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Végétalisation du corps lipidique de S. cerevisiae pour l'étude structurale de protéines intégrales et la production de biomasse lipidique

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Academic year: 2021

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Texte intégral

(1)

HAL Id: hal-02757358

https://hal.inrae.fr/hal-02757358

Submitted on 4 Jun 2020

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Végétalisation du corps lipidique de S. cerevisiae pour l’étude structurale de protéines intégrales et la

production de biomasse lipidique

Jean-David Vindigni, Zoi Erpapazoglou, Yann Gohon, Pierre Briozzo, Franck Wien, Thierry Chardot, Marine Froissard

To cite this version:

Jean-David Vindigni, Zoi Erpapazoglou, Yann Gohon, Pierre Briozzo, Franck Wien, et al.. Végétalisa- tion du corps lipidique de S. cerevisiae pour l’étude structurale de protéines intégrales et la production de biomasse lipidique. 9. colloque Levures, Modèles et Outils, Aug 2010, Strasbourg, France. 2010.

�hal-02757358�

(2)

L’expression des oléosines favorise une accumulation de lipides dans la levure

Analyse du contenu en lipides des cellules

analyse par chromatographie en phase gazeuse (CPG)

CONCLUSION

L’analyse par CCM permet de visualiser une accumulation de triacylglycérol (TAG) et d’esters de stérols qui sont les espèces présentes dans les corps lipidiques.

Cette accumulation est confirmée par CPG qui permet de quantifier les esters d’acides gras de ces lipides neutres Stérols

Acides gras TAG Esters de stérols

Dépôts

Analyse par chromatographie sur couche mince (CCM)

A : témoin B: + AtClo1- GFP

migration

A B

Végétalisation du corps lipidique de S. cerevisiae pour l’étude structurale de protéines intégrales et la production de biomasse lipidique

Jean David Vindigni

1

, Zoi Erpapazoglou

2

, Yann Gohon

1

, Pierre Briozzo

1

, Franck Wien

3

, Thierry Chardot

1

, Marine Froissard

1

1

Equipe Dynamique et Structure des Corps Lipidiques, UMR 1318 IJPB, INRA AgroParisTech, 78 850 Thiverval-Grignon

2

Equipe Ubiquitine et Trafic Intracellulaire, UMR 7592 IJM, CNRS Université Paris Diderot, 75 252 Paris Cedex 13 et

3

Synchrotron SOLEIL, 91 192 Gif-sur-Yvette

Les oléosines sont adressées aux corps lipidiques de S. cerevisiae

Image de levures en microscopie photonique (lumière visible et épifluorescence) exprimant Erg6p-RFP (Delta(24)-stérol C-methyltransférase du corps lipidique) et AtClo1-GFP.

nomarski Erg6p-RFP AtClo1-GFP superposition

BY ERG6-RFP + pGAL-AtClo1-GFP

2µm

CONCLUSION

Les corps lipidiques, identifiables par la présence de Erg6-RFP, contiennent également la protéine AtClo1-GFP montrant ainsi l’adressage correct de la caléosine aux corps lipidiques.

Souche Acides gras

(µg/mg de matière sèche) pourcentage

Témoin 40,3

+ AtOle1-GFP 52,9 + 32 %

+ AtClo1-GFP 59.0 + 47 %

INTRODUCTION

RESULTATS

CONCLUSIONS ET PERSPECTIVES

Un exemple, le corps lipidique végétal et ses protéines associées

Constitution d’un corps lipidique

Matrice centrale de triacylglycérols (TAG) et d’esters de stérols

Monocouche de phospholipides (PL)

Protéines de surface (de 3 à plusieurs centaines selon le type cellulaire)

Schéma du corps lipidique végétal, l’oléosome [7]

Les oléosines, protéines intégrales de l’oléosome Structure prédite = organisation triblock :

Extrémités N-terminale et C-terminale variables, exposées à la surface et baignant dans le cytoplasme

Segment central hautement hydrophobe permettant l'ancrage dans la monocouche de phospholipides et/ou les TAG

Questions posées et objectifs

Rôle sur le remplissage en lipides

Rôle sur la structure et la stabilisation du corps lipidique

Données structurales sur les oléosines dans les corps lipidiques (environnement naturel)

Gènes candidats

Modification de la stabilité de l’oléosome

Oléosines Caléosines Stéroléosines

Amélioration de

l’extractibilité de l’huile

L’oléosine 1,

AtOle1 La caléosine,

AtClo1

Les oléosines induisent une augmentation du nombre et de la taille des corps lipidiques

Coupes de levