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Mécanismes de résistances à l’imipénèmes des souches de Pseudomonas aeruginosa et d’Acinetobacter baumanii : Imperméabilité ou Métallo-β-Lactamases

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Academic year: 2021

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Texte intégral

(1)

FACULTE DE MEDECINE ET DE PHARMACIE – RABAT

ANNEE : 2009 THESE N° 78

Mécanismes de résistances à l’imipénèmes des souches de

Pseudomonas aeruginosa et d’Acinetobacter baumanii :

Imperméabilité ou Métallo-β-Lactamases

THESE

Présentée et soutenue publiquement le :.../.../...

PAR

Mlle. MOKET Kadja-Badou Danièle

Née le 16 Décembre 1985 à Abidjan (Côte d’Ivoire)

Pour l’Obtention du Doctorat d’Etat en Pharmacie

Mots Clés : Acinetobacter baumanii – imipénème – imperméabilité – Métallo-β-lactamases –

Pseudomonas aeruginosa

JURY

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Novembre 1983

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187. Pr. LAZRAK Khalid (M) Traumatologie Orthopédie 188. Pr. OUTIFA Mohamed* Gynécologie Obstétrique Décembre 1996

189. Pr. AMIL Touriya* Radiologie

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193. Pr. EL ALAMI EL FARICHA EL Hassan Chirurgie Générale 194. Pr. EL MELLOUKI Ouafae* Parasitologie

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201. Pr. OUADGHIRI Mohamed Traumatologie – Orthopédie 202. Pr. OUZEDDOUN Naima Néphrologie

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204. Pr. ALAMI Mohamed Hassan Gynécologie – Obstétrique 205. Pr. BEN AMAR Abdesselem Chirurgie Générale 206. Pr. BEN SLIMANE Lounis Urologie

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220. Pr. NAZZI M’barek* Cardiologie 221. Pr. OUAHABI Hamid* Neurologie

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227. Pr. LABRAIMI Ahmed* Anatomie Pathologique Novembre 1998

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232. Pr. LAHLOU Abdou Traumatologie Orthopédie 233. Pr. MAFTAH Mohamed* Neurochirurgie

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236. Pr. MANSOURI Abdelaziz* Neurochirurgie

237. Pr. NASSIH Mohamed* Stomatologie Et Chirurgie Maxillo Faciale 238. Pr. RIMANI Mouna Anatomie Pathologique

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313. Pr. LEKEHAL Brahim Chirurgie Vasculaire Périphérique 314. Pr. MAHASSIN Fattouma* Médecine Interne

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333. Pr. BENZEKRI Laila Dermatologie

334. Pr. BENZZOUBEIR Nadia* Gastro – Enterologie 335. Pr. BERADY Samy* Médecine Interne 336. Pr. BERNOUSSI Zakiya Anatomie Pathologique 337. Pr. BICHRA Mohamed Zakarya Psychiatrie

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354. Pr. MABROUK Hfid* Traumatologie Orthopédie 355. Pr. MOUSSAOUI RAHALI Driss* Gynécologie Obstétrique 356. Pr. MOUSTAGHFIR Abdelhamid* Cardiologie

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413. Pr. HESSISSEN Leila Pédiatrie 414. Pr. JIDAL Mohamed* Radiologie 415. Pr. KARIM Abdelouahed Ophtalmologie 416. Pr. KENDOUSSI Mohamed* Cardiologie

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420. Pr. RAGALA Abdelhak Gynécologie Obstétrique 421. Pr. REGRAGUI Asmaa Anatomie Pathologique

422. Pr. SBIHI Souad Histo Embryologie Cytogénétique 423. Pr. TNACHERI OUAZZANI Btissam Ophtalmologie

424. Pr. ZERAIDI Najia Gynécologie Obstétrique Avril 2006

425. Pr. ACHEMLAL Lahsen* Rhumatologie 426. Pr. AFIFI Yasser Dermatologie 427. Pr. AKJOUJ Said* Radiologie 428. Pr. BELGNAOUI Fatima Zahra Dermatologie 429. Pr. BELMEKKI Abdelkader* Hematologie 430. Pr. BENCHEIKH Razika O.R.L 431. Pr. BIYI Abdelhamid* Biophysique

432. Pr. BOUHAFS Mohamed El Amine Chirurgie – Pédiatrique 433. Pr. BOULAHYA Abdellatif* Chirurgie Cardio-Vasculaire 434. Pr. CHEIKHAOUI Younes Chirurgie Cardio-Vasculaire 435. Pr. CHENGUETI ANSARI Anas Gynécologie Obstétrique 436. Pr. DOGHMI Nawal Cardiologie

437. Pr. ESSAMRI Wafaa Gastro-Entérologie 438. Pr. FELLAT Ibtissam Cardiologie

(12)

444. Pr. JROUNDI Laila Radiologie 445. Pr. KARMOUNI Tariq Urologie

446. Pr. KILI Amina Pédiatrie

447. Pr. KISRA Hassan Psychiatrie

448. Pr. KISRA Mounir Chirurgie – Pédiatrique 449. Pr. KHARCHAFI Aziz* Médecine Interne 450. Pr. LMIMOUNI Badreddine* Parasitologie 451. Pr. MANSOURI Hamid* Radiothérapie

452. Pr. NAZIH Naoual O.R.L

453. Pr; OUANASS Abderrazzak Psychiatrie 454. Pr. SAFI Soumaya* Endocrinologie 455. Pr. SEKKAT Fatima Zahra Psychiatrie

456. Pr. SEFIANI Sana Anatomie Pathologique 457. Pr. SOUALHI Mouna Pneumo-Phtisiologie 458. Pr. ZAHRAOUI Rachida Pneumo-Phtisiologie ENSEIGNANTS SCIENTIFIQUES

PROFESSEURS

1. Pr. ALAMI OUHABI Naima Biochimie 2. Pr. ALAOUI KATIM Pharmacologie

3. Pr. ALAOUI SLIMANI Lalla Naïma Histologie – Embryologie

4. Pr. ANSAR M'hammed Chimie Organique et Pharmacie Chimique 5. Pr. BOUKLOUZE Abdelaziz Applications Pharmaceutiques

6. Pr. BOURJOUANE Mohamed Microbiologie 7. Pr. DRAOUI Mustapha Chimie Analytique 8. Pr. EL GUESSABI Lahcen Pharmacognosie 9. Pr. ETTAIB Abdelkader Zootechnie 10. Pr. FAOUZI Moulay El Abbes Pharmacologie 11. Pr. HMAMOUCHI Mohamed Chimie Organique 12. Pr. REDHA Ahlam Biochimie

13. Pr. TELLAL Saida* Biochimie 14. Pr. TOUATI Driss Pharmacognosie 15. Pr. ZELLOU Amina Chimie Organique * Enseignants Militaires

(13)
(14)

A notre maître et président de thèse

Monsieur M. ZOUHDI

Professeur de Microbiologie à la Faculté de Médecine et de Pharmacie

et

Chef du service de Microbiologie au CHU IBN SINA

Nous sommes très sensibles à l’honneur que vous nous faites en

acceptant la présidence de mon jury de thèse.

Vous nous avez accueillis avec beaucoup de gentillesse et d’égard.

Votre compétence, vos qualités humaines et surtout la clarté et la

simplicité de votre enseignement ont suscité en nous une profonde

admiration.

Veuillez accepter, cher maître, l’assurance de mon estime et de mon

profond respect.

(15)

A notre maître et directrice de thèse

Madame le médecin-Colonel

Sakina AMARA EL HAMZAOUI

Professeur Agrégé en Microbiologie

Chef du service de Microbiologie de l’H.M.I.M.V de Rabat

Je vous suis infiniment reconnaissante pour

Votre investissement dans ce travail et Pour la confiance que

Vous m’avez témoigné en me donnant ce sujet de thèse.

Votre amabilité, votre sérieux, votre compétence, votre pragmatisme et

surtout vos qualités humaines m’ont beaucoup marquée.

Vous m’avez toujours réservé un bon accueil

Malgré vos obligations professionnelles.

Je suis très heureuse de pouvoir exprimer ma profonde gratitude pour

tous les efforts que vous avez déployés et l’oreille attentive que vous

m’avez accordés afin que ce travail puisse aboutir.

Pour tous ce que vous m’avez enseignés avec amour, patiente et passion,

Veuillez recevoir, cher maître, l’expression de ma profonde

considération.

(16)

A notre Maître et membre du jury

Monsieur le médecin-Colonel

Dr SAFI L.

Professeur d’Anesthésie et Réanimation

Chef du service de Réanimation Chirurgicale de l’HMIMV-Rabat

C’est pour nous un honneur de vous avoir dans notre jury.

Merci pour la simplicité que vous avez témoigné en acceptant de siéger

parmi notre jury de thèse

Permettez nous de vous remercier et à vous exprimer notre respect.

(17)

A notre Maître et membre du jury

Monsieur le médecin-Colonel

Dr BAITE A.

Professeur agrégé au C.H.U.

Service de Réanimation chirurgicale de l’H.M.I.M.V de Rabat

Nous sommes infiniment sensibles à l’honneur que vous nous faites en

acceptant de siéger parmi les membres de jury de cette thèse.

Permettez-nous de vous témoigner toute notre admiration

Pour votre accueil sympathique.

Nous vous prions d’accepter l’expression de notre respect et notre

sincère reconnaissance.

(18)

A notre maître et juge

Monsieur le Médecin Lieutenant-Colonel

M. DOGHMI K.

Professeur agrégé en Hématologie-Clinique

Service d’Hématologie-Clinique de l’H.M.IM.V de Rabat

Vous avez accepté avec gentillesse de juger notre travail et c’est pour

nous un honneur de vous avoir dans notre jury.

Veuillez recevoir l’expression de ma reconnaissance et de mon respect.

(19)

A toute l’équipe du laboratoire de microbiologie et

Les résidents en biologie.

Je vous suis infiniment reconnaissante pour la bonne ambiance et de

m’avoir facilité la tâche dans ce travail.

Veuillez agréer mon profond respect et ma sincère reconnaissance pour

vos enseignements et l’amitié que vous m’avez offerts.

(20)

A

Noelle, Carole, Laetitia, Machelle,

Raoul, Gildas, Marie-Christelle ainsi que tous ceux et celles qui m’ont

m’aidé à la concrétisation de ce travail

Un grand merci pour m’avoir aidé à finaliser ce travail

Puisse Dieu vous le rendre autant et vous bénisse !!!

(21)
(22)

A mon père

MOKET Assohoun Maurice

Aucune dédicace ne saurait exprimer l’estime,

Le respect et l’amour que je te porte.

Tu t’es investi à me transmettre le sens de la responsabilité,

De la persévérance et de la droiture.

Tu nous as inculqué le sens du sacrifice afin de construire

Notre réussite.

Que ce travail soit le gage de ma reconnaissance et de ma gratitude.

Que Dieu le tout puissant puisse te bénir, t’accorder une longue vie

(23)

A ma mère

MOKET Abran Germaine

Aucun mot, aussi expressif qu’il soit ne saurait remercier à sa juste valeur,

L’être qui a consacré sa vie à parfaire notre éducation avec

Un dévouement inégal associé à beaucoup de sacrifice.

Ton calme, ta patiente et ton humilité dont j’ai hérité ont été pour moi

Le phare pour l’aboutissement de ce travail.

Aussi puisse t-il être la concrétisation de tes efforts inlassables.

Puisse Dieu m’aider pour rendre un peu soit-il

De ce que tu m’as donné !

Puisse Dieu te garder longtemps auprès de nous

Et te bénir infiniment !

(24)

A mes frères

MOKET Ernest et MOKET Jean-Robert

Cadet comme benjamin, vous avez été pleins de patience

Et de dévouement envers moi.

Les mots ne sauraient exprimer l’étendu de mon affection et de ma gratitude.

Je vous dédie ce travail et vous exhorte au resserrement des liens de la famille

dans l’amour, le respect, l’humilité et le courage.

(25)

A mon oncle

MOCKEY Essan, son épouse OUATTARA Mariam,

Et leurs enfants Laetitia, Ivan et Marc-Aurel

Ce travail est le vôtre.

Merci pour votre soutien et votre confiance en moi.

Votre présence a toujours été un réel réconfort et a suscité beaucoup d’espoir

pour moi.

Que Dieu vous bénisse et vous accorde la santé,

La prospérité et une vie heureuse !

(26)

A Mr et Mme OLLOKO et leurs enfants

Je vous remercie du fond du cœur et vous dédie ce travail.

Pour votre Affection, vos prières et votre soutien,

Je vous en suis reconnaissante.

Puisse la Sainte Vierge Marie intercéder auprès de notre Seigneur

Pour la longévité, la prospérité, et le succès

(27)

A mon Oncle

Tonton Casimir, Son épouse Jeannette, et leurs enfants Je ne saurais vous remercier pour tout le soutien que

Vous m’avez accordé,

Vous avez toujours été présent pour moi. Puisse Dieu vous accorder santé et prospérité !

A mon ONCLE

TANOH Franck considère, Son épouse et leurs filles Je souhaiterais vous remercier et vous dédier ce travail. Peu importe la distance, je vous garde au fond de mon cœur.

Voyez dans ce travail, le témoignage de ma reconnaissance. Puisse Dieu vous garder toujours auprès de moi

(28)

Du Début à la fin vous avez été présent. Vous m’avez accueillie avec sincérité,

Et j’ai eu le privilège de trouver une deuxième famille à vos côtés

Voici le reflet de l’amitié, de la bonne entente, et

De l’aboutissement de tous vos efforts pour faire de moi ce que je suis.

Ce travail vous ait dédié avec toute ma reconnaissance

Et mon amitié sincère.

Que le Tout Puissant, notre Dieu, vous comblez de joie,

De longévité, de santé, et vous accordez le succès

(29)

A mes amis et confrères

Aicha O, Meliké, Judicaël, Magalie M

Votre présence, vos conseils et votre Amitié m’ont été d’une grande aide.

En reconnaissance de votre soutien incontestable et de votre encouragement,

Je vous dédie ce travail.

Dieu vous bénisse et vous garde !

(30)

Vos conseils, vos encadrements et vos prières ont été pour moi Un stimulant tout au long de mes études.

Merci pour l’appui durant ces belles années au Maroc. Que Dieu guide chacun de vos pas et

Vous accorde paix, santé, et succès Dans tous vos actes !!!

A mes amis (es), confrères et promotinnaires :

Kabhily, Rachèle, Lydie, Perle, Demba Paul, Lionel, Eudes, Hermane, Max, Sidoine, Servilien, Fils-Merveilles, Aichatou.

Merci de m’avoir soutenu pendant ces belles années. Nous avons été une promotion efficace et où que nous allions,

Nous resterons unis pour la vie.

