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Réplication de l’ADN

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Academic year: 2022

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Texte intégral

(1)

124

Réplication de l ’ ADN

Mega: 106 Giga: 109 Tera: 1012 Peta: 1015

Exa: 1018 2 bytes/nt => 1018/gramme 1 000 000 000 Gigabytes

125

ADN ARN

Transcription Réplication

ADN

Protéines

Traduction Les grandes étapes de la biologie moléculaire

124

ADN

Réplication

ADN

Les grandes étapes de la biologie moléculaire

La réplication du génome doit se faire:

Complètement: tout le matériel chromosomique doit être transmis

Fidèlement: aucune erreur ne doit être faite (risque de mutation)

Précisément: lors de chaque division cellulaire

ADN

i

+ dNTP ADN

i+1

+ PP

i

i

127

128

Mode de réplication universel de la bactérie aux mammifères

129

Réplication

Les grandes étapes de la biologie moléculaire

(2)

130

Les grandes étapes de la biologie moléculaire

Expérience historique de Meselson et Stahl (1958).

131

Les grandes étapes de la biologie moléculaire

Expérience historique de Meselson et Stahl (1958).

Concentration croissante en chlorure

de césium (CsCl)

1,70<d<1,75 d=1,724

Après centrifugation à l’équilibre

132

Les grandes étapes de la biologie moléculaire

Expérience historique de Meselson et Stahl (1958).

3ème réplication

Dans l’azote léger

(14N)

NB: L’épaisseur des bandes d’ADN est proportionnelle à la quantité présente 100%

50%

50%

133

134

La copie d ’ un brin se fait en se servant d’un brin

comme modèle.

L ’ enzyme place sur le nouveau brin une base complémentaire à la base

présente sur le modèle

Le brin néoformé est 100% complémentaire

du brin initial

135

ATGCCTTATAGGC TACGGAATATCCG

TACGGAATATCCG

ATG

(3)

136

ATGCCTTATAGGC TACGGAATATCCG

TACGGAATATCCG ATGCCTTATAGGC

Molécules absolument identiques

137

ADN

Le support génétique

138

138

Mécanisme moléculaire de la réplication

5’ 3’

5’ 3’ Cellule mère 3’

5’

5’

3’

5’ 3’

5’ 3’

Cellule fille Cellule fille

Cellule mère

Cellule fille Cellule fille

139

140

Mécanisme moléculaire de la réplication Fourche de réplication

Forme theta

141

En 1956, Arthur Kornberg purifie l'ADN polymérase I et démontre que celle-ci ne peut polymériser de l

ADN que dans une seule direction

5’-> 3’

Mécanisme moléculaire de la réplication

3’

5’

3’

5’

ADN 3’

5’

5’

3’

Non

3’

5’

5’

3’

3’

5’

5’

3’

3’ 5’

Non

Oui

Non

que si présence d’une extrémité 3‘ et d’un brin modèle…

Réplication

+dNTPs +ADNpol-I

5’

3’ 5’

3’

(4)

142 O

O

OH

O O

O

P O O

O O

O-

O

O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3’

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O O- O

Nucleotide triphosphate

143

O O

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3’

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O

O- OH O

:

144 O O

OH

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O

P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3 ’

Radiomarquage d’un ADN

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O O- O

Nucleotide triphosphate

*

α32P-NTP

145

146

O-

3 ’

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O

O- OH O

:

O O

O O

O

P O O

O O

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O

P O

-O

5 ’

5 ’ 3 ’

Radiomarquage d’un ADN

*

α32P-NTP

147 O O

OH

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3 ’

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O O- O

Nucleotide triphosphate

*

Radiomarquage d’un ADN

γ32P-NTP

(5)

148

Structure de l’AZT et du 3TC

O

O HN

N

Thymidine

OH

O CH3

OH

O

O HN

N

AZT

OH

O CH3

N3

NH

O N

N

3TC

OH

O

S 2

149 O

O

OH

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3’

O O

N3

P O

O-

P O

O-

P O

O-

O O- O

Nucleotide triphosphate

150 O O

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O

P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3 ’

O P O O

O-

P O

O-

P O

O-

O

O- OH O

:

N3

151

152 O O

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O

P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3 ’

O P O

O-

O O

P O

O-

P O

O-

O

O-

O- N3

Nucleotide triphosphate

153

ADN pol 3’

5’

3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

déplacement

(6)

154

Réplication de l ’ ADN

Expérience d’Okazaki Cellules en cours de division

Marquage radioactif (dNTP-α32P) sur une courte période Analyse de la taille des ADN produits

