LIQUIDES BIOLOGIQUES DE PONCTION : ASPECTS HEMATOLOGIQUES

ROYAUME DU MAROC

UNIVERSITE MOHAMMED V-RABAT FACULTE DE MEDECINE ET DE

PHARMACIE RABAT

ANNEE : 2020

THESE N° : 43

LIQUIDES BIOLOGIQUES DE PONCTION :

ASPECTS HEMATOLOGIQUES

Thèse

Présentée et soutenue publiquement le : / /2020

Par

Madame Majdouline BELLAKHDAR

Née le 26/11/1991 à salé

Médecin interne du CHU Ibn Sina Rabat

Pour l'Obtention du Diplôme de

Docteur en Médecine

Mots clés

: LCR, liquide d’ascite, liquide pleural, liquide synovial.

Membres du jury :

Mme S. BENKIRANE Président

Professeur d’Hématologie Biologique

Mr A. MASRAR Rapporteur

Professeur d’Hématologie Biologique

Mme M. NAZIH Juge

Professeur d’Hématologie Biologique

Mr A. JEAIDI

Juge

DOYENS HONORAIRES :

1962 – 1969 : Professeur Abdelmalek FARAJ 1969 – 1974 : Professeur Abdellatif BERBICH 1974 – 1981 : Professeur Bachir LAZRAK 1981 – 1989 : Professeur Taieb CHKILI

1989 – 1997 : Professeur Mohamed Tahar ALAOUI 1997 – 2003 : Professeur Abdelmajid BELMAHI 2003 – 2013 : Professeur Najia HAJJAJ – HASSOUNI

ADMINISTRATION : Doyen

Professeur Mohamed ADNAOUI

Vice Doyen chargé des Affaires Académiques et estudiantines

Professeur Brahim LEKEHAL

Vice Doyen chargé de la Recherche et de la Coopération

Professeur Taoufiq DAKKA

Vice Doyen chargé des Affaires Spécifiques à la Pharmacie

Professeur Jamal TAOUFIK

Secrétaire Général

Mr. Mohamed KARRA

UNIVERSITE MOHAMMED V

FACULTE DE MEDECINE ET DE PHARMACIE RABAT

1-

ENSEIGNANTS-CHERCHEURS MEDECINS ET

PHARMACIENS

PROFESSEURS : Décembre 1984

Pr. MAAOUNI Abdelaziz Médecine Interne – Clinique Royale

Pr. MAAZOUZI Ahmed Wajdi Anesthésie -Réanimation Pr. SETTAF Abdellatif pathologie Chirurgicale

Novembre et Décembre 1985

Pr. BENSAID Younes Pathologie Chirurgicale

Janvier, Février et Décembre 1987

Pr. LACHKAR Hassan Médecine Interne Pr. YAHYAOUI Mohamed Neurologie

Décembre 1989

Pr. ADNAOUI Mohamed Médecine Interne –Doyen de la FMPR

Pr. OUAZZANI Taïbi Mohamed Réda Neurologie

Janvier et Novembre 1990

Pr. HACHIM Mohammed* Médecine-Interne

Pr. KHARBACH Aîcha Gynécologie -Obstétrique Pr. TAZI Saoud Anas Anesthésie Réanimation

Février Avril Juillet et Décembre 1991

Pr. AZZOUZI Abderrahim Anesthésie RéanimationDoyen de la FMPO

Pr. BAYAHIA Rabéa Néphrologie Pr. BELKOUCHI Abdelkader Chirurgie Générale Pr. BENCHEKROUN Belabbes Abdellatif Chirurgie Générale Pr. BENSOUDA Yahia Pharmacie galénique Pr. BERRAHO Amina Ophtalmologie

Pr. BEZZAD Rachid Gynécologie ObstétriqueMédChef Maternité des Orangers

Pr. CHERRAH Yahia Pharmacologie

Pr. CHOKAIRI Omar Histologie Embryologie Pr. KHATTAB Mohamed Pédiatrie

Pr. SOULAYMANI Rachida Pharmacologie Dir. du Centre National PV Rabat

Pr. TAOUFIK Jamal Chimie thérapeutique V.D à la pharmacie+Dir du

CEDOC+Directeur du Médicament

Décembre 1992

Pr. AHALLAT Mohamed Chirurgie Générale Doyen de FMPT

Pr. BENSOUDA Adil Anesthésie Réanimation Pr. CHAHED OUAZZANI Laaziza Gastro-Entérologie

Pr. CHRAIBI Chafiq Gynécologie Obstétrique Pr. EL OUAHABI Abdessamad Neurochirurgie

Pr. FELLAT Rokaya Cardiologie Pr. GHAFIR Driss* Médecine Interne Pr. JIDDANE Mohamed Anatomie

Pr. TAGHY Ahmed Chirurgie Générale Pr. ZOUHDI Mimoun Microbiologie

Mars 1994

Pr. BENJAAFAR Noureddine Radiothérapie Pr. BEN RAIS Nozha Biophysique Pr. CAOUI Malika Biophysique

Pr. CHRAIBI Abdelmjid Endocrinologie et Maladies Métaboliques

Doyen de la FMPA

Pr. EL AMRANI Sabah Gynécologie Obstétrique Pr. EL BARDOUNI Ahmed Traumato-Orthopédie Pr. EL HASSANI My Rachid Radiologie

Pr. ERROUGANI Abdelkader Chirurgie Générale Directeur CHIS -Rabat

Pr. ESSAKALI Malika Immunologie

Pr. ETTAYEBI Fouad Chirurgie Pédiatrique Pr. HASSAM Badredine Dermatologie

Pr. IFRINE Lahssan Chirurgie Générale

Pr. MAHFOUD Mustapha Traumatologie – Orthopédie Pr. RHRAB Brahim Gynécologie –Obstétrique Pr. SENOUCI Karima Dermatologie

Mars 1994

Pr. ABBAR Mohamed* Urologie Directeur HôpMyIsmailMeknès

Pr. ABDELHAK M’barek Chirurgie – Pédiatrique Pr. BENTAHILA Abdelali Pédiatrie

Pr. BENYAHIA Mohammed Ali Gynécologie – Obstétrique Pr. BERRADA Mohamed Saleh Traumatologie – Orthopédie Pr. CHERKAOUI LallaOuafae Ophtalmologie

Pr. LAKHDAR Amina Gynécologie Obstétrique Pr. MOUANE Nezha Pédiatrie

Mars 1995

Pr. ABOUQUAL Redouane Réanimation Médicale Pr. AMRAOUI Mohamed Chirurgie Générale Pr. BAIDADA Abdelaziz Gynécologie Obstétrique Pr. BARGACH Samir Gynécologie Obstétrique Pr. DRISSI KAMILI Med Nordine* Anesthésie Réanimation Pr. EL MESNAOUI Abbes Chirurgie Générale Pr. ESSAKALI HOUSSYNI Leila Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. IBEN ATTYA ANDALOUSSI Ahmed Urologie Pr. OUAZZANI CHAHDI Bahia Ophtalmologie Pr. SEFIANI Abdelaziz Génétique

Pr. ZEGGWAGH Amine Ali Réanimation Médicale

Décembre 1996

Pr. AMIL Touriya* Radiologie

Pr. BELKACEM Rachid Chirurgie Pédiatrie Pr. BOULANOUAR Abdelkrim Ophtalmologie Pr. EL ALAMI EL FARICHA EL Hassan Chirurgie Générale Pr. GAOUZI Ahmed Pédiatrie

Pr. MAHFOUDI M’barek* Radiologie Pr. OUZEDDOUN Naima Néphrologie

Pr. ZBIR EL Mehdi* Cardiologie Dir Hôp. Mil.d’Instruction MedVRabat

Novembre 1997

Pr. ALAMI Mohamed Hassan Gynécologie-Obstétrique Pr. BEN SLIMANE Lounis Urologie

Pr. BIROUK Nazha Neurologie Pr. ERREIMI Naima Pédiatrie Pr. FELLAT Nadia Cardiologie

Pr. KADDOURI Noureddine Chirurgie Pédiatrique Pr. KOUTANI Abdellatif Urologie

Pr. LAHLOU Mohamed Khalid Chirurgie Générale Pr. MAHRAOUI CHAFIQ Pédiatrie

Pr. TAOUFIQ Jallal Psychiatrie Directeur Hôp. Arrazi Salé

Pr. YOUSFI MALKI Mounia Gynécologie Obstétrique

Novembre 1998

Pr. BENOMAR ALI Neurologie – Doyen de la FMP Abulcassis

Pr. BOUGTAB Abdesslam Chirurgie Générale Pr. ER RIHANI Hassan Oncologie Médicale Pr. BENKIRANE Majid* Hématologie

Janvier 2000

Pr. ABID Ahmed* Pneumophtisiologie Pr. AIT OUMAR Hassan Pédiatrie

Pr. BENJELLOUN DakhamaBadr.Sououd Pédiatrie

Pr. BOURKADI Jamal-Eddine Pneumo-phtisiologie DirecteurHôp. MyYoussef

Pr. CHARIF CHEFCHAOUNI Al Montacer Chirurgie Générale Pr. ECHARRAB El Mahjoub Chirurgie Générale Pr. EL FTOUH Mustapha Pneumo-phtisiologie Pr. EL MOSTARCHID Brahim* Neurochirurgie

Pr. MAHMOUDI Abdelkrim* Anesthésie-Réanimation Pr. TACHINANTE Rajae Anesthésie-Réanimation

Pr. TAZI MEZALEK Zoubida Médecine Interne

Novembre 2000

Pr. AIDI Saadia Neurologie

Pr. AJANA Fatima Zohra Gastro-Entérologie Pr. BENAMR Said Chirurgie Générale Pr. CHERTI Mohammed Cardiologie

Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Selma Anesthésie-Réanimation

Pr. EL HASSANI Amine Pédiatrie Directeur Hôp. Cheikh Zaied

Pr. EL KHADER Khalid Urologie Pr. EL MAGHRAOUI Abdellah* Rhumatologie

Pr. GHARBI Mohamed El Hassan Endocrinologie et Maladies Métaboliques Pr. MDAGHRI ALAOUI Asmae Pédiatrie

Pr. ROUIMI Abdelhadi* Neurologie

Décembre 2000

Pr. ZOHAIR ABDELAH* ORL

Décembre 2001

Pr. BALKHI Hicham* Anesthésie-Réanimation Pr. BENABDELJLIL Maria Neurologie

Pr. BENAMAR Loubna Néphrologie

Pr. BENAMOR Jouda Pneumo-phtisiologie Pr. BENELBARHDADI Imane Gastro-Entérologie Pr. BENNANI Rajae Cardiologie

Pr. BENOUACHANE Thami Pédiatrie Pr. BEZZA Ahmed* Rhumatologie Pr. BOUCHIKHI IDRISSI Med Larbi Anatomie Pr. BOUMDIN El Hassane* Radiologie Pr. CHAT Latifa Radiologie

Pr. DAALI Mustapha* Chirurgie Générale Pr. DRISSI Sidi Mourad* Radiologie

Pr. EL HIJRI Ahmed Anesthésie-Réanimation Pr. EL MAAQILI Moulay Rachid Neuro-Chirurgie

Pr. EL MADHI Tarik Chirurgie-Pédiatrique Pr. EL OUNANI Mohamed Chirurgie Générale

Pr. ETTAIR Said Pédiatrie Directeur. Hôp. d’Enfants Rabat

Pr. GAZZAZ Miloudi* Neuro-Chirurgie Pr. HRORA Abdelmalek Chirurgie Générale Pr. KABBAJ Saad Anesthésie-Réanimation Pr. KABIRI EL Hassane* Chirurgie Thoracique Pr. LAMRANI Moulay Omar Traumatologie Orthopédie

Pr. LEKEHAL Brahim Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. MAHASSIN Fattouma* Médecine Interne

Pr. MIKDAME Mohammed* Hématologie Clinique Pr. MOHSINE Raouf Chirurgie Générale

Pr. NOUINI Yassine Urologie Directeur Hôpital Ibn Sina

Pr. SABBAH Farid Chirurgie Générale

Pr. SEFIANI Yasser Chirurgie Vasculaire Périphérique Pr. TAOUFIQ BENCHEKROUN Soumia Pédiatrie

Décembre 2002

Pr. AL BOUZIDI Abderrahmane* Anatomie Pathologique Pr. AMEUR Ahmed * Urologie

Pr. AMRI Rachida Cardiologie

Pr. AOURARH Aziz* Gastro-Entérologie Pr. BAMOU Youssef * Biochimie-Chimie

Pr. BELMEJDOUB Ghizlene* Endocrinologie et Maladies Métaboliques Pr. BENZEKRI Laila Dermatologie

Pr. BENZZOUBEIR Nadia Gastro-Entérologie Pr. BERNOUSSI Zakiya Anatomie Pathologique Pr. BICHRA Mohamed Zakariya* Psychiatrie

Pr. CHOHO Abdelkrim * Chirurgie Générale Pr. CHKIRATE Bouchra Pédiatrie

Pr. EL ALAMI EL FELLOUS Sidi Zouhair Chirurgie Pédiatrique Pr. EL HAOURI Mohamed * Dermatologie

Pr. FILALI ADIB Abdelhai Gynécologie Obstétrique Pr. HAJJI Zakia Ophtalmologie

Pr. IKEN Ali Urologie

Pr. JAAFAR Abdeloihab* Traumatologie Orthopédie Pr. KRIOUILE Yamina Pédiatrie

Pr. MABROUK Hfid* Traumatologie Orthopédie Pr. MOUSSAOUI RAHALI Driss* Gynécologie Obstétrique Pr. OUJILAL Abdelilah Oto-Rhino-Laryngologie Pr. RACHID Khalid * Traumatologie Orthopédie Pr. RAISS Mohamed Chirurgie Générale

Pr. RGUIBI IDRISSI Sidi Mustapha* Pneumophtisiologie Pr. RHOU Hakima Néphrologie

Pr. SIAH Samir * Anesthésie Réanimation Pr. THIMOU Amal Pédiatrie

Pr. ZENTAR Aziz* Chirurgie Générale

Janvier 2004

Pr. ABDELLAH El Hassan Ophtalmologie

Pr. AMRANI Mariam Anatomie Pathologique Pr. BENBOUZID Mohammed Anas Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. BENKIRANE Ahmed* Gastro-Entérologie Pr. BOUGHALEM Mohamed* Anesthésie Réanimation

Pr. BOULAADAS Malik Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale Pr. BOURAZZA Ahmed* Neurologie

Pr. CHAGAR Belkacem* Traumatologie Orthopédie Pr. CHERRADI Nadia Anatomie Pathologique Pr. EL FENNI Jamal* Radiologie

Pr. EL HANCHI ZAKI Gynécologie Obstétrique Pr. EL KHORASSANI Mohamed Pédiatrie

Pr. EL YOUNASSI Badreddine* Cardiologie Pr. HACHI Hafid Chirurgie Générale Pr. JABOUIRIK Fatima Pédiatrie

Pr. KHARMAZ Mohamed Traumatologie Orthopédie Pr. MOUGHIL Said Chirurgie Cardio-Vasculaire Pr. OUBAAZ Abdelbarre* Ophtalmologie

Pr. TARIB Abdelilah* Pharmacie Clinique Pr. TIJAMI Fouad Chirurgie Générale Pr. ZARZUR Jamila Cardiologie

Janvier 2005

Pr. ABBASSI Abdellah Chirurgie Réparatrice et Plastique Pr. AL KANDRY Sif Eddine* Chirurgie Générale

Pr. ALLALI Fadoua Rhumatologie Pr. AMAZOUZI Abdellah Ophtalmologie Pr. AZIZ Noureddine* Radiologie

Pr. BAHIRI Rachid Rhumatologie Directeur. Hôp. Al Ayachi Salé

Pr. BARKAT Amina Pédiatrie Pr. BENYASS Aatif Cardiologie Pr. DOUDOUH Abderrahim* Biophysique Pr. EL HAMZAOUI Sakina* Microbiologie

Pr. HAJJI Leila Cardiologie (mise en disponibilité)

Pr. HESSISSEN Leila Pédiatrie Pr. JIDAL Mohamed* Radiologie

Pr. LAAROUSSI Mohamed Chirurgie Cardio-vasculaire Pr. LYAGOUBI Mohammed Parasitologie

Pr. RAGALA Abdelhak Gynécologie Obstétrique

Pr. SBIHI Souad Histo-Embryologie Cytogénétique Pr. ZERAIDI Najia Gynécologie Obstétrique

Avril 2006

Pr. ACHEMLAL Lahsen* Rhumatologie Pr. AKJOUJ Said* Radiologie Pr. BELMEKKI Abdelkader* Hématologie Pr. BENCHEIKH Razika O.R. L

Pr. BIYI Abdelhamid* Biophysique

Pr. BOUHAFS Mohamed El Amine Chirurgie - Pédiatrique Pr. BOULAHYA Abdellatif* Chirurgie Cardio – Vasculaire Pr. CHENGUETI ANSARI Anas Gynécologie Obstétrique Pr. DOGHMI Nawal Cardiologie

Pr. FELLAT Ibtissam Cardiologie

Pr. FAROUDY Mamoun Anesthésie Réanimation Pr. HARMOUCHE Hicham Médecine Interne Pr. HANAFI Sidi Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr. IDRISS LAHLOU Amine* Microbiologie

Pr. JROUNDI Laila Radiologie Pr. KARMOUNI Tariq Urologie Pr. KILI Amina Pédiatrie Pr. KISRA Hassan Psychiatrie

Pr. KISRA Mounir Chirurgie – Pédiatrique Pr. LAATIRIS Abdelkader* Pharmacie Galénique Pr. LMIMOUNI Badreddine* Parasitologie

Pr. MANSOURI Hamid* Radiothérapie Pr. OUANASS Abderrazzak Psychiatrie Pr. SAFI Soumaya* Endocrinologie Pr. SEKKAT Fatima Zahra Psychiatrie

Pr. SOUALHI Mouna Pneumo – Phtisiologie Pr. TELLAL Saida* Biochimie

Pr. ZAHRAOUI Rachida Pneumo – Phtisiologie

Decembre 2006

Pr SAIR Khalid Chirurgie générale Dir. Hôp.Av.Marrakech

Octobre 2007

Pr. ABIDI Khalid Réanimation médicale Pr. ACHACHI Leila Pneumo phtisiologie Pr. ACHOUR Abdessamad* Chirurgie générale

Pr. AIT HOUSSA Mahdi* Chirurgie cardio vasculaire Pr. AMHAJJI Larbi* Traumatologie orthopédie Pr. AOUFI Sarra Parasitologie

Pr. BAITE Abdelouahed* Anesthésie réanimation Directeur ERSSM

Pr. BALOUCH Lhousaine* Biochimie-chimie Pr. BENZIANE Hamid* Pharmacie clinique Pr. BOUTIMZINE Nourdine Ophtalmologie Pr. CHARKAOUI Naoual* Pharmacie galénique Pr. EHIRCHIOU Abdelkader* Chirurgie générale

Pr. EL BEKKALI Youssef * Chirurgie cardio-vasculaire

Pr. ELABSI Mohamed Chirurgie générale Pr. EL MOUSSAOUI Rachid Anesthésie réanimation

Pr. EL OMARI Fatima Psychiatrie

Pr. GHARIB Noureddine Chirurgie plastique et réparatrice Pr. HADADI Khalid* Radiothérapie

Pr. ICHOU Mohamed* Oncologie médicale Pr. ISMAILI Nadia Dermatologie Pr. KEBDANI Tayeb Radiothérapie

Pr. LALAOUI SALIM Jaafar* Anesthésie réanimation Pr. LOUZI Lhoussain* Microbiologie

Pr. MADANI Naoufel Réanimation médicale Pr. MAHI Mohamed* Radiologie

Pr. MARC Karima Pneumo phtisiologie Pr. MASRAR Azlarab Hématologie biologique Pr. MRANI Saad* Virologie

Pr. OUZZIF Ezzohra* Biochimie-chimie Pr. RABHI Monsef* Médecine interne Pr. RADOUANE Bouchaib* Radiologie Pr. SEFFAR Myriame Microbiologie Pr. SEKHSOKH Yessine* Microbiologie Pr. SIFAT Hassan* Radiothérapie

Pr. TABERKANET Mustafa* Chirurgie vasculaire périphérique Pr. TACHFOUTI Samira Ophtalmologie

Pr. TAJDINE Mohammed Tariq* Chirurgie générale

Pr. TANANE Mansour* Traumatologie orthopédie Pr. TLIGUI Houssain Parasitologie

Pr. TOUATI Zakia Cardiologie

Décembre 2008

Pr TAHIRI My El Hassan* Chirurgie Générale

Mars 2009

Pr. ABOUZAHIR Ali* Médecine interne Pr. AGDR Aomar* Pédiatre

Pr. AIT ALI Abdelmounaim* Chirurgie Générale Pr. AIT BENHADDOU El hachmia Neurologie

Pr. AKHADDAR Ali* Neuro-chirurgie Pr. ALLALI Nazik Radiologie Pr. AMINE Bouchra Rhumatologie

Pr. ARKHA Yassir Neuro-chirurgie Directeur Hôp.des Spécialités

Pr. BELYAMANI Lahcen* Anesthésie Réanimation Pr. BJIJOU Younes Anatomie

Pr. BOUHSAIN Sanae* Biochimie-chimie Pr. BOUI Mohammed* Dermatologie Pr. BOUNAIM Ahmed* Chirurgie Générale

Pr. BOUSSOUGA Mostapha* Traumatologie orthopédique Pr. CHTATA Hassan Toufik* Chirurgie vasculaire périphérique Pr. DOGHMI Kamal* Hématologie clinique

Pr. EL MALKI Hadj Omar Chirurgie Générale Pr. EL OUENNASS Mostapha* Microbiologie Pr. ENNIBI Khalid* Médecine interne

Pr. FATHI Khalid Gynécologie obstétrique Pr. HASSIKOU Hasna * Rhumatologie

Pr. KABBAJ Nawal Gastro-entérologie Pr. KABIRI Meryem Pédiatrie

Pr. KARBOUBI Lamya Pédiatrie

Pr. LAMSAOURI Jamal* Chimie Thérapeutique Pr. MARMADE Lahcen Chirurgie Cardio-vasculaire Pr. MESKINI Toufik Pédiatrie

Pr. MESSAOUDI Nezha * Hématologie biologique Pr. MSSROURI Rahal Chirurgie Générale Pr. NASSAR Ittimade Radiologie

Pr. OUKERRAJ Latifa Cardiologie

Pr. RHORFI Ismail Abderrahmani * Pneumo-phtisiologie

Octobre 2010

Pr. ALILOU Mustapha Anesthésie réanimation Pr. AMEZIANE Taoufiq* Médecine interne Pr. BELAGUID Abdelaziz Physiologie Pr. CHADLI Mariama* Microbiologie

Pr. CHEMSI Mohamed* Médecine aéronautique Pr. DAMI Abdellah* Biochimie chimie Pr. DARBI Abdellatif* Radiologie

Pr. DENDANE Mohammed Anouar Chirurgie pédiatrique Pr. EL HAFIDI Naima Pédiatrie

Pr. EL KHARRAS Abdennasser* Radiologie

Pr. EL MAZOUZ Samir Chirurgie plastique et réparatrice Pr. EL SAYEGH Hachem Urologie

Pr. ERRABIH Ikram Gastro entérologie Pr. LAMALMI Najat Anatomie pathologique Pr. MOSADIK Ahlam Anesthésie Réanimation Pr. MOUJAHID Mountassir* Chirurgie générale Pr. NAZIH Mouna* Hématologie biologique Pr. ZOUAIDIA Fouad Anatomie pathologique

Decembre 2010

Mai 2012

Pr. AMRANI Abdelouahed Chirurgie Pédiatrique Pr. ABOUELALAA Khalil* Anesthésie Réanimation Pr. BENCHEBBA Driss* Traumatologie Orthopédique Pr. DRISSI Mohamed* Anesthésie Réanimation Pr. EL ALAOUI MHAMDI Mouna Chirurgie Générale Pr. EL KHATTABI Abdessadek* Médecine Interne Pr. EL OUAZZANI Hanane* Pneumophtisiologie Pr. ER-RAJI Mounir Chirurgie Pédiatrique Pr. JAHID Ahmed Anatomie pathologique Pr. MEHSSANI Jamal* Psychiatrie

Pr. RAISSOUNI Maha* Cardiologie

*Enseignants Militaires

Février 2013

Pr. AHID Samir Pharmacologie – Chimie Pr. AIT EL CADI Mina Toxicologie

Pr. AMRANI HANCHI Laila Gastro-Entérologie Pr. AMOUR Mourad Anesthésie Réanimation Pr. AWAB Almahdi Anesthésie Réanimation Pr. BELAYACHI Jihane Réanimation Médicale Pr. BELKHADIR Zakaria Houssain Anesthésie Réanimation Pr. BENCHEKROUN Laila Biochimie-Chimie Pr. BENKIRANE Souad Hématologie biologique Pr. BENNANA Ahmed* Informatique Pharmaceutique Pr. BENSGHIR Mustapha* Anesthésie Réanimation Pr. BENYAHIA Mohammed* Néphrologie

Pr. BOUATIA Mustapha Chimie Analytique et Bromatologie Pr. BOUABID Ahmed Salim* Traumatologie Orthopédie

Pr. BOUTARBOUCH Mahjouba Anatomie Pr. CHAIB Ali* Cardiologie

Pr. DENDANE Tarek Réanimation Médicale Pr. DINI Nouzha* Pédiatrie

Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Mohamed Ali Anesthésie Réanimation Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Najwa Radiologie

Pr. ELFATEMI Nizare Neuro-Chirurgie Pr. EL GUERROUJ Hasnae Médecine Nucléaire Pr. EL HARTI Jaouad Chimie Thérapeutique Pr. EL JOUDI Rachid* Toxicologie

Pr. EL KABABRI Maria Pédiatrie

Pr. EL KHANNOUSSI Basma Anatomie Pathologie Pr. EL KHLOUFI Samir Anatomie

Pr. EL KORAICHI Alae Anesthésie Réanimation Pr. EN-NOUALI Hassane* Radiologie

Pr. ERRGUIG Laila Physiologie Pr. FIKRI Meryim Radiologie

Pr. GHFIR Imade Médecine Nucléaire Pr. IMANE Zineb Pédiatrie

Pr. IRAQI Hind Endocrinologie et maladies métaboliques Pr. KABBAJ Hakima Microbiologie

Pr. KADIRI Mohamed* Psychiatrie Pr. LATIB Rachida Radiologie Pr. MAAMAR Mouna Fatima Zahra Médecine Interne Pr. MEDDAH Bouchra Pharmacologie Pr. MELHAOUI Adyl Neuro-chirurgie Pr. MRABTI Hind Oncologie Médicale Pr. NEJJARI Rachid Pharmacognosie Pr. OUBEJJA Houda Chirurgie Pédiatrique Pr. OUKABLI Mohamed* Anatomie Pathologique Pr. RAHALI Younes Pharmacie Galénique Pr. RATBI Ilham Génétique

Pr. RAHMANI Mounia Neurologie Pr. REDA Karim* Ophtalmologie Pr. REGRAGUI Wafa Neurologie Pr. RKAIN Hanan Physiologie Pr. ROSTOM Samira Rhumatologie

Pr. ROUAS Lamiaa Anatomie Pathologique Pr. ROUIBAA Fedoua* Gastro-Entérologie Pr. SALIHOUN Mouna Gastro-Entérologie

Pr. SAYAH Rochde Chirurgie Cardio-Vasculaire Pr. SEDDIK Hassan* Gastro-Entérologie

Pr. ZERHOUNI Hicham Chirurgie Pédiatrique Pr. ZINE Ali* Traumatologie Orthopédie

Avril 2013

Pr. EL KHATIB Mohamed Karim* Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale

MAI 2013

Pr.BOUSLIMAN Yassir Toxicologie

MARS 2014

Pr. ACHIR Abdellah Chirurgie Thoracique Pr. BENCHAKROUN Mohammed * Traumatologie- Orthopédie Pr. BOUCHIKH Mohammed Chirurgie Thoracique