Mon travail n’est que le reflet de la bonne ambiance qui a toujours régné entre nous. Que Dieu guide chacun de vos pas et vous donne la force d’exercer vos professions

(31)

Gaicha, Masso, Winnie, Laetitia, Noelle, Carole Carl, Teny, Corinne, Christelle, Christiane, Fidelia, Mantary.

Que ce travail soit le témoignage de ma considération En reconnaissance de votre soutien et de votre encouragement!

Que ce travail soit un exemple pour la suite de votre cursus Dieu vous guide sur ce long chemin!

A tous ceux qui n’ont pu être nommés par oubli,

Je puis vous garantir infinie reconnaissance.

(32)

A notre Seigneur Dieu tout puissant

Notre Créateur et le Miséricordieux

Ces mots ne seront jamais suffisants pour Te témoigner ma

gratitude.

Je Te rends grâce et Te demande de nous guider vers la

bonne voie et de nous aider à parfaire notre adoration.

(33)
(34)

~ 1 ~ Sommaire I INNTTRROODDUUCCTTIIOONN ... 4 1 HISTORIQUE ... 7 2 PARTIE THEORIQUE ... 10 2.1 Bactériologie et physiopathologie ... 10 2.1.1 Habitat et épidémiologie ... 10 2.1.2 Caractères bactériologiques et biochimiques ... 11 2.1.3 Physiopathologie ... 13 2.2 Carbapénèmes... 17 2.2.1 Définition et structure de base ... 17 2.2.2 Mécanisme d’action et Relation structure activité ... 18 2.2.3 Spectre d’action ... 20 2.3 Mécanismes de résistance aux Carbapénèmes ... 22 2.3.1 Resistances naturelles ... 22 2.3.2 Le système d’efflux actifs ... 22 2.3.3 Les porines ... 25 2.3.4 Les Carbapénémases ... 26

3 MATERIELS ET METHODES ... 32

3.1 Type d’étude, date et lieu ... 32 3.2 Souches inclues et exclues ... 32 3.3 Techniques ... 33 3.3.1 Prélèvements ... 33 3.3.2 Analyses et isolement des germes ... 33 3.3.3 Description de la recherche des souches résistantes à l’Imipenème ... 39

(35)

~ 2 ~

3.3.4 Exploitation des données ... 41

4 RESULTATS ... 44

4.1 Prévalence des souches isolées... 44 4.2 Répartition des souches isolées selon les services hospitaliers ... 45 4.3 Répartition des souches selon les types de prélèvements ... 47 4.4 Fréquence des âges en fonction du sexe ... 49 4.5 Prévalence des souches résistantes à l’Imipenème ... 51 4.6 Répartition des souches résistantes à l’Imipenème selon les services ... 53 4.7 Répartition des souches résistantes à l’Imipenème selon les types de

prélèvements ... 56 4.8 Recherche de la production de Métallo-β-lactamases ... 59 4.9 Répartition des souches productrices de MBL selon les services hospitaliers et les types de prélèvements ... 62 4.9.1 Selon les services ... 62 4.9.2 Selon les types de prélèvements ... 65 4.10 Typage des souches de Pseudomonas aeruginosa ... 67 4.11 Comportement des autres antibiotiques vis-à-vis des souches résistantes à l’Imipenème ... 70

4.11.1 Profil de résistance aux antibiotiques chez A. baumanii résistant à l’Imipenème ... 72 4.11.2 Profil de résistance aux antibiotiques chez P. aeruginosa résistant à l’Imipenème ... 73 5 DISCUSSION ... 75 C COONNCCLLUUSSIIOONN ... 86 A ANNNNEEXXEESS ... 89 R REEFFEERREENNCCEESSBBIIBBLLIIOOGGRRAAPPHHIIQQUUEESS ... 93

(36)

~ 3 ~

(37)

~ 4 ~

I

I

N

N

T

T

R

R

O

O

D

D

U

U

C

C

T

T

I

I

O

O

N

N

L’usage des antibiotiques a augmenté l’espérance de vie moyenne

d’une quinzaine d’années [1]. La découverte des antibiotiques

constitue donc un évènement majeur dans l’histoire médicale. Aussi, la résistance des bactéries aux antibiotiques a-t-elle toujours poussé les chercheurs à innover en matière de molécules anti-infectieuses ; malheureusement, l’introduction de nouveaux antibiotiques se heurte rapidement à la capacité d’évolution insidieuse des bactéries [2].

C’est le cas des Carbapénèmes vis-à-vis des Bacilles à gram négatifs non fermentaires tels Pseudomonas aeruginosa et

Acinetobacter baumanii. Introduites dans les années 80, ceux-ci

ont suscité beaucoup d’espoir dans le traitement des infections

nosocomiales sévères [2]. Cependant leur spectre d’action s’est vu

rétrécir de jour en jour avec l’émergence de deux principaux types de mécanismes de résistance :

Soit l’imperméabilité, par la perte ou mutation de porines incluses dans la membrane de la bactérie ;

Soit enzymatique, par la production de métallo-β-lactamases (MBL) ; ces enzymes comportent au niveau de leur site actif un ion zinc essentiel à leur activité, d’où l’effet inhibiteur d’agents chélateurs de cations divalent comme l’acide éthylène diamine tétra acétique (EDTA) [3].

