Hématopoïèse
Pr Lydie Da Costa
Service d’Hématologie Biologique Hôpital Robert Debré
lydie.dacosta@aphp.fr
Plan
• Introduction : lien entre les cellules du sang et la moelle
• Ontogenèse
• Les différents compartiments médullaires
Introduction
Lien entre les cellules du sang et la moelle osseuse
Les cellules du sang
Erythrocytes Plaquettes
Monocytes
neutrophile
Polynucléaires
éosinophile basophileCellule T Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes
Immunité cellulaire Immunité humoraleDéfense de l ’organisme, surveillance immunitaire
(précurseur des macrophages) Défense de l’organisme (bactéries)
Défense de l’organisme (Parasites, Allergies)
Inflammation et allergie
Coagulation
Véhiculent l’oxygène
Les cellules du sang
Erythrocytes Plaquettes
Monocyte
neutrophile
Polynucléaires
éosinophile basophileCellule T Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes
2 jours (sang)
6-8 heures (sang)
< 3 jours (tissus) 8-12 heures (sang)
< 10 jours (tissus)
?
8-10 jours
120 jours Fonctions hétérogènes:
durées de vie hétérogènes exemple: fonction mémoire durée de vie = années
Les cellules du sang
Erythrocytes Plaquettes
Monocyte
neutrophile
Polynucléaires
éosinophile basophileCellule T Cellule B
Natural Killer
Lymphocytes
0,1 à 1 .109/L 1,5 à 7.109/L
0,05 à 0,5.109/L
0,01 à 0,05.109/L
à 450.10150 9/L
1,5 à 4.109/L
H: 4,3 à 5,8.1012/L F: 4 à 5,2.1012/L
Morphologies différentes
Fonctions différentes
Durées de vie et séjours vasculaires
différents Quantités
différentes
Un mécanisme physiologique doit permettre de produire l’ensemble des cellules sanguines : cela implique:
- une capacité de prolifération et de renouvellement (quantitatif) - une capacité de diversification (qualitatif = différenciation) - une capacité de régulation : équilibre/homéostasie
= HEMATOPOïESE
Répartitions différentes Cellules matures
incapables de se
renouveler
Hématopoïèse
Ensemble des mécanismes qui assurent la production constante et régulée des différentes cellules sanguines
Production constante : Nbre Durée de vie Production/j globules rouges: 20.1012 120 j 200.109 PN Neutrophiles 0,5.1012 24 h 50.109
Plaquettes 1,0.1012 7 j 100.109
Production régulée : - facteurs de croissance, microenvironnement
- existence d’un compartiment très minoritaire de cellules souches hématopoïétiques capables de générer la totalité des éléments du sang.
Ontogenèse
= Etude de la croissance et le développement d’un individu (ou d’un tissu)
depuis la fécondation de l’œuf jusqu’à l’âge adulte
Ontogenèse
• Deux vagues successives de production de CSH :
– Hématopoïèse primitive dans le sac Vitellin (site extra-embryonnaire) à J8
→CSH
– Hématopoïèse définitive dans l’AGM (site intra-embryonnaire) - Les cellules endothéliales hémogéniques de l’endothélium ventral de l’aorte donnent naissance aux CSH de l’AGM → CSH qui colonisent ensuite les organes hématopoïétiques (foie, rate, thymus)
AGM= Aorte-gonado-mesonephros (aorte, ébauches des crêtes génitales et ébauche du rein)
CSH dans l’AGM de différentes espèces de vertébrés au stade de 35 somites
Le placenta : un autre site de production de CSH embryonnaires
Succession de territoires hématopoïétiques au cours de l’ontogenèse
Sac vitellin
7.5 J 10.5 J 12.5 J 15.5 J naissance
AGM
Placenta
Foie foetal
Moelle osseuse
Artère vitelline
Veine vitelline Artère ombilicale
Veine ombilicale
Production de CSH
Expansion des CSH
Résidence des CSH
Les différents compartiments
médullaires
Les compartiments hématopoïétiques
4 compartiments :
Les Cellules souches hématopoïétiques (CSH)
Autorenouvellement et multipotence
Les progéniteurs
Cellules engagées dans un lignage cellulaire
Les précurseurs
Cellules qui se divisent et qui maturent
Les cellules matures
Cellules fonctionnelles qui passent dans le sang
Différenciation Multipotence
Cellule souche
Progéniteurs déterminés Auto-renouvellement
Concept de cellules souches hématopoïétiques
engagement
Les 4 compartiments de cellules hématopoïétiques
Cellule souche multipotente
Progéniteur myéloïde (CFU-GEMM) Progéniteur lymphoïde
BFU-e/ MK
BFU-E
CFU-E
CFU-MK
CFU-GM
CFU-M CFU-G CFU-Eo CFU-bas
érythrocyte plaquette
macrophage Cell. dendritique monoblaste
neutrophile éosinophile basophile Cellule T Cellule B NK érythroblaste
mégacaryocyte
CFU-B CFU-T
autorenouvellement
MATURATION DIFFERENCIATION PROLIFERATION
Monocyte
tissussang
myéloblastes promyélocytes
myélocytes
métamyélocytes
plasmocyte
Modèle classique de l’hématopoïèse humaine adulte
Modèle revisité de l’hématopoïèse humaine adulte (Notta et al., 2016)
Caractéristiques des CSH
• Cellules peu nombreuses (0.001% des cellules de la moelle)
• Cellules indifférenciées
• Absence de marqueur spécifique
• Non reconnaissables morphologiquement
• En majorité quiescentes (G
0)
• Engagement dans une voie de différenciation par division asymétrique
• Deux propriétés les définissent : – Autorenouvellement
– multipotence
• Mise en évidence :
– greffe de moelle d’un donneur syngénique à des souris irradiées
Till et Mc Culloch (1961)
Chaque colonie est issue d’une seule cellule de la MO appelée CFU-Spleen – Pathologie humaine (cas de LMC)
translocation chromosomique t(9;22) retrouvée dans : - érythroblastes et mégacaryocytes - granuleux et macrophages
- lymphocytes B et T
l’anomalie clonale acquise est retrouvée dans toutes les cellules du sang
il existait donc une cellule multipotente (CSH) qui a subi le réarrangement chromosomique et l’a transmis à toutes les cellules hématopoïétiques.
• Localisation :
– dans le microenvironnement médullaire – Circulation transitoire dans le sang
En pratique : identification des cellules souches humaines
Marqueurs de lignages chez l’homme (Lin) - CD2 (lin. T et NK)
- CD3 (lin. T)
- CD11b (lin. granulo. et monocytaire) - CD14 (lin. monocytaire)
- CD15 (lin. neutro et eosino) - CD 16 (lin. NK et granulo.) - CD19 (lin. B)
- CD56 (lin. NK)
- CD235a (GPA, lin. érythroïde)
Les Progéniteurs
• 0,01-1% des cellules de la moelle (0,01% pour les Prog Immatures à 0,5-1% pour les Prog matures)
• Descendants des CS multipotentes, continuum
• PERTE des propriétés d’autorenouvellement et de multipotentialité
• CAPACITÉ DE PROLIFÉRATION ET DE DIFFÉRENCIATION
• Dépendance aux cytokines
• Capacité à former des colonies de cellules différenciées
• Existent des progéniteurs multipotents (donnent naissance à plusieurs lignées mais déjà engagés), Bipotentes (deux lignées, ex MEP) et monopotent (BFU-e immature)
• Non reconnaissables morphologiquement au microscope mais possiblement sur les colonies (tests clonogéniques) et grâce des marqueurs Ag de Surface
Cultures à long terme myéloïde ou lymphoïde (LTC-IC= Long Term Culture Initiating Cell)
Tests clonogéniques à court terme (CFC)
Progéniteurs matures Progéniteurs immatures
Cellules Souches Hématopoïétiques
Cellules matures
Comment analyser les CSH, progéniteurs, précurseurs et cellules matures?
CD34 CD38
Test in vivo dans les souris NOD-SCID
Cellules souches
hématopoïétiques humaines
Myélogramme/biopsie ostéomédullaire (BOM Précurseurs
Quantifiables sur un automate d’hématologie et identifiables au microscope
BFU-E CFU-Méga
CFU-GM CFU-E
Mixtes
Photos CHU Tours Hématologie http://www.med.univ-tours.fr
Les précurseurs médullaires
• Multiplication et maturation terminale de l’hématopoïèse
• Reconnaissables morphologiquement (Cellules analysées et comptées lors d’une analyse microscopique d’un frottis de myélogramme) et par des Ag de surface, spécifiques de lignées : Glycophorine A pour la
lignée érythroïde
• Fin du processus de maturation, cellules matures (réticulocytes) quittent
la moelle osseuse (diapédèse) vers la circulation sanguine ( GR en
24-48h)
La lignée érythroblastique
PROER
Proérythroblaste
ERB
Érythroblaste basophile
ERP
Érythroblaste
polychromatophile
ERA Érythroblaste acidophile
La lignée mégacaryocytaire
MB
Myéloblaste
PML
Promyélocyte
MLN
Myélocyte neutrophile
MMLN
Métamyélocyte
PN Polynucléaire neutrophile
La lignée granuleuse neutrophile
Cultures à long terme myéloïde ou lymphoïde (LTC-IC= Long Term Culture Initiating Cell)
Tests clonogéniques à court terme (CFC)
Progéniteurs matures Progéniteurs immatures
Cellules Souches Hématopoïétiques
Cellules matures
Comment analyser les CSH, progéniteurs, précurseurs et cellules matures?
CD34 CD38
Test in vivo dans les souris NOD-SCID
Cellules souches
hématopoïétiques humaines
Myélogramme/biopsie ostéomédullaire (BOM Précurseurs
Quantifiables sur un automate d’hématologie et identifiables au microscope