Pr. EL KABBAJ Driss * Néphrologie Pr. EL MACHTANI IDRISSI Samira * Biochimie-Chimie

Pr. HARDIZI Houyam Histologie- Embryologie-Cytogénétique Pr. HASSANI Amale * Pédiatrie

Pr. HERRAK Laila Pneumologie Pr. JANANE Abdellah * Urologie

Pr. JEAIDI Anass * Hématologie Biologique Pr. KOUACH Jaouad* Génycologie-Obstétrique Pr. LEMNOUER Abdelhay* Microbiologie

Pr. MAKRAM Sanaa * Pharmacologie Pr. OULAHYANE Rachid* Chirurgie Pédiatrique Pr. RHISSASSI Mohamed Jaafar CCV

Pr. SABRY Mohamed* Cardiologie Pr. SEKKACH Youssef* Médecine Interne

Pr. TAZI MOUKHA Zakia Génécologie-Obstétrique

AVRIL 2014

Pr.ZALAGH Mohammed ORL

PROFESSEURS AGREGES : DECEMBRE 2014

Pr. ABILKASSEM Rachid* Pédiatrie

Pr. AIT BOUGHIMA Fadila Médecine Légale

Pr. BEKKALI Hicham * Anesthésie-Réanimation Pr. BENAZZOU Salma Chirurgie Maxillo-Faciale Pr. BOUABDELLAH Mounya Biochimie-Chimie

Pr. BOUCHRIK Mourad* Parasitologie Pr. DERRAJI Soufiane* Pharmacie Clinique Pr. DOBLALI Taoufik* Microbiologie Pr. EL AYOUBI EL IDRISSI Ali Anatomie

Pr. EL GHADBANE AbdedaimHatim* Anesthésie-Réanimation Pr. EL MARJANY Mohammed* Radiothérapie

Pr. FEJJAL Nawfal Chirurgie Réparatrice et Plastique Pr. JAHIDI Mohamed* O.R. L

Pr. LAKHAL Zouhair* Cardiologie

Pr. OUDGHIRI Nezha Anesthésie-Réanimation Pr. RAMI Mohamed Chirurgie Pédiatrique Pr. SABIR Maria Psychiatrie

Pr. SBAI IDRISSI Karim* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

AOUT 2015

Pr. MEZIANE Meryem Dermatologie Pr. TAHRI Latifa Rhumatologie

JANVIER 2016

Pr. BENKABBOU Amine Chirurgie Générale Pr. EL ASRI Fouad* Ophtalmologie Pr. ERRAMI Noureddine* O.R. L

Pr. NITASSI Sophia O.R. L

JUIN 2017

Pr. ABI Rachid* Microbiologie Pr. ASFALOU Ilyasse* Cardiologie

Pr. BOUAYTI El Arbi* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. BOUTAYEB Saber Oncologie Médicale Pr. EL GHISSASSI Ibrahim Oncologie Médicale Pr. OURAINI Saloua* O.R. L

Pr. RAZINE Rachid Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. ZRARA Abdelhamid* Immunologie

* Enseignants Militaires

2- ENSEIGNANTS – CHERCHEURS SCIENTIFIQUES

PROFESSEURS / PRs. HABILITES

Pr. ABOUDRAR Saadia Physiologie

Pr. ALAMI OUHABI Naima Biochimie – chimie Pr. ALAOUI Katim Pharmacologie

Pr. ALAOUI SLIMANI Lalla Naïma Histologie-Embryologie

Pr. ANSAR M’hammed Chimie Organique et Pharmacie Chimique

Pr. BARKIYOU Malika Histologie-Embryologie

Pr. BOUHOUCHE Ahmed Génétique Humaine

Pr. BOUKLOUZE Abdelaziz Applications Pharmaceutiques Pr. CHAHED OUAZZANI LallaChadia Biochimie – chimie

Pr. DAKKA Taoufiq Physiologie

Pr. FAOUZI Moulay El Abbes Pharmacologie

Pr. KHANFRI Jamal Eddine Biologie

Pr. OULAD BOUYAHYA IDRISSI Med Chimie Organique Pr. REDHA Ahlam Chimie

Pr. TOUATI Driss Pharmacognosie Pr. ZAHIDI Ahmed Pharmacologie

Mise à jour le 10/10/2018 Khaled Abdellah

Dédicaces

Je dédie cette thèse à tous les

miens…

A notre maître et président de thèse

Madame le professeur Souad BENKIRANE

Professeur d’hématologie biologique

C’est avec une profonde gratitude et une joie immense

que nous avons

reçu votre acceptation de présider le jury de notre thèse

en plaçant votre confiance en notre travail.

Avec tout le respect que nous vous devons, veuillez

trouvez ici, l’expression de notre profond respect et

A notre maître et rapporteur de thèse

Monsieur le professeur Azlarab MASRAR

Professeur d’Hématologie Biologique

Chef de service du laboratoire central d’hématologie

du CHU Ibn Sina Rabat

Ce fut un honneur et privilège de travailler avec vous, vos

compétences, qualités humaines et votre simplicité ont

toujours suscités en nous une grande admiration.

Nos sincères remerciements à vous pour votre confiance,

votre constante disponibilité, votre patience et surtout vos

conseils judicieux. C’est avec une joie et un plaisir

immense que nous exprimons notre gratitude pour tous

vos efforts déployés pour la réalisation de ce travail riche

A Notre Maitre et Juge de Thèse

Madame Mona NAZIH

Professeur d’Hématologie Biologique

Nous sommes très sensibles à l’honneur que vous nous

faites en acceptant de juger notre travail, et d’apporter

vos connaissances à la critique de ce travail.

Veuillez accepter cher maître l’expression de notre

plus haute estime et de nos sentiments

les plus respectueux.

A Notre Maitre et Juge de Thèse

Monsieur le professeur Anass JEAIDI

Professeur d’hématologie biologique

C’est pour nous un grand honneur de vous avoir dans notre

jury pour juger ce travail.

Merci de votre serviabilité dont vous nous avez témoigné en

acceptant de siéger dans notre jury de thèse, et d’apporter

vos connaissances à la critique de ce travail.

Recevez à travers ce travail notre gratitude

TABLE DES MATIERES

LISTE DES ABREVIATIONS LISTE DES TABLEAUX LISTE DES FIGURES

INTRODUCTION……….. 1 RAPPELS PHYSIOPATHOLOGIQUES……….………4 I. Le LCR ………... 5 II. LIQUIDES D’EPANCHEMENT………. 6 1. LIQUIDE D’ASCITE ... 7 2. LIQUIDE PLEURAL ... 8 3. LIQUIDE SYNOVIAL ... 9 MATERIELS ET METHODES………. 10 I. MATERIELS : ECHANTILLONS ET TECHNIQUES DE PONCTION………. 11 1. LCR ... 11 2. LIQUIDE D’ASCITE ... 12 4. LIQUIDE PLEURAL ... 13 5. LIQUIDE SYNOVIAL ... 14 II. METHODES ……… 15 1. EXAMEN MACROSCOPIQUE ... 15 2. COMPTAGE CELLULAIRE ... 15 A. Principe du comptage cellulaire ……… 15 B. le comptage manuel ………. 16 C. le comptage automatisé………. 19 RESULTATS ET ANALYSES……….. 23 I. ASPECTS MACROSCOPIQUES ………. 24 1. LCR ... 24 2. LIQUIDE D’ASCITE ... 25 3. LIQUIDE PLEURAL ... 25 4. LIQUIDE SYNOVIAL ... 25 II. ASPECTS HEMATO- CYTOLOGIQUES ………... 26 1. LCR NORMAL ... 26 2. LCR PATHOLOGIQUE ... 27 A. les cellules inflammatoires……… 27 a) Les macrophages……….. 27

b) Les plasmocytes ……… 28 c) Les polynucléaires neutrophiles………..28 d) Les polynucléaire éosinophiles ……….……….30 B. Les globules rouges……… 31 C. Les blastes……….. 32 3. LIQUIDE D’ASCITE ... 34 A. Ascite à polynucléaires neutrophiles……….. 34 B. Ascite à polynucléaires éosinophiles ……….... 35 C. Ascite à lymphocytes d’aspect banal………... 35 D. Ascite à cellules lymphoïdes atypiques ………..…………...35 4. LIQUIDE PLEURAL ... 35 A. Pleurésies à polynucléaires neutrophiles……… 35 B. Pleurésies à polynucléaires éosinophiles ……….………. 36 C. Pleurésies lymphocytaires ………..………....36 5. LIQUIDE SYNOVIAL ... 37 A. Liquides d’épanchements synoviaux mécaniques………. 37 B. Synovites inflammatoires……….. 37 a) Prédominance de polynucléaires neutrophiles……….. 38 b) Prédominance de lymphocytes ………... 38 c) Prédominance de monocytes……….… 38 d) Prédominance de polynucléaires éosinophiles………... 38 C. Liquides Synoviaux Hémorragiques………... 38 D. Liquides synoviaux avec présence de cellules atypiques ……… 39 DISCUSSION……… 40 I. Phase pré analytique ……….. 41 II. Phase analytique………... 42 III. Phase post analytique………. 46 1. LCR ... 46 2. Liquide d’ascite ... 48 3. Liquide pleural ... 48 4. Liquide synovial ... 50 CONCLUSION………... 51 RESUME ………53 BIBLIOGRAPHIE……….. 57

LISTE DES ABREVIATIONS

LCR : liquide céphalorachidien PNNs : polynucléaires neutrophiles INR : international normalised ratio G/L : milliards par litre