Nous nous sommes proposé de réaliser une étude d’évaluation de la résistance à l’imipenème de souches de Pseudomonas

aeruginosa et d’Acinetobacter baumanii.

(38)

~ 5 ~

Déterminer le mécanisme de résistance à l’imipenème de ces souches.

Et d’en évaluer leur prévalence parmi toutes celles isolées au service de bactériologie de l’Hôpital Militaire d’Instruction Mohammed V de Rabat (HMIMV).

(39)

~ 6 ~

(40)

~ 7 ~

1. H

ISTORIQUE

1889 : Vuillemin (France) créa le terme antibiose qui rend compte de la compétition que se livrent les micro-organismes pour la conquête des divers environnements et eu l’idée d’utiliser ces substances en médecine pour lutter contre les maladies bactériennes [1];

1928 : Flemming (Grande-Bretagne) élabora une substance bactéricide qu’il nomma pénicilline [1];

1932 : Domagk (Allemagne) découvrit les propriétés bactéricides d’un sulfamide utilisé dans l’industrie de teinture : la

sulfanilamide [1];

1941 : Emploi de la Pénicilline en thérapeutique [1];

1943 : Découverte de la Streptomycine par Waksman et Schatz

(USA), premier antibiotique de la famille des aminosides [1];

1952 : J. Lederberg (USA) démontra que les mutations bactériennes étaient responsables de la résistance aux antibiotiques [1];

1976 : Découverte de la Thiénamycine produite par Streptomyces

cattleya [1, 8, 9];

1986 : Première Autorisation de Mise sur le Marché pour TIENAM® (DCI = Imipénème-Cilastatine) [8, 9];

1997 : Apparition du Meropénème et son utilisation en Europe et en Amérique du Nord [8, 9];

(41)

~ 8 ~

07/2008 : Commercialisation du Doripénème (DORIBAX®) en

Europe et au Japon [8, 9];

Au vu de cet historique, on remarque que la découverte et l’emploi des antibiotiques ont révolutionné la médecine et la recherche biologique.

Ainsi la recherche continue-t-elle et on découvre de nouvelles thérapies tous les ans ; car les bactéries sont des êtres qui développent immanquablement une résistance aux nouveaux médicaments et il convient aux scientifiques de se parer à cette évolution fallacieuse.

(42)

~ 9 ~

P

ARTIE

(43)

~ 10 ~

2.

PARTIE THEORIQUE

2.1 Bactériologie et physiopathologie

Les bacilles à gram négatifs non fermentant (BGNnF) sont des bactéries aérobies ubiquitaires, largement présentes dans l’environnement (sols, eaux …) et pouvant être responsables d’infections cliniques sur des terrains débilités [5].

Respectivement de la famille des pseudomonadaceae et de la famille des moraxellaceae, Pseudomonas aeruginosa (P.

aeruginosa) et Acinetobacter baumanii (A. baumanii) font partis de

ces germes et sont responsables d’infections nosocomiales,

exceptionnellement d’infections communautaires [5, 6, 7].

Habitat et épidémiologie

P. aeruginosa vit dans l’eau et sur le sol. Dans l’environnement

hospitalier, il est surtout dans les endroits humides : siphons,

lavabos, matériels d’analyses mal nettoyés, solutions

d’antiseptiques contaminées. Chez l’Homme, il est l’agent d’infections nosocomiales notamment dans les services des soins intensifs, les unités de grands brûlés et chez les patients immunodéprimés [6, 10].

A. baumanii est retrouvé au sein de la flore cutanée commensale,

des régions humides tels la gorge, les narines et le tube digestif. Etant une bactérie strictement humaine, les malades colonisés représentent le principal réservoir de la bactérie [1, 7].

P.aeruginosa et A. baumanii sont dotés d’une grande capacité

d’adaptation ; c’est pourquoi leur dissémination se fait soit par voie aéroportée (dans l’environnement inhalé par des patients infectés), soit par voie manuporté (par le biais du personnel

(44)

intra-~ 11 intra-~

hospitalier), ou encore par le contact avec du matériels contaminés (sondes, cathéters, matériels de radiologie….) [4, 7, 11].

Caractères bactériologiques et biochimiques

Tableau 1 : caractères bactériologiques et biochimiques d’A. baumanii et de

P. aeruginosa. PRINCIPAUX CARACTERES A. baumanii [1,4,12,13] P. aeruginosa [1,4,12,13] FORME ET GRAM Coccobacille ; gram négatif (fig. 1). Bacille fin en bâtonnet ; gram négatif (fig. 1).

MOBILITE Immobile. Mobile par un flagelle

polaire.

MILIEUX DE CULTURE

Peu exigent, se

développe sur milieux usuels. S’adapte facilement et se développe sur milieux usuels. TEMPERATURE DE CROISSANCE Entre 33 et 35 °C, seule à croitre à 44 °C ; 37 °C et à 42 °C.