ADN longs

Mutant ligase sauvage

ADN courts

ADN courts

155 ADN pol

3’

5’

3’

5’

5’

5’ 3’

3’

Réplication de l ’ ADN

déplacement

156 3’

5’

3’

5’

5’

5’ 3’

3’

Réplication de l ’ ADN

ADN pol déplacement

5’

primase

Amorce (primer) ARN (10-12nts) 3’

157

158 3’

5’

3’

5’

5’

5’ 3’

3’

Réplication de l ’ ADN

ADN pol déplacement

5’

primase

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

3’

159 3’

5’

5’

Réplication de l ’ ADN

ADN pol déplacement

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

primase 5’ 3’

3’

5’

(7)

160 3’

5’

5’

Réplication de l ’ ADN

ADN pol déplacement

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

ADN pol

déplacement

Fragments d’Okazaki 5’ 3’

3’

5’

3’ 5

X

161 3’

5’

5’

Réplication de l ’ ADN

ADN pol déplacement

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

Fragments d’Okazaki 5’ 3’

3’

5’

3’ 5

X

ADN pol ADN pol

162 3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

déplacement

primase ADN pol

ADN pol

163

164 3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

ADN pol déplacement

primase ADN pol

ADN pol

165 3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

ADN pol déplacement

ADN pol ADN pol

3’

(8)

166 3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

déplacement

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

3’ 5’ déplacement

ADN pol ADN pol

167

Réplication de l ’ ADN

168 3’

5’

5’

3’

5’

3’

Réplication de l ’ ADN

déplacement

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

Fragments d’Okazaki

déplacement

Avancée de la fourche de réplication

primase 3’ 5’ ADN pol ADN

pol

ADN pol ADN polIII ADN ADN polI pol ADN pol

ligaseligase 3’

5’

3

’ 5

5’

ligase

169

170

Réplication de l ’ ADN

3’

5’

5’

3’

5’

3’

5’

Amorces (primers) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

Fragments d’Okazaki

déplacement

Avancée de la fourche de réplication

primase ADN pol ADN

pol 3’

ADN pol ADN polIII ADN ADN polI pol ADN pol ligase

ligaseligase 3’

5’

3

’ 5 5’ ’

171

Réplication de l ’ ADN

5’

3’

3’

5’

5’

3’

3’

5’

5’

3’

3’

5’

Activité exonucléase 5’-> 3’ de l’ADN polI:

élimination des amorces ARN

(9)

172

Réplication de l ’ ADN

3’

5’

5’

3’

déplacement

Brin avancé (leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

5’3’

ADN pol

Avancée de la fourche de réplication

ADN pol

ADN pol ADN polIII ADN ADN polI

pol ligaseligase

Duplication parfaite

173 O

O

OH

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3’

O O

OH P O

O-

P O

O-

P O

O-

O O- O

Nucleotide triphosphate

mésappariement

174

Réplication de l ’ ADN

Activité de correction: activité exonucléase : 3’-> 5’

Appariement TA

Appariement CG

Mésappariement GA

Mésappariement CA

Mésappariement TG Mésappariement induit une déviation de l’axe de l’ADN

Pur/Pyr Pyr/Pur

>>>

Pur/Pur Pyr/Pyr

175

176

Réplication de l ’ ADN

Activité de correction: activité exonucléase : 3’-> 5’

Mésappariement induit une déviation de l’axe de l’ADN

Pur/Pyr Pur/Pur

Pyr/Pur >>> Pyr/Pyr

177

Réplication de l ’ ADN

Activité de correction: activité exonucléase : 3’-> 5’

Mésappariement induit une déviation de l’axe de l’ADN

Pur/Pyr Pur/Pur

Pyr/Pur >>> Pyr/Pyr

(10)

178

Réplication de l ’ ADN

Activité de correction: activité exonucléase : 3’->

5’

Correction:

activité exonucléase 3’-> 5’

Réplication:

activité polymérase 5’-> 3’ 5’ 3’

3’ 5’

5’ 3’

3’ 5’

5’ 3’

3’ 5’

179 O

O

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5’

3 ’

5 ’ 3’

O O

OH P

O-

O O

180

Réplication de l ’ ADN

3’

5’

5’

3’

5’

3’

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

Fragments d’Okazaki

déplacement

Avancée de la fourche de réplication

primase 3’ 5’ ADN pol ADN

pol

ADN pol ADN polIII ADN ADN polI pol ADN pol ligase

ligaseligase 3’