EDTA :acide éthylènediaminetétraacétique

Tampon PBS : tampon phosphate salin souvent abrégé PBS, de l'anglais phosphate buffered

saline

AVCI : accident vasculaire cérébral ischémique HIV : virus de l'immunodéficience humaine PL : ponction lombaire

SIDA : Le syndrome d'immunodéficience acquise CMV : cytomégalovirus

GR : globule rouge

LAL : leucémie aiguë lymphoblastique LAM : leucémie aiguë myéloblastique

FAB : la classification Franco-Américano-Britannique des leucémies aiguës IRM : imagerie par résonance magnétique

CNS : Central nervous system NCI : National cancer institute GB : globules blancs

TLP : traumatic lumbar puncture PEo : polynucléaires éosinophiles PR : polyarthrite rhumatoïde

Cellules LE : cellules du lupus érythémateux g/l : grammes par litre

SNC : système nerveux central IgG: immunoglobuline G

M. tuberculosis: mycobacterium tuberculosis PCR : Polymerase chain reaction

ACE : Antigène carcino-embryonnaire LDH : lactate déshydrogénase

LISTE DES TABLEAUX

Tableau 1: ORIENTATION DEVANT LCR HEMORRAGIQUE ... 24 Tableau 2: ORIENTATION DIAGNOSTIQUE DEVANT L’ASPECT ET LA

CELLULARITE DU LCR DANS LA PATHOLOGIE INFECTIEUSE ... 30 Tableau 3: CLASSIFICATION CNS STATUS SELON NCI WORKSHOP 1993 ... 33 Tableau 4: CLASSIFICATION CNS STATUS UTILISEE DEPUIS 2003 ... 33 Tableau 5: ORIENTATION ETIOLOGIQUE DEVANT UN EPANCHEMENT PLEURAL37 Tableau 6: CRITERES DE LIGHT 1972, UN CRITERE AU MOINS PARMI CES

LISTE DES FIGURES

Figure 1: SCHEMA DES VOIES D’ECOULEMENT DU LCR ... 6 Figure 2: PONCTION LOMBAIRE ... 12 Figure 3: REPERES DU SITE DE PONCTION D’ASCITE CHEZ UN CIRRHOTIQUE EN DECUBITUS DORSAL ... 13 Figure 4: TECHNIQUE DE PONCTION PLEURALE ... 14 Figure 5: CELLULE DE MALASSEZ EN VERRE ... 17 Figure 6: SCHEMA D’UNE LAME EN VERRE TYPE MALASSEZ AVEC SON

QUADRILLAGE ... 17 Figure 7: REPRESENTATION D’UNE LAME C-CHIP ... 19 Figure 8: EXEMPLE DE COMPTEUR PORTATIF ... 20 Figure 9: COMPTEUR AUTOMATISE CELLOMETER AUTO1000 ... 22 Figure 10: LYMPHOCYTE ET MONOCYTE D’UN LCR NORMAL APRES

COLORATION DE WRIGHT-GIEMSA ... 26 Figure 11: MACROPHAGES DANS LE LCR AU COURS D’UNE HEMORRAGIE

MENINGEE, APRES COLORATION DE WRIGHT-GIEMSA ... 27 Figure 12: PLASMOCYTES DANS LE LCR AU COURS DE LA MALADIE DE LYME.. 28 Figure 13: PNNs AVEC BACTERIES DANS LE LCR AU COURS D’UNE MENINGITE AIGUE BACTERIENNE A PNEUMOCOQUE (COLORATION WRIGHT-GIEMSA) ... 29 Figure 14: EOSINOPHILES (flèches) DANS LE LCR APRES COLORATION WRIGHT-GIEMSA ... 31 Figure 15: BLASTES DANS LE LCR AU COURS DE LAL 1 ... 34 Figure 16: ECHANTILLON CELLULAIRE AVEC DES DEBRIS SUR

HEMATIMETRE……….42 Figure 17: SUBJECTIVITE HUMAINE. ... 43 Figure 18: VUE DE COTE D’UN HEMATIMETRE VIDE (GAUCHE) ET REMPLI

INTRODUCTION

L’analyse hématologique des liquides de ponction est un processus essentiel pour le

diagnostic et le suivi de plusieurs maladies.

Pour le liquide céphalorachidien, la numération et la différenciation leucocytaire permettent de distinguer une méningite virale d’une méningite bactérienne [1], La présence d’une grande quantité d’érythrocytes indique une hémorragie méningée ou une ponction traumatique. Pour l’ensemble des autres liquides de ponction, liquides de séreuses ou articulaire, la présence d’un nombre important de PNNs suggère une infection d’origine bactérienne.

Les liquides de ponction sont analysés au laboratoire de biologie médicale pour effectuer les numérations cellulaires et un examen morphologique des cellules. Ces demandes, sporadiques dans les laboratoires de petite taille, affluent parfois en grand nombre dans le cas de laboratoires associés à des grands centres Hospitaliers. Cet afflux de prélèvements nécessite une adaptation des techniques utilisées.

Le gold standard reste le comptage manuel optique par examen microscopique [2].

Le comptage optique « manuel » à l’aide d’une cellule de comptage et l’examen cytologique au microscope requièrent du personnel compétent spécialisé (technicien de laboratoire, biologiste). Et présentent des inconvénients majeurs : Durée de l’analyse, variabilité inter-opérateur, imprécision du résultat… Il est donc légitime de vouloir mettre en place une analyse cytologique automatisée des liquides de ponction pouvant bénéficier de contrôles. Cependant on ne peut pas utiliser tels quels les modules d’analyses prévus pour le sang, non programmés pour ces tests. En effet l’analyse des liquides de ponction diffère de l’analyse cytologique du sang sur plusieurs points : par la présence de cellules particulières (cellules mésothéliales, cellules synoviales, voire cellules néoplasiques) ; par la cellularité (classiquement moins importante dans un liquide de ponction) ; et par la matrice extracellulaire. Il a donc fallu adapter les technologies existantes : modifier les volumes de liquides analysés, vérifier les méthodes de comptage cellulaire pour éliminer un effet de matrice… De nouvelles règles d’expertise ont dû être élaborées pour prendre en compte les spécificités de ces milieux, aboutissant à la construction de modules spécifiques.

Plusieurs fournisseurs d’appareils de cytologie ont développé leurs propres méthodes analytiques : Iris (iQ200 et système iriscell) ; Beckman® (LH 750/780 et DxH 800) ; Advia® (2120 et 2120i) ; SYSMEX® (séries XE, XN, module Bodyfluid™(BF)). [3]

RAPPELS

PHYSIOPATHOLOGIQUES

Le liquide de ponction est un liquide corporel non circulant, qui, sous l’effet d’une pathologie, augmente en volume et crée un épanchement. On distingue classiquement les liquides pleuraux, péritonéaux, péricardiques, articulaires. Il peut s’agir en outre de liquide présent en quantité significative dont l’analyse peut présenter un intérêt, tel que le LCR.

I. Le LCR : [4]

C’est un liquide physiologique occupant deux grands compartiments du système nerveux central :

- Les ventricules cérébraux : dans lesquels il est secrété par les plexus choroïdes (de 300 à 500 ml/jour chez l’adulte), ces derniers sont constitués par un stroma fait de cellules leptoméningées dispersées entre de très nombreux capillaires sanguins, et revêtu d'un épithélium.

- Les espaces sous arachnoïdiens cérébraux et spinaux : aux au niveau desquels il est résorbé par les villosités arachnoïdiennes.

Ces deux compartiments communiquent librement par les trous de Magendie et de LushKa. Les ventricules cérébraux sont entièrement revêtus par l'épendyme, et les espaces sous arachnoïdiens sont contenus dans les mailles des leptoméninges.

Le LCR joue plusieurs rôles :

• Mécanique : protection contre la pression vasculaire, et amortissement du déplacement du cerveau vers le crâne en cas de choc.

• Maintien de la régulation de la pression intra-crânienne. • Transport des éléments nutritifs aux neurones.

• Elimination des déchets des cellules du système nerveux central.

• Protection contre les infections via des médiateurs de l’immunité humorale et cellulaire.

Figure 1: SCHEMA DES VOIES D’ECOULEMENT DU LCR [5]

II. LIQUIDES D’EPANCHEMENT :

Quelle que soit l’origine du liquide d’épanchement, la physiopathologie est proche. A l’état normal, il existe une lubrification des séreuses par une faible quantité de liquide produite par le feuillet pariétal et réabsorbée par le feuillet viscéral. Un déséquilibre entre sécrétion et réabsorption provoque un épanchement. Ces liquides d’épanchements sont classés traditionnellement en deux catégories [6] :

 Les transsudats

:

Ils correspondent à une diminution de la résorption du liquide. Les causes sont souvent mécaniques et diffèrent selon l’origine du liquide. Classiquement, on ne retrouve pas d’excès de protides et la cellularité est faible.

 Les exsudats :

Ils apparaissent suite à une augmentation de la production du liquide. Ils sont le plus souvent secondaires à une prolifération tumorale ou à une inflammation ayant pour origine une

infection, des troubles vasculaires aigus, ou certaines connectivites. Le taux de protides est élevé, il peut y avoir présence de fibrinogène et on y retrouve de nombreuses cellules. De plus chaque liquide possède des caractéristiques différentes en fonction de son origine.

