> C<sub>18:1</sub> Fatty Acids in the Rumen after Dietary Algal Supplementation Is Associated with Changes in the <em>Butyrivibrio</em> Community. Applied and Environmental Microbiology. 2008;74(22):6923.

30. Micha R, Khatibzadeh S, Shi P, Fahimi S, Lim S, Andrews KG, et al. Global, regional, and national consumption levels of dietary fats and oils in 1990 and 2010: a systematic analysis including 266 country-specific nutrition surveys. BMJ : British Medical Journal. 2014;348:g2272.

31. Craig-Schmidt MC. World-wide consumption of trans fatty acids. Atherosclerosis Supplements. 2006;7(2):1-4.

32. Hulshof K, van Erp-Baart MA, Anttolainen M, Becker W, Church SM, Couet C, et al. Intake of fatty acids in Western Europe with emphasis on trans fatty acids: The TRANSFAIR study. European Journal Of Clinical Nutrition. 1999;53:143. 33. Elias SL, Innis SM. Bakery foods are the major dietary source of trans-fatty acids among pregnant women with diets providing 30 percent energy from fat. Journal of the Academy of Nutrition and Dietetics. 2002;102(1):46-51.

34. Wolff RL, Precht D. A critique of 50-m CP-Sil 88 capillary columns used alone to assess trans-unsaturated FA in foods: The case of the TRANSFAIR study. Lipids. 2002;37(6):627-9.

35. Jakobsen MU, Bysted A, Andersen NL, Heitmann BL, Hartkopp HB, Leth T, et al. Intake of ruminant trans fatty acids in the Danish population aged 1–80 years. European Journal Of Clinical Nutrition. 2005;60:312.

36. Chardigny J-M, Malpuech-Brugère C, Dionisi F, Bauman DE, German B, Mensink RP, et al. Rationale and design of the TRANSFACT project phase I: A study to assess the effect of the two different dietary sources of trans fatty acids on cardiovascular risk factors in humans. Contemporary Clinical Trials. 2006;27(4):364- 73.

37. Poudyal H, Brown L. Should the pharmacological actions of dietary fatty acids in cardiometabolic disorders be classified based on biological or chemical function? Progress in Lipid Research. 2015;59:172-200.

38. Wanders AJ, Alssema M, de Koning EJP, le Cessie S, de Vries JH, Zock PL, et al. Fatty acid intake and its dietary sources in relation with markers of type 2 diabetes risk: The NEO study. Eur J Clin Nutr. 2017;71(2):245-51.

39. Straarup EM, Sejrsen K, Raff M, Nonboe P, Basu S, Tholstrup T. Effects of butter high in ruminant trans and monounsaturated fatty acids on lipoproteins, incorporation of fatty acids into lipid classes, plasma C-reactive protein, oxidative stress, hemostatic variables, and insulin in healthy young men. The American Journal of Clinical Nutrition. 2006;83(2):237-43.

40. Mozaffarian D, de Oliveira Otto MC, Lemaitre RN, Fretts AM, Hotamisligil G, Tsai MY, et al. trans-Palmitoleic acid, other dairy fat biomarkers, and incident diabetes: the Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis (MESA). The American Journal of Clinical Nutrition. 2013;97(4):854-61.

41. Mozaffarian D, Cao H, King IB, et al. Trans-palmitoleic acid, metabolic risk factors, and new-onset diabetes in u.s. adults: A cohort study. Annals of Internal Medicine. 2010;153(12):790-9.

42. Kratz M, Marcovina S, Nelson JE, Yeh MM, Kowdley KV, Callahan HS, et al. Dairy fat intake is associated with glucose tolerance, hepatic and systemic insulin sensitivity, and liver fat but not β-cell function in humans. The American Journal of Clinical Nutrition. 2014;99(6):1385-96.

43. Aronis KN, Khan SM, Mantzoros CS. Effects of trans fatty acids on glucose homeostasis: a meta-analysis of randomized, placebo-controlled clinical trials. The American Journal of Clinical Nutrition. 2012;96(5):1093-9.

44. Moloney F, Toomey S, Noone E, Nugent A, Allan B, Loscher CE, et al. Antidiabetic Effects of <em>cis</em>-9, <em>trans</em>-11–Conjugated Linoleic

Acid May Be Mediated via Anti-Inflammatory Effects in White Adipose Tissue. Diabetes. 2007;56(3):574-82.

45. Iwata NG, Pham M, Rizzo NO, Cheng AM, Maloney E, Kim F. Trans Fatty Acids Induce Vascular Inflammation and Reduce Vascular Nitric Oxide Production in Endothelial Cells. PLOS ONE. 2011;6(12):e29600.

46. Jaudszus A, Jahreis G, Schlörmann W, Fischer J, Kramer R, Degen C, et al. Vaccenic acid-mediated reduction in cytokine production is independent of c9,t11- CLA in human peripheral blood mononuclear cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology of Lipids. 2012;1821(10):1316-22.

47. Ridker PM, Danielson E, Fonseca FAH, Genest J, Gotto AM, Kastelein JJP, et al. Rosuvastatin to Prevent Vascular Events in Men and Women with Elevated C- Reactive Protein. New England Journal of Medicine. 2008;359(21):2195-207. 48. Pfeuffer M, Schrezenmeir J. Impact of trans fatty acids of ruminant origin compared with those from partially hydrogenated vegetable oils on CHD risk. International Dairy Journal. 2006;16(11):1383-8.

49. Han SN, Leka LS, Lichtenstein AH, Ausman LM, Schaefer EJ, Meydani SN. Effect of hydrogenated and saturated, relative to polyunsaturated, fat on immune and inflammatory responses of adults with moderate hypercholesterolemia. Journal of Lipid Research. 2002;43(3):445-52.

50. Rimm EB, Joshipura K, Rifai N, Hankinson SE, Pischon T, Willett WC, et al. Dietary intake of trans fatty acids and systemic inflammation in women. The American Journal of Clinical Nutrition. 2004;79(4):606-12.

51. Schulze MB, Lopez-Garcia E, Hu FB, Stampfer MJ, Willett WC, Manson JE, et al. Consumption of Trans Fatty Acids Is Related to Plasma Biomarkers of Inflammation and Endothelial Dysfunction. The Journal of Nutrition. 2005;135(3):562-6.

52. Dasu MR, Jialal I. Free fatty acids in the presence of high glucose amplify monocyte inflammation via Toll-like receptors. American journal of physiology Endocrinology and metabolism. 2011;300(1):E145-E54.

53. Guilherme A, Virbasius JV, Puri V, Czech MP. Adipocyte dysfunctions linking obesity to insulin resistance and type 2 diabetes. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2008;9:367.

54. Kunešová M, Hlavatý P, Tvrzická E, Staňková B, Kalousková P, Viguerie N, et al. Fatty acid composition of adipose tissue triglycerides after weight loss and weight maintenance: the DIOGENES study. Physiological research. 2012;61(6):597- 607.

55. Charest A, Motard-Bélanger A, Grenier G, Couture P, Paquin P, Lemieux S, et al. Study of the effect of trans fatty acids from ruminants on blood lipids and other risk factors for cardiovascular disease. The American Journal of Clinical Nutrition. 2008;87(3):593-9.

56. Charest A, Cyr A, Lacroix É, Baril-Gravel L, Chouinard PY, Couture P, et al. Randomized controlled study of the effect of a butter naturally enriched in trans fatty acids on blood lipids in healthy women. The American Journal of Clinical Nutrition. 2011;95(2):318-25.

57. Jacome-Sosa MM, Borthwick F, Mangat R, Uwiera R, Reaney MJ, Shen J, et al. Diets enriched in trans-11 vaccenic acid alleviate ectopic lipid accumulation in a

rat model of NAFLD and metabolic syndrome. The Journal of Nutritional Biochemistry. 2014;25(7):692-701.

58. Risérus U, Willett WC, Hu FB. Dietary fats and prevention of type 2 diabetes. Progress in Lipid Research. 2009;48(1):44-51.

59. Wang Y, Jacome‐Sosa MM, Ruth MR, Lu Y, Shen J, Reaney MJ, et al. The intestinal bioavailability of vaccenic acid and activation of peroxisome proliferator‐ activated receptor‐α and ‐γ in a rodent model of dyslipidemia and the metabolic syndrome. Molecular Nutrition & Food Research. 2012;56(8):1234-46.

60. Wang X, Gupta, J., Kerslake, M., Rayat, G., Proctor, S. D. and Chan, C. B. Trans-11 vaccenic acid improves insulin secretion in models of type 2 diabetes in vivo and in vitro. Mol Nutr Food Res. 2016 60: 846– 857(doi:10.1002/mnfr.201500783).

61. Li Y-L, Zhu L, Liu Z, Cheng R, Meng F, Cui J-H, et al. Reversibly Stabilized Multifunctional Dextran Nanoparticles Efficiently Deliver Doxorubicin into the Nuclei of Cancer Cells. Angewandte Chemie International Edition. 2009;48(52):9914-8. 62. Elsabahy M, Zhang M, Gan S-M, Waldron KC, Leroux J-C. Synthesis and enzymatic stability of PEGylated oligonucleotides duplexes and their self-assemblies with polyamidoamine dendrimers. Soft Matter. 2008;4:294-302.

63. Marano F, Guadagnini R. Les nanoparticules dans l’alimentation : quels risques pour le consommateur ? Cahiers de Nutrition et de Diététique. 2013;48(3):142-50.

64. Chaudhry H, Schleip R, Ji Z, Bukiet B, Maney M, Findley T. Three- Dimensional Mathematical Model for Deformation of Human Fasciae in Manual Therapy. The Journal of the American Osteopathic Association. 2008;108(8):379- 90.

65. Sozer N, Kokini JL. Nanotechnology and its applications in the food sector. Trends in Biotechnology. 2009;27(2):82-9.

66. Weiss J, Takhistov P, McClements DJ. Functional Materials in Food Nanotechnology. Journal of Food Science. 2006;71(9):R107-R16.

67. Schrooyen PMM, Meer Rvd, Kruif CGD. Microencapsulation: its application in nutrition. Proceedings of the Nutrition Society. 2001;60(4):475-9.

68. Zimet P, Livney YD. Beta-lactoglobulin and its nanocomplexes with pectin as vehicles for ω-3 polyunsaturated fatty acids. Food Hydrocolloids. 2009;23(4):1120- 6.

69. Tao J, Zhu Q, Qin F, Wang M, Chen J, Zheng Z-P. Preparation of steppogenin and ascorbic acid, vitamin E, butylated hydroxytoluene oil-in-water microemulsions:

Documents relatifs