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sh27a2 Jours A. U .

MDA-MB-231 Scr

MDA-MB-231 sh27A1

Croissance des cellules MDA-MB-231

Scr et sh27A in vitro

Scr sh27A1 Jours A. U .

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Figure 2.11 :Analyse des populations myéloïdes infiltrant les tumeurs et présentes dans les rates des souris portant une tumeur MDA-MB-231 Scr ou sh27A.

A. Comparaison de l’expression des marqueurs Ly6G et Ly6C par les cellules CD11b+ provenant de la rate d’une souris Balb/c sauvage (gauche) ou d’une souris Balb/c NOD SCID (droite). B. Exemples représentatifs des marquages CD11b, CD11c, Ly6G et Ly6C sur les cellules vivantes présentes dans les tumeurs MDA-MB-231 Scr et sh27A. C. Quantification des populations CD11b+ et CD11b+/Ly6G+ infiltrant les tumeurs à jour 33 (pourcentage parmi les cellules vivantes). D. Quantification des populations CD11b+ et CD11b+/Ly6G+ dans la rate de souris portant une tumeur (Scr et sh27A) ou de souris sans tumeur à jour 33 (pourcentage parmi les cellules vivantes). n=2 expériences indépendantes, avec 8 souris portant les tumeurs MDA-MB-231 Scr (Scr), 8 souris portant les tumeurs MDA-MB-231 sh27A (sh27A) et deux souris contrôles sans tumeur (ctle). La barre horizontale représente la médiane. Analyse statistique test t de student non paramétrique (Mann Whitney) pour les tumeurs et One-way ANOVA non paramétrique (Kruskall-Wallis), post test de Dunn pour les rates. * p<0,05.

B.

MDA-MB-231 Scr MDA-MB-231 sh27A

C.

D.

0 10 20 30 40 50 60 0 10 20 30 40 * 0 5 10 15 20 * 0 5 10 15 20 * TUMEURS CD11b+ CD11b+ Ly6G + CD11b+ CD11b+ Ly6G + % d e s ce llu le s vi va n te s % d e s ce llu le s vi va n te s

Scr sh27A Scr sh27A Scr sh27A ctle

RATES

*

*

*

Scr sh27A ctle

A.

Souris Balb/c sauvage Souris NOD SCID

0 100 1000 10000 1x105 CD11b 0 100 1000 10000 1x105 C D 1 1 c 18.2 5.59 0 100 1000 10000 1x105 Ly6C 0 100 1000 10000 1x105 L y 6 G 65.9 5.21 15.9 13 C D 1 1 c L y6 G 0 100 1000 10000 1x105 CD11b 0 100 1000 10000 1x105 C D 1 1 c 14.3 1.48 0 100 1000 10000 1x105 Ly6C 0 100 1000 10000 1x105 L y 6 G 3.46 77.2 14.9 4.45 C D 1 1 c L y6 G CD11b Ly6C CD11b Ly6C 0 100 1000 10000 1x105 CD11b 0 100 1000 10000 1x105 C D 1 1 c 12.1 0 100 1000 10000 1x105 Ly6C 0 100 1000 10000 1x105 L y 6 G 95.3 0.407 2.65 1.68 0 100 1000 10000 1x105 CD11b 0 100 1000 10000 1x105 C D 1 1 c 7.49 0 100 1000 10000 1x105 Ly6C 0 100 1000 10000 1x105 L y 6 G 83.7 0.863 8.68 6.74 C D 1 1 c C D 1 1 c L y6 G L y6 G CD11b Ly6C CD11b Ly6C

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Cytosol ARNs (miRNA, ARNm…) Appareil de Golgi Endosomes précoces Endosomes tardifs/ Corps multivésiculaires Milieu extracellulaire Autres compartiments intracellulaires

Exosomes portant les marqueurs endosomaux CD63, Tsg101, Alix, Hsc70 Microvésicules, microparticules, ectosomes

CD9, Mfge8

BLW0X$

Y$

ou Vésicules co- centrifugées avec les exosomes CD9, Mfge8

Figure 3.1 : Schématisation des voies de sécrétion des différentes populations de vésicules extracellulaires.