5’

3

’ 5

’ Structuration

hélicoïdale de l’ADN

181

182

Réplication de l ’ ADN

183

(11)

184

Réplication de l ’ ADN

Mécanisme d ’ action de la topoisomérase de type I

Clivage d’une liaison phosphodiester (hydrolyse)

185 O

O

O O

O

P O O

O O

O-

O O P O

-O

O O O P O

-O

O O O P O

-O

5 ’

3 ’

5 ’ 3’

O O

OH P

O-

O O

HO H

186 187

188

Réplication de l ’ ADN

Mécanisme d ’ action de la topoisomérase de type I

Topoisomérase de type II coupe les deux brins simultanément

(Formes relaxée/hyperenroulée de l’ADN plasmidique)

189

Réplication de l ’ ADN

Mécanisme d ’ action de la topoisomérase de type II

Segment G et T = ADN Double brin

(12)

190

Réplication de l ’ ADN

Mécanisme d ’ action de la topoisomérase de type II

Doxorubicine

Cible biologique de la doxorubicine (agent anticancéreux)

(etoposides et mitoxantrone) 191

Réplication de l ’ ADN

202

192

Réplication de l ’ ADN

ATP => ADP + Pi

Hélicase

203 193

Réplication de l ’ ADN

ATP => ADP + Pi

Hélicase

Hélicase sur le brin retardé et à « contre-sens » de la primase

From NE. Dixon, 2009

Nature 462, 854-855. 204

5’

3’

194 195

Réplication de l ’ ADN

ADN

Single strand binding

(SSB)

proteins 205

(13)

196

Réplication de l ’ ADN

3’

5’

5’

3’

5’

3’

5’

Amorce (primer) ARN (10-12nts) Brin avancé

(leader strand)

Brin retardé (lagging strand)

Fragments d’Okazaki

déplacement

Avancée de la fourche de réplication

primase 5’ ADN pol ADN

3’ pol

ADN pol ADN polIII ADN ADN polI pol ADN pol ligase

ligaseligase 3’

5’

3

’ 5

’ Topoisomerase

(DNA gyrase)

hélicase (+ATP) SSB

197

Réplication de l ’ ADN

From Biochemistry by Mathews, van Holde, and Ahern.

*Polymerase type II impliquée dans la réparation

*

(ε subunit)

198

Réplication de l ’ ADN

ADN polymérase III ADN polymérase I

Activité exonucléase 3’ -> 5’

199

200

Réplication de l ’ ADN

Protéines impliquées dans la réplication chez E-coli

Protéines Fonction Taille

(kDa) Nb de molécules

par cellules

Gyrase relaxe l’ADN double hélice 400 250

(topo-isomérase) DnaB (Hélicase) dissocie la double hélice 300 20

SSB proteins stabilise les régions monocaténaires 74 300

Primase synthétise les amorces ARN 60 50

ADN Pol III synthétise l’ADN 800 20

ADN Pol I élimine l’amorce ARN et les remplace 103 300

DNA ligase soude les extrémités ADN 74 300

ADN polIII = complexe multiprotéique

201

Réplication de l ’ ADN

Sous-unité α ADN polymérase 5’->3’ (x2) Sous-unité ε Exonucléase 3’->5’ (x2) Sous-unité θ stimule exonucléase ε (x2) Sous-unité τ dimérisation des unités α

core

Sous-unité γ fixe de l’ATP (pour pince β) Sous-unité δ fixe β

Sous-unité δ' fixe α et δ Sous-unité χ fixe SSB protéines

Sous-unité β pince β Complexeγ

γ

ADN polIII ADN polIII* PolIII HOLOENZYME Processivité 10 60 200 10000

(14)

202

Réplication de l ’ ADN

primase

γ

3’ 5’

5’

3’ 5’

3’ 5’

5’

Amorce ARN Fragment

d’OKAZAKI 3’

3’

203

Réplication de l ’ ADN

ADN Polymerase III (core enzyme)

Pince Beta

Pince Beta

204

Réplication de l ’ ADN

γ

3’5’

5’

3’ 5’

3’

5’

Amorce ARN Fragment

d’OKAZAKI 3’

3’

205

Réplication de l ’ ADN

γ

3’5’

5’

3’ 5’

3’

3’

3’

206

Réplication de l ’ ADN

Nouveau cycle de réplication

γ

207

Réplication de l ’ ADN

5’ 3’

5’ 3’

Fragment d’Okazaki antérieur

polIII

Pince β

5’ 3’

5’ 3’

polIII

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