METABOLISME Aérobie stricte, non

fermentant.

Aérobie stricte, non fermentant.

ASPECT ET FORME DES

COLONIES

Aspect butyreux ; forme ronde, lisse et

convexe ; couleur blanc-jaunâtre.

Aspect métallique ; forme plate, lisse et

extensive ; couleur verte. Aspect muqueux pour les

(45)

~ 12 ~ souches de patients atteints de mucoviscidose. PIGMENTS Aucun Pioverdine : pigment jaune-vert fluorescent ; Pyocyanine : pigment bleu en solution

aqueuse. Les souches mucoïdes n’ont pas de pigments. OXYDASE - + CATALASE + + NITRATES REDUTASE - + ARGININE DIHYDROLASE - + GELATINASE - +

ACIDIFICATION DES SUCRES

PRODUCTION DE GAZ - +

GLUCOSE + +

FRUCTOSE - +

LACTOSE + +

GALACTOSE + -

(46)

~ 13 ~ mannose.

Notons qu’il existe un polysaccharide, l’ALGINATE, qui est sécrétée

par les souches mucoïdes de P. aeruginosa chez les patients

atteints de mucoviscidose [16]. L’alginate n’est pas sécrété chez A.

baumanii.

a. b.

Figure 1 : a. A. baumanii (grossissement ×1000) ; b. P. aeruginosa (grossissement ×1000). Service de bactériologie, HMIMV de Rabat.

Physiopathologie

Pour survivre et se multiplier dans l'hôte, A. baumanii et de P.

aeruginosa produisent une variété de substances qui leur

permettent d'éviter les mécanismes de défense de l'hôte. Ces substances sont : la capsule et les substances extra cellulaires qu’elle sécrète ; les protéines et les glucides de la surface, les enzymes et toxines et d'autres facteurs.

Capsule et substances extra cellulaires

Seules les bactéries Gram négatives ont un lipopolysaccharide (LPS). Composante de la membrane externe de la paroi cellulaire, la LPS se constitue de polysaccharides O ou antigène O, de

(47)

~ 14 ~

polysaccharide central ou core polysaccharidique, et de lipides A [1, 68].

La production d’un bio film composé d’alginate, le « slime », est une véritable capsule muqueuse responsable de cet aspect muqueux chez les souches de patients atteints de mucoviscidose. La LPS et le slime sont des éléments constitutifs de la bactérie qui favorisent l’adhérence aux épithéliums, et la protège contre la phagocytose [14, 68].

Les protéines et les glucides de surface

Il s’agit de protéines présentes dans la membrane de la bactérie. Selon leur rôle dans l’infectiosité, on les classe en deux catégories :

 Les adhésines et fimbriae, qui participeraient à une adhésion rapprochée après celles des pili [68];

 Et les porines qui forment notamment des canaux

permettant le passage de molécules hydrophiles à travers la

membrane hydrophobe ; Elles interviennent dans la pénétration

des antibiotiques, singulièrement des bêta-lactamines, et leur mutation peut être liée à la résistance [14].

Les enzymes et toxines

Etant des produits diffusibles, les enzymes et les toxines sont des produits extracellulaires, synthétisés par la bactérie, capables d’une action toxique directe sur les cellules inflammatoires et autres composantes du système immunitaire de l’hôte. Ce sont :

 Les hémolysines qui induisent une hémolyse et la nécrose des cellules eucaryotes en dégradant les phospholipides

(48)

~ 15 ~

membranaires (rôle du rhamnolipide) et en hydrolysant la phosphatidylcholine (rôle de la phospholipase C – PLC) [14, 15, 68].

 Les protéases : elles sont sécrétées en grand nombre et

facilitent l’invasion des tissus par la bactérie [6]. On en dénombre

quatre : l’élastase B ou Las B, l’élastase A ou Las A, la protéase alcaline, l’élastase D ou las D. Les protéases facilitent l’invasion

des tissus par la dégradation des substances immunitaires [14, 68].

Les toxines : l’exotoxine A, l’exotoxine S, l’exotoxine T et l’exotoxine U. Ces toxines interfèrent avec la synthèse protéique des cellules eucaryotes et sont particulièrement importantes pour la virulence ; in vivo leur expression accroit la virulence de P.

aeruginosa [14].

Autres facteurs : flagelles, pili ou fimbriae, alginate

Chez P. aeruginosa, le flagelle participe aux phénomènes d’adhésions aux cellules épithéliales [68]. Les pili confèrent à la

bactérie une mobilité par tiraillement (twitching mobility)

indépendante du flagelle, qui permet à P. aeruginosa de se déplacer sur les surfaces solides [14].

L’alginate, chez les souches mucoïdes de P. aeruginosa, est soit un facteur de défense, soit un facteur offensif lors des infections chroniques. En effet, l’alginate inhibe le chimiotactisme des polynucléaires neutrophiles et joue un rôle d'effet barrière à la pénétration des antibiotiques (tels les aminosides) : c’est le facteur défensif [16].

Le facteur offensif, lui, se définit par la nature visqueuse de l’alginate et son abondance qui majorent l'obstruction bronchique

(49)

~ 16 ~

Chez A. baumanii, il a été mis en évidence des pili ou fimbriae semblables à ceux que possèdent Escherichia coli uropathogène. Ceux-ci entrent dans le mécanisme d’adhésion aux cellules hôtes et à l’agglutination des érythrocytes en l’absence de D-mannose [14,15].

En somme, les structures pathogéniques d’A. baumanii et de P.

aeruginosa ont été l’objet de plusieurs études scientifiques [15]. Il convient de bien les connaitre afin de mieux les appréhender dans les infections nosocomiales.

(50)

~ 17 ~

Carbapénèmes

Définition et structure de base

Les Carbapénèmes sont des β-lactamines possédant un très large spectre antibactérien doublé d’une grande stabilité envers la quasi-totalité des β–lactamases. Pour cette raison, ils font partie des antibiotiques utilisés en première ligne au cours du

traitement probabiliste des infections nosocomiales sévères [8].

Les Carbapénèmes utilisés aujourd'hui dérivent de la

thiénamycine, molécule isolée en 1976 à partir de Streptomyces cattleya. Leur cycle de base diffère de celui des pénicillines par la

présence d’une double liaison et l'absence d'atome de soufre dans le cycle [8]. (Voir fig. 2)

Figure 2 : structure chimique du noyau péname et carbapénème [17]. Les Carbapénèmes possèdent en plus sur le carbone 6 un groupement trans hydroxyéthyle à la place du groupement cis amino-acyl portés par les autres β–lactamines. Ce groupement assure une stabilité importante vis-à-vis de l’action d’une grande variété de β–lactamases [18].

(51)

~ 18 ~

Mécanisme d’action et Relation structure activité

L’instabilité de la thiénamycine a conduit au développement au

milieu des années 1980 d’un dérivé n-formimidoyl

semisynthétique, l’Imipenème [8].

À l’instar des autres β-lactamines, les carbapénèmes exercent leur activité bactéricide en se liant aux protéines de liaison des pénicillines (PLP). Contrairement aux céphalosporines et aux aminopénicillines qui se lient principalement à la PLP3, les Carbapénèmes ont pour cibles privilégiées les PLP1a, 1b et 2, avec pour conséquence une lyse sans filamentation préalable et une moindre libération d’endotoxine par les bacilles à Gram négatif [8].

En raison d’une dégradation rapide in vivo par la dehydropeptidase (DHP-1) des tubules rénaux proximaux, l’imipenème doit être co-administré avec un inhibiteur de cette enzyme, la Cilastatine qui prévient en outre la néphrotoxicité

naturelle de l’antibiotique (Imipenème+Cilastatine = TIENAM®

(52)

~ 19 ~

Figure 3 : Relation structure activité des carbapénèmes : Imipenème,

Méropénème, Ertapénème [17, 18].

Le Méropénème et l’Ertapénème ont un groupe méthyle et ne sont pas hydrolysés en DHP-1 et ne requiert pas, de Co-administration de Cilastatine [8, 20]. (fig. 3)

Toutefois, l’activité de l’Ertapénème est inefficace vis-à-vis de P.

(53)

~ 20 ~

les entérocoques, les Staphylocoques aureus methicilline résistants (SARM) [19].

Spectre d’action

Tableau 2 : Spectre d’action des Carbapénèmes [1, 9, 17]

FORME ET METABOLISME COCCI GRAM POSITIFS ET NEGATIFS BACILLES GRAM NEGATIFS ANAEROBIES Bactéries Staphylocoques, Streptocoques, Enterocoques, Neisseria, Moraxella cattaharis Enterobactéries, Haemophilus, Bacilles non fermentants tels Acinetobacter, Pseudomonas Clostridium, Bacteroides, Fusobacterium,

Les bactéries ayant une résistance naturelle aux Carbapénèmes [9, 17] sont :

– Staphylocoque aureus methicilline résistante ; – Enterococcus faecium ;

– Corynebacterium ; – Lactobacillus sp ;

– Stenotrophomonas maltophilia ; – Aeromonas ;

(54)

~ 21 ~

Les Carbapénèmes sont des molécules à spectre large bien tolérées et encore actives sur la plupart des bactéries. Pour mieux préserver cette efficacité, il convient de limiter leur prescription au strict nécessaire tout en respectant une posologie et une durée de traitement adéquates.

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~ 22 ~

Mécanismes de résistance aux

Carbapénèmes

Resistances naturelles

La faible affinité pour la PLP5 d’Enterococcus faecium et pour la PLP2a des Staphylocoques résistants à la méticilline (SARM) rend compte de la résistance naturelle de ces bactéries [8].

Le système d’efflux actifs

Constitué d’un ensemble de protéines, ce système est

responsable de l’équilibre physico-chimique du milieu

intracellulaire en s’opposant à l’accumulation de substances naturelles ou synthétiques toxiques c'est-à-dire le transport de substances nutritives et l’export de substances toxiques.