(1) Les cellules produisent des vésicules de taille très hétérogènes par bourgeonnement au niveau de la membrane plasmique : les microvésicules, les microparticules et les ectosomes. (2) D’autre part, les cellules sécrètent des exosomes, vésicules classiquement purifiées par des ultracentrifugations successives se terminant par une centrifugation à 100.000xg. Nous avons montré qu’une partie des vésicules ainsi purifiées semblait bien correspondre à des exosomes : leur sécrétion est dépendante de Rab27a (indiquant fortement une origine endosomale) et elles portent des marqueurs d’endosomes. (3) Une autre partie de ces vésicules est cependant produite de façon indépendante de Rab27a et elles portent les marqueurs Mfge8 et CD9 mais pas les marqueurs endosomaux. Nous ne savons pas si ces vésicules se forment dans des compartiments intracellulaires ou au niveau de la membrane plasmique.

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Figure 3.2 : Hypothèse sur les mécanismes moléculaires impliquant Rab27a dans la voie de sécrétion des exosomes.

Les corps multivésiculaires sont transportés dans le cytoplasme vers la périphérie cellulaire le long des microtubules par des moteurs moléculaires comme les kinésines. Rab27a pourrait participer au transfert des MVBs vers le cytosquelette d’actine sous-cortical, rôle joué par Rab27b dans les cellules HeLa. Rab27a recruterait pour cela un effecteur capable d’interagir avec la myosine, moteur moléculaire présent sur les microfilaments d’actine. Les MVBs atteignent ainsi la membrane plasmique sur laquelle ils vont s’ancrer avant de fusionner. Rab27a pourrait à ce niveau-là participer à l’ancrage en recrutant un autre effecteur capable d’interagir directement avec la bicouche lipidique (PS) ou avec des protéines associées à celle-ci (syntaxines, SNAP). Après cette étape d’ancrage suit l’étape de fusion, libérant les ILVs dans le milieu extracellulaire. D’autre part, comme il avait été proposé dans les cellules HeLa, Rab27a pourrait empêcher la fusion des MVBs entre eux ou avec d’autres compartiments intracellulaires, leur permettant de fusionner avec la membrane plasmique.

Microtubule Corps multivésiculaire kinésine GTP Groupements géranylgéranyl Rab27a Vésicule intraluminale Microfilament d’actine Effecteur de Rab27a Transfert des MVBs des microtubules sur l’actine Ancrage des MVBs à la membrane plasmique Inhibition de la fusion avec d’autres compartiments Myosine V Effecteur de Rab27a

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Figure 3.3 : Hypothèses sur les mécanismes moléculaires impliquant Rab27a dans la voie de sécrétion des facteurs solubles.

Nos résultats indiquent que Rab27a contrôlerait négativement la voie de sécrétion des chimiokines. Notre hypothèse est que Rab27a inhiberait l’exocytose de façon constitutive des compartiments contenant ces chimiokines. Cet effet inhibiteur serait levé dès la réception d’un stimulus, permettant l’exocytose de façon régulée. Rab27a pourrait être ainsi impliquée à deux niveaux de la voie de sécrétion : A. au niveau de l’ancrage à la membrane plasmique ou B. au niveau de l’ancrage aux microfilaments d’actine. C’est en stabilisant l’ancrage à l’un ou l’autre de ces niveaux que Rab27a empêcherait toute sécrétion en l’absence d’un stimulus.

G-CSF KC MIP3% MCP-1 Fusion G-CSF KC MIP3% MCP-1 Stimulus Fusion

A.

B.

Myosine V Microfilament d’actine G-CSF KC MIP3% MC P-1 Fusion G-CSF KC MIP3% MCP-1 Stimulus Fusion Compartiment intracellulaire contenant des chimiokines Rab27a-GTP Rab-GTP Effecteur de Rab27a Effecteur de Rab

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