1. LIQUIDE D’ASCITE : [7] ; [8] ; [9]

L’ascite est un épanchement liquidien de la cavité péritonéale. On exclut généralement de cette définition les épanchements purulents (péritonites), les épanchements sanglants (hémopéritoines), et les épanchements bilieux (cholépéritoines). La caractéristique exsudative ou transsudative de l’ascite dépend de la cause de l’épanchement :

Le transsudat peut être constitué suite à :

o Une hypertension portale, retrouvée dans en cas de cirrhose, d’affection cardiaque, ou de métastases hépatiques avec compression vasculaire provoquant un blocage mécanique.

o Rarement : un syndrome néphrotique, une dénutrition ou une entéropathie exsudative, le mécanisme ainsi est la diminution de la pression oncotique du secteur vasculaire secondaire à l’hypoprotidémie.

A l’inverse, la pression portale est normale dans le cas d’un exsudat. La cause est alors extérieure :

o Carcinose péritonéale. o Tuberculose péritonéale.

o Affection pancréatique, l’ascite est secondaire dans ce cas à une fuite par rupture d'un canal pancréatique ou d'un pseudo-kyste dans la cavité péritonéale.

o Les connectivites, en particulier le lupus systémique peuvent s’associer à une ascite qui est en général riche en protides, et secondaire à une sérite par vascularite péritonéale.

o L’ascite chyleuse peut être secondaire à un traumatisme chirurgical du canal lymphatique, un obstacle lymphatique (lymphome par exemple), dysplasie congénitale des canaux lymphatiques, une infection parasitaire à filaires (après un séjour en zone d’endémie), ou rarement la tuberculeuse péritonéale.

o Le mésothéliome péritonéale.

o La maladie gélatineuse du péritoine est due à l'accumulation de mucine dans la cavité péritonéale, Le diagnostic est fait par ponction avec une aiguille de gros calibre pour ramener cette substance épaisse. Ses causes sont les cystadénomes ou cystadénocarcinomes ovariens ou appendiculaires.

2. LIQUIDE PLEURAL : [10]

La plèvre est la membrane séreuse qui recouvre les poumons, la cage thoracique, le diaphragme et le médiastin. Les deux feuillets sont contigus et l’espace virtuel formé ainsi entre les deux est la cavité pleurale. Normalement, les deux feuillets ne sont séparés que par une quantité infime de fluide quasi virtuelle (production de 5-20 ml/jour) qui facilite les mouvements de glissement des deux membranes l’une contre l’autre.

Un épanchement pleural est toujours pathologique et les mécanismes peuvent être :

• Une atteinte de l’équilibre sécrétion/résorption par

anomalie <Mécanique> :

- Déséquilibre entre les pressions hydrostatiques (insuffisance cardiaque) et oncotiques (syndrome néphrotique)

- Augmentation de la dépression pleurale (atélectasie pulmonaire)

- Passage de liquide d'ascite vers la cavité pleurale par les puits de Ranvier

• Une atteinte de la plèvre par agression

inflammatoire, infectieuse ou néoplasique

Liquide pauvre en protéines = Transsudat Liquide pauvre en Protéines = Exsudat 8

Lorsque l’épanchement pleural est unilatéral, il est le plus souvent dû à une pathologie pleurale ou pulmonaire, à la différence d’un épanchement bilatéral qui sera plutôt le témoin d’une atteinte systémique.

3. LIQUIDE SYNOVIAL : [11]

Le liquide synovial (appelé aussi liquide articulaire) remplit l’espace des cavités articulaires. Il est fabriqué par les cellules synoviales à partir d’un filtrat de plasma. Son rôle :

- Lubrifier l’articulation grâce au hyaluronate qui est responsable des propriétés visco-élastiques du liquide synovial.

- Source de nutrition (glucose, oxygène) pour le cartilage articulaire (qui n’est pas vascularisé).

- Elimination des déchets métaboliques (lactate, gaz carbonique) provenant du cartilage articulaire.

MATERIELS ET

METHODES

I. MATERIELS : ECHANTILLONS ET

TECHNIQUES DE PONCTION

1. LCR :

En l'absence de contre-indication : [12] o Hypertension intracrânienne. o Infection locale au site de ponction.

o Trouble majeur de la coagulation sanguine (Thrombocytes < 50 G/l, INR ≥1,5, Temps de saignement > 7 min, (ni l’acide acétylsalicylique, ni le clopidogrel, ni leur combinaison ne contre-indiquent une PL).

o Refus explicite ou présumé par le patient.

La ponction lombaire est réalisée en respectant une asepsie de type chirurgical [13], Elle doit se situer entre la 4ème et la 5ème vertèbre lombaire, ou entre la 3ème et la 4ème. [14]

Le LCR est prélevé dans 3 à 4 tubes stériles, numérotés de façon séquentielle selon l’ordre de prélèvement (chacun avec 1 ml = 20 gouttes), Le dernier tube prélevé est utilisé pour l’examen hématologique, parce qu’il est moins susceptible d’être contaminé par les éléments cellulaires issus du traumatisme de la ponction. [15]

Figure 2: PONCTION LOMBAIRE [16]

Le LCR doit être acheminé le plus rapidement possible en main propre au laboratoire, et son analyse doit être réalisée idéalement, dans les instants qui suivent le prélèvement. Ceci tant pour l’urgence du résultat que pour la détérioration rapide de la qualité du spécimen. Si un délai est inévitable, l’échantillon de LCR doit être conservé à 4 °C. [17]

Note : Après deux heures de conservation à la température de la pièce, les leucocytes

s’abaissent de 40 %. Après deux heures de conservation à 4 °C, les leucocytes s’abaissent de 15 %. [18]

2. LIQUIDE D’ASCITE :

Le prélèvement de liquide se fait au lit du malade après désinfection locale au niveau de la fosse iliaque gauche, au niveau du tiers externe de la ligne entre l’ombilic et l’épine iliaque antéro-supérieure. On peut l’effectuer sous contrôle échographique. Le liquide s’écoule naturellement, on le recueille traditionnellement sur 3 flacons dont 1 avec anticoagulant (EDTA ou citrate) destiné à l’examen hématologique.

Les contre-indications de cette ponction sont exceptionnelles : fibrinolyse primaire ou coagulation intravasculaire disséminée avec hémorragie évidente. Les troubles de la coagulation habituellement présents chez le patient cirrhotique ne sont pas une contre-indication. [19]

L’analyse hématologique doit être effectuée moins d’une heure après le prélèvement [17]. Le spécimen doit être réfrigéré si l’analyse est retardée. [15]

Figure 3: REPERES DU SITE DE PONCTION D’ASCITE CHEZ UN CIRRHOTIQUE EN DECUBITUS DORSAL [20]

4. LIQUIDE PLEURAL :

Obtenu par ponction pleurale qui se fait après désinfection et anesthésie locale. L’aiguille est introduite perpendiculairement à la peau dans un espace intercostal, en pleine matité, et en passant par le bord supérieur de la côte inférieure pour ne pas piquer l'artère intercostale, en arrière à 10 cm de la ligne médiane.

Les contre-indications de cette ponction sont similaires à celles décrites pour la ponction d’ascite.

Figure 4: TECHNIQUE DE PONCTION PLEURALE [21]

Pour l’examen hématologique de ce liquide, l’échantillon est prélevé dans un tube contenant, de préférence, l’anticoagulant EDTA. L’analyse doit s’effectuée moins d’une heure après le prélèvement [17]. Le spécimen doit être réfrigéré si l’analyse est retardée [15].

5. LIQUIDE SYNOVIAL :

La ponction synoviale est réalisée par un opérateur entraîné, à l'aide d'une aiguille fine avec asepsie rigoureuse. Elle se fait généralement « à l’aveugle » en utilisant des points de repères anatomiques. L’échographie est utile pour les articulations profondes comme la hanche ou les articulations dites « difficiles » comme le tarse.

Les contre-indications sont l’Infection ou dermatose au site de ponction, une Bactériémie suspectée, trouble de la coagulation (coagulopathie, traitement anticoagulant, thrombocytes < 50 G/l), matériel prothétique (ostéosynthèse, prothèse), instabilité majeure de l’articulation (arthropathie neurogène, rupture ligamentaire), ou suspicion de fracture intra articulaire. [22]

Le recueil se fait sur des tubes contenant un anticoagulant, le plus utilisé est l’EDTA, mais il peut introduire des artefacts si les cristaux sont présents et peut déformer la morphologie

cellulaire, en particulier si le transport est retardé. Pour ces raisons, certains auteurs favorisent l’utilisation de l'héparine sodique comme anticoagulant de choix.

L’analyse doit s’effectuée moins d’une heure après le prélèvement [17]. Le spécimen doit être réfrigéré si l’analyse est retardée [15].

II. METHODES :

1. EXAMEN MACROSCOPIQUE : [23]

Correspond à l’analyse à l'œil nu de l’échantillon pour déterminer sa couleur, sa limpidité, sa coagulabilité, et sa viscosité.

L’aspect macroscopique peut aider à distinguer un exsudat d’un transsudat et donc utile à l’orientation diagnostique mais, à lui seul, ce critère n’est pas suffisamment performant.

Si un exsudat (confirmé par des paramètres cellulaires et/ou biochimique) est clair, il faut penser à une infection tuberculeuse ou une infection virale.

2. COMPTAGE CELLULAIRE : [24]

A. Principe du comptage cellulaire :

Le comptage ou numération cellulaire est la détermination du nombre de cellules contenues dans un volume précis d’un milieu liquide. On exprime le résultat en concentration cellulaire, c’est à dire en unité d’événements par unité de volume (par ex. nombre de cellules / ml).

Le comptage cellulaire s’effectue toujours sur une partie de l’échantillon et jamais sur sa totalité. Pour cela un échantillon défini de la solution totale est prélevé puis le nombre d’événements présents est compté. Le nombre obtenu est extrapolé au volume total pour estimer la concentration.

La numération cellulaire peut se faire soit par un comptage manuel au microscope, soit par un comptage automatisé avec des équipements dédiés. Selon la nature de l’échantillon, le principe est identique mais avec les compteurs automatisés des optimisations sont nécessaires pour éviter de sur ou sous-exprimer la concentration cellulaire.

B. le comptage manuel :

Le comptage manuel est le comptage le plus répandu dans les laboratoires, car il est rapide et très facile à mettre en œuvre (nécessite peu de matériel). C’est l’utilisateur lui-même qui choisit de compter ou non certaines cellules.

Pour ce comptage manuel, l’expérimentateur a besoin :

o D’un hématimètre ou cellule de comptage, il s’agit d’une lame porte objet, généralement en verre épais, dans laquelle est creusée une chambre de comptage de volume connu et comportant un quadrillage.

o D’une pipette. o D’un microscope.

o D’un tampon PBS pour les dilutions.

o D’une solution à compter (liquide de ponction).

Les lames utilisées pour le comptage manuel sont des lames spécifiques, en verre ou en plastique. Généralement, les lames en verre sont les plus utilisées. Ces lames sont en forme de porte-objet de 30 x 70 mm et de 4 mm d’épaisseur comme montré ci-dessous :

Figure 5: CELLULE DE MALASSEZ EN VERRE

La partie centrale possède un quadrillage différent selon le type de lame : Malassez, Nageotte, Neubauer, Bürker, Fuchs Rosenthal, Thoma, ou Bürker- Türk.

La lame la plus répandue en laboratoire est la lame de Malassez. Elle est gravée de 100 rectangles, eux-mêmes recoupés en 25 rectangles qui sont subdivisés en 20 petits carrés pour

faciliter le comptage. Le volume correspondant au quadrillage total est égal à 1 μl.

Figure 6: SCHEMA D’UNE LAME EN VERRE TYPE MALASSEZ AVEC SON QUADRILLAGE

Pour réaliser le comptage, un volume d’échantillon de la solution à compter (en général entre 10 et 20 µl) est déposé entre la lame et la lamelle au niveau du quadrillage (étalement de l’échantillon par capillarité entre la lame et la lamelle). En fonction de la confluence des cellules dans la suspension cellulaire, il est recommandé de faire une dilution avant le comptage. Dans ce cas, il faut tenir compte du facteur de dilution dans le calcul de la concentration totale de la suspension cellulaire.

Une fois la lame chargée, elle est observée sous le microscope. Après la mise au point, on compte le nombre d’événements sur au moins 4 ou 5 carrés du quadrillage. Après le comptage, on calcul la concentration cellulaire dans l’échantillon par la formule suivante :

Concentration (cel/ml) = Quantité de cellules / Volume (en ml)

Formule de calcul modifiée appliquée aux lames de comptage :

Concentration = (Quantité de cellules x 10 000) / (Quantité de cadres x

dilution)

Comme dans toute expérience, il est important de faire des réplicats.

Après le comptage il est essentiel de nettoyer les lames en verre pour éviter toutes contaminations croisées. Pour pallier ce risque de contamination, des lames en plastique à usage unique ont été développées : les hémocytomètres C-Chip™, Ces lames en plastique comportent 2 chambres de dépôt avec chacune 2 quadrillages permettant d’effectuer 2 comptages à partir d’une seule lame.

Figure 7: REPRESENTATION D’UNE LAME C-CHIP

Il est possible de vérifier la viabilité de la suspension cellulaire, aussi bien avec une lame en verre réutilisable ou en plastique à usage unique. Pour cela, on utilise une solution commerciale de bleu de trypan de 0,4%. Ce dernier, aussi appelé bleu diamine ou bleu de Niagara est un colorant vital dérivé de la di- toluidine (C14H16N2) qui a été synthétisé pour la première fois par le chimiste allemand Paul Ehrlich en 1904. Ce produit est utilisé en laboratoire pour colorer les cellules mortes en bleu foncé, car il pénètre dans le cytoplasme des cellules mortes dont la membrane plasmique est devenue perméable. L’ajout du bleu de trypan dans une solution marque uniquement les cellules mortes, les cellules vivantes restent intactes. Ainsi, il est possible de déterminer dans une suspension cellulaire la proportion de cellules vivantes et mortes et donc d’en déduire la viabilité cellulaire.

C. le comptage automatisé :

Basé sur l’utilisation des systèmes plus ou moins complexes et plus ou moins précis selon les modèles, qui fonctionnent tous sur un même principe : un échantillon de volume connu, une détection des cellules et un calcul de la concentration finale.

 Compteur de cellules portatif :

Ce type de compteur ressemble à une pipette et il est basé sur le principe Coulter.

.

Figure 8: EXEMPLE DE COMPTEUR PORTATIF

Le principe Coulter a été développé par Wallace H. Coulter en 1940 : il permet de compter et déterminer la taille des particules en se basant sur la mesure d’impédance. Cette technologie a principalement été créée pour compter rapidement des cellules sanguines en mesurant les modifications de conductance électrique (impédance) lors du passage de ces cellules en suspension dans un fluide conducteur à travers un petit orifice.

Avec ce compteur de cellules, l’utilisateur installe à l’extrémité de la pipette une sonde, puis il va pipeter directement 50 µl de la suspension cellulaire préalablement diluée si nécessaire. La suspension entre dans la pipette pour être envoyée dans un micro-capillaire situé au niveau de la sonde qui détecte chaque cellule via le principe Coulter et détermine la concentration cellulaire.

Le résultat obtenu est alors affiché sur l’écran de la sonde avec un histogramme montrant la distribution des tailles des cellules.

Ce compteur automatisé est pratique car petit, rapide et portatif. Cependant, il reste très limité en termes d’application, et surtout, il est impossible de vérifier la fiabilité des résultats obtenus. En effet, l’utilisateur n’a aucun moyen de vérifier si les cellules comptées ne sont pas des débris ou des « clusters » de cellules comptés comme une seule cellule. Il n’a également aucun moyen de réajuster le comptage ou recompter le même échantillon à la différence de certains compteurs automatisés.

 Autres compteurs automatisés :

Des compteurs automatisés disponibles sur le marché utilisent une lecture de cellules en bleu de trypan, ils possèdent une caméra CCD, un logiciel de traitement des résultats et certains sont équipés d’un portoir de tubes (comptage haut-débit).

L’échantillon est aspiré ainsi que le bleu de trypan, puis le mélange est injecté dans le système fluidique et passe à travers une cellule qui permet de capter une image de la suspension cellulaire. L’acquisition porte sur une centaine d’images qui déterminent le nombre de cellules, la concentration et la viabilité de l’échantillon. Les données obtenues sont des résultats numériques, des histogrammes de distribution des tailles de cellules et des images des cellules.

Le fait de visualiser les cellules post-comptage permet de s’assurer que le dispositif n’a pas compté de faux positifs ou des débris cellulaires. En plus des données quantitatives, l’utilisateur a accès à des données qualitatives, essentielles et complémentaires pour la suite de ses expériences.

Pour ces compteurs, le volume d’échantillon utilisé peut être important (environ 500 µl) auquel il faut ajouter le volume de tampon et le volume de nettoyage du système fluidique qui est utilisé pour écarter tout risque de contamination croisée. Ces dispositifs sont donc gourmands, d’autant plus que le volume utilisé d’une suspension cellulaire n’est pas réutilisable après le comptage.

Figure 9: COMPTEUR AUTOMATISE CELLOMETER AUTO1000

RESULTATS ET

ANALYSES

.

I. ASPECTS MACROSCOPIQUES :

1. LCR :

L'aspect normal LCR est typiquement << eau de roche >>, cet aspect diffère en fonction de la pathologie sous-jacente, il peut être :

o Trouble : cette modification est provoquée par l'hyper leucocytose, ce trouble apparaissant dès la présence de 20 globules blancs par millimètre cube [25], et tous les degrés existent depuis l'aspect opalescent jusqu'au classique aspect << eau de riz >>, évocateur d'une méningite due à des germes pyogènes [26].

o Clair : en cas de méningite : décapitée, débutante, virale, parasitaire, fongique, à leptospire ou à bactérie à tropisme intracellulaire (Mycobacterium tuberculosis, Listéria, mycoplasme, Rickettsia, chlamydia, treponema pallidum…) [27].

o Hémorragique : lié à un accident de prélèvement, une hémorragie méningée ou une infection neuro-méningée.

LCR en cas d’hémorragie méningée

LCR à ponction traumatique

liquide rouge/rosé dans 3 tubes

liquide de moins en moins

sanglant

liquide incoagulable

liquide coagulable

surnageant xanthochromique*

surnageant clair

Tableau 1: ORIENTATION DEVANT LCR HEMORRAGIQUE [28]

*Les produits de dégradation de l’Hb (oxyhémoglobine=rougeâtre-rosé métabolisée en bilirubine=jaune) donnent au plus tôt 9-15 heures après l’hémorragie une coloration jaunâtre, xanthochrome du LCR centrifugé. [28]

2. LIQUIDE D’ASCITE :

L’aspect du liquide d’ascite oriente sur l’origine transsudative ou exsudative du liquide.

o Les transsudats correspondent à des liquides clairs, opalescents ou citrins.

o Les exsudats sont troubles, rougeâtres, purulents, hémorragiques (carcinose péritonéale), lactescents (ascite chyleuse), ce dernier aspect est dû à une forte concentration en triglycérides ou cholestérol et une formule cellulaire lymphocytaire du liquide (> 70 %), ou d’aspect visqueux et épais en cas de la maladie gélatineuse du péritoine. [9] [31]

3. LIQUIDE PLEURAL :

Macroscopiquement, le liquide pleural peut déjà informer sur l’origine de l’épanchement. Un liquide trouble évoque une infection, un aspect blanc laiteux un chylothorax, un liquide uniformément sanglant un hémothorax. Un épanchement sérohématique oriente vers une cause néoplasique. En revanche, un liquide jaune citrin et clair ne préjuge pas de l’origine [32].

4. LIQUIDE SYNOVIAL :

Un liquide synovial normal est transparent, clair, très visqueux et incoagulable. Plus le liquide est inflammatoire, moins il est visqueux, la viscosité étant dépendante de la concentration et du degré de polymérisation de l'acide hyaluronique sécrété par les cellules synoviales. Les leucocytes présents dans l’articulation sécrètent des enzymes qui dépolymérisent l’acide hyaluronique [11].

L'aspect macroscopique se modifie en fonction de la pathologie : jaune paille ou jaune citrin dans le cas des arthropathies dégénératives, trouble et purulent dans les arthrites septiques. Les hémarthroses donnent des liquides synoviaux sanglants, non coagulables. On pourra chercher en outre des petites particules blanches, « en grains de riz », dans la polyarthrite rhumatoïde qui correspondent à des « agrégats » de fibrine et de débris synoviaux [33].

II. ASPECTS HEMATO- CYTOLOGIQUES :

1. LCR NORMAL : [29]

Un LCR normal a une cellularité caractérisée par : - Moins de 5 leucocytes/mm3 chez l’adulte avec :

o 80% de lymphocytes.

o 15 % de monocytes : pliés, avec un noyau en forme de haricot et une quantité modérée de cytoplasme.

o Absence de polynucléaires. o Absence de plasmocytes. - Absence d’hématies.

Figure 10: LYMPHOCYTE ET MONOCYTE D’UN LCR NORMAL APRES COLORATION DE WRIGHT-GIEMSA [30]

2. LCR PATHOLOGIQUE :

A. les cellules inflammatoires :

Les cellules inflammatoires telles que les macrophages, les plasmocytes et les polynucléaires constituent une anomalie dans le LCR. Ils peuvent accompagner des néoplasies, mais sont également observées dans des états non néoplasiques.

a) Les macrophages : [30] [34]

Ils possèdent un cytoplasme vacuolé abondant qui contient parfois des cellules, des organismes ou des pigments ingérés. Leur présence dans le LCR Peut s’associer avec :

o Méningite

o Hémorragie méningée o AVCI

o Sclérose en plaque

Figure 11: MACROPHAGES DANS LE LCR AU COURS D’UNE HEMORRAGIE MENINGEE, APRES COLORATION DE WRIGHT-GIEMSA [30]

b)

Les plasmocytes : [30]

Leur présence dans LCR peut s’associer avec :

o Méningite virale (EX : entérovirus, virus HIV) o Cysticercose

o Sclérose en plaque o Tuberculose

o Maladie de Lyme o Syphilis

Figure 12: PLASMOCYTES DANS LE LCR AU COURS DE LA MALADIE DE LYME [30]

c) Les polynucléaires neutrophiles :

Ils sont de découverte normale s'il y a contamination par le sang périphérique en cas de PL traumatique, mais de nombreux neutrophiles non accompagnés d’une augmentation proportionnelle du nombre de globules rouges accroit la possibilité de méningite aiguë bactérienne [30].

Figure 13: PNNs AVEC BACTERIES DANS LE LCR AU COURS D’UNE MENINGITE AIGUE BACTERIENNE A PNEUMOCOQUE (COLORATION

WRIGHT-GIEMSA) [30]

Chez les patients avec le SIDA, de nombreux neutrophiles suggèrent fortement une radiculopathie à cytomégalovirus (CMV). Cependant, les Inclusions cytopathiques virales, ne sont pas vues. Le diagnostic de radiculopathie à CMV dans ce cas peut être confirmé par culture virale [35].

Les PNNs dans le LCR se retrouvent également en cas de : o Méningite virale au stade précoce.

o Méningoencéphalite à toxoplasma.

o Crise convulsive épileptique récente (<12 heures) [36].

o Au cours de l'administration intrathécale de chimiothérapie ou des antituberculeux [37].

Tableau 2: ORIENTATION DIAGNOSTIQUE DEVANT L’ASPECT ET LA CELLULARITE DU LCR DANS LA PATHOLOGIE INFECTIEUSE [38]

d) les polynucléaire éosinophiles : [30]

Les éosinophiles sont absents dans le LCR ; quand présents, surtout en grand nombre, ils suggèrent une infection parasitaire, en particulier au Taenia solium (cysticercose) ou à Angiostrongylus cantonensis (méningite angiostrongylienne à éosinophiles). Ils se retrouvent également en cas de :

o Méningite à Coccidioides immitis.

o La fièvre pourprée des montagnes Rocheuses provoquée par Rickettsia rickettsii. o Shunt venticulo-péritonéal.

Paramètres LCR normal LCR purulent LCR lymphocytaire LCR panaché

Aspect clair trouble clair clair

Leucocytes <5 >10 >10 >10

Eléments PNNs lymphocytes 50% lymphocytes

50 % PNNs

Orientations normal Méningite bactérienne (à

méningocoque, pneumocoque, streptocoque B, Haemophilus, klebsielle, ou à E. Coli) Méningite virale Méningite à leptospire Méningite tuberculeuse (chlorures diminués) Méningite à Listeria, mycoplasme, chlamydia, brucella, rickettsie, ou à tréponème Méningite à Listeria Méningite bactérienne ou virale au début Abcès cérébral 30

Figure 14: EOSINOPHILES (flèches) DANS LE LCR APRES COLORATION WRIGHT-GIEMSA [30]

B. Les globules rouges :

Se retrouvent dans le LCR en cas d’une : o Hémorragie méningée.

o Ponction traumatique.

Habituellement, la numération de globules rouges est plus élevée pour le premier tube que pour le quatrième dans le cas d’une ponction traumatique, et approximativement égale dans le cas d’une hémorragie méningée, et dans ce dernier cas les globules rouges sont habituellement vieillis et d’aspect crénelé. [39]

o Inflammation hémorragique dans le cas par exemple d’encéphalite herpétique dans laquelle, le LCR est souvent faiblement hémorragique (10 à 1 000 GR) [40].

C. Les blastes :

Le LCR peut être le siège d’une atteinte tumorale au cours des hémopathies aiguës, au diagnostic initial ou lors de leur évolution.

Au diagnostic de leucémie aiguë lymphoblastique (LAL), un envahissement méningé est identifié dans 3 à 5 % des cas chez l’enfant et 5 à 10 % des cas chez l’adulte avec une plus grande fréquence au cours des LAL T et des formes hyperleucocytaires [41] [42].

Dans les leucémies aiguës myéloblastiques (LAM), l’atteinte représente 10 % des cas chez l’enfant et moins de 5 % des cas chez l’adulte, et est plus fréquemment identifiée dans les LAM4 (FAB), LAM5(FAB) et les formes hyperleucocytaires [43] [44].

La cytologie du LCR, qui permet d’identifier la présence de blastes au microscope, reste le gold standard dans la détection des envahissements neuroméningés, et ceci malgré les progrès de l’imagerie (IRM), et le développement de techniques non cytologiques telles que l’immmunophénotypage par cytométrie en flux, l’hybridation fluorescente in situ, la PCR, ou la recherche de marqueurs protéomiques [45] [46].

Avant les années 1980, le diagnostic d’infiltration blastique neuro-méningée dans les hémopathies aiguës était affirmé en morphologie après identification de blastes dans le LCR comportant en valeur absolue plus de 10 leucocytes/mm3 [47]. En 1985, lors du Rome leukemia workshop, la valeur absolue des leucocytes a été abaissée à 5/mm3 [48]. Puis au cours des années 1990, l’équipe du St Jude Children’s Hospital observa un risque élevé de rechute méningée chez des enfants dont le LCR était blastique avec une valeur absolue des leucocytes inférieure à 5/mm3 [41]. Une révision de la définition de l’atteinte méningée fut alors réalisée, tenant compte de la proportion des leucocytes et la classification du Central nervous system (CNS) status (CNS status) fut adoptée en 1993 lors du National cancer institute workshop.

Tableau 3: CLASSIFICATION CNS STATUS SELON NCI WORKSHOP 1993 [49]

Dès 1996, les ponctions lombaires traumatiques, contaminées par des éléments du sang périphérique et notamment comportant plus de 10 hématies par mm3 et des blastes étaient considérées comme « contaminées » [50, 51]. En 2003, la description dans plusieurs études cliniques de ponctions traumatiques (traumatic lumbar puncture : TLP) avec plus de 10 hématies par mm3 infiltrées ou non par des blastes (respectivement TLP + et TLP -), a permis de faire à nouveau évoluer le CNS status. [52]

Tableau 4: CLASSIFICATION CNS STATUS UTILISEE DEPUIS 2003 [49]

L’utilisation de ce CNS status a pour but de permettre une meilleure comparaison entre les études cliniques et d’harmoniser les attitudes thérapeutiques lors des atteintes méningées. Elle est basée sur le résultat de la numération des leucocytes et des hématies à l’hématimètre,