Il existe 5 grandes familles de pompe d’efflux décrites chez les bactéries en général [24]:

- ABC (ATP binding cassette) transporteurs ; - RND (resistance nodulation cell division) ; - MFS (major facilitator superfamily) ;

- SMR (small multidrug resistance) ;

- MATE (multiantimicrobial extrusion). (fig. 5)

Chez P. aeruginosa et A. baumanii, c’est le système tripartite complexe RND qui est représenté. Il est essentiellement composé :

- D’une protéine insérée dans la membrane cytoplasmique qui fournit l’énergie au transport ;

(56)

~ 23 ~

- D’une lipoprotéine péri-plasmique qui assume la liaison et la fusion qui s’ensuit ;

- Le canal protéique dans la membrane externe libérant la molécule dans le milieu extracellulaire [22, 24]. (fig. 4)

Figure 4 : structures des pompes impliquées dans le système d’efflux actifs des bacilles gram négatifs [22, 23].

Ce système chez P. aeruginosa est composé du canal OprM (outer

membrane factor), de la protéine de fusion MEX A (membrane fusion protein) et de la pompe d’expulsion MEX B ; on parle du

(57)

~ 24 ~

Figure 5 : Représentation schématique des cinq familles de systèmes d’efflux.

MFS ou major facilitator superfamily ; SMR ou small multidrug resistance ; MATE ou multidrug and toxic compound extrusion ; RND ou

resistance-nodulation cell division avec MexA (membrane fusion protein) et OprM (outer

membrane factor) ; ABC ou ATP-binding cassette. ME, EP : membrane externe et espace périplasmique des bactéries à Gram négatif ; MC :

membrane cytoplasmique ; ATB : antibiotique substrat [24].

La surexpression génétique de ce système augmente la résistance

des bactéries à certains antibiotiques types : les

Fluoroquinolones, la Ticarciline et l’Aztréonam [17, 21, 23].

Un autre système d’efflux actif existe chez P. aeruginosa ; il est nommé le système Mex XY/ OprM. Non seulement cette pompe prend en charge un grand nombre d’antibiotiques (tétracyclines, macrolides, quinolones, chloramphénicol, ß-lactamines), mais possède la particularité d’effluer les aminosides [29].

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~ 25 ~

Cette pompe est responsable de la résistance naturelle de P.

aeruginosa aux tétracyclines et aux macrolides. De plus

l’association à la protéine de membr ane externe OprM participe à la résistance adaptative aux aminosides [24, 29].

Dans le cas d’A. baumanii, on parle du complexe Ade BAC. Ce système est responsable de l’efflux de plusieurs antibiotiques

substrats : le Triméthoprime, le Chloramphénicol,

l’Erythromycine, la Novobiocine, les aminosides et les fluoroquinolones [24]. Ce qui explique la résistance naturelle d’A. baumanii à ces antibiotiques.

Les porines

La résistance à l’Imipenème par la diminution de l’expression des porines est la plus largement décrite en ce qui concerne P.

aeruginosa. En effet, les études réalisées sur la porine D2 ont

clairement montré le lien entre la sensibilité à l’Imipenème et l’expression de cette protéine [27].

La porine facilite l'absorption à travers la membrane externe d'acides aminés basiques, de petits peptides qui contiennent ces acides aminés, ainsi que de l’Imipenème qui a une analogie structurale presque identique [27].

L’exposition prolongée à cette molécule augmente les risques de mutation génétique. De ce fait, la régulation de l’expression des systèmes d’efflux est activée, notamment celle du système Mex

AB/OprM [22, 27]. D’où la perte de la porine D2 qui s’accompagne

d’une résistance à l’Imipenème et le plus souvent aux Fluoroquinolones, à la Ticarciline et à l’Aztreonam chez P.

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Chez A. baumanii, une protéine de membrane est aussi responsable de la résistance à l’Imipenème et au Méropenème chez les souches multi-résistantes ; la perte de gènes codant une protéine de membrane nommée CarO est à la base de cette résistance [38].

Les Carbapénémases

Généralités et classification

La résistance enzymatique chez les bacilles à gram négatif est beaucoup décrite ; Les carbapénémases sont des enzymes qui diffèrent des bêta lactamases à spectre élargi (BLSE) [21, 30]. Ces enzymes sont capables d’hydrolyser les Carbapénèmes comme leur nom l’indique.

La classification moléculaire d’Ambler est basé sur la structure moléculaire de l’enzyme, la séquence des nucléotides et des

acides aminés [31]. Elle permet la différenciation des bêta

lactamases en quatre groupes bien distincts :

- La classe A : ce sont des pénicillinases retrouvées chez certaines entérobactéries telles Esherichia coli, Klebsiella

pneumoniae et Proteus mirabilis [30].

- La classe B : cette classe regroupe les métallo-β-lactamases (MBL) dont les gènes sont situés sur des plasmides et des intégrons.

- La classe C : ce sont des céphalosporinases plasmidiques, elles sont cliniquement importantes chez Citrobacter

freundii, Enterobacter spp, Morganella morganii, Serratia marcescens, P. aeruginosa, Proteus spp et Providencia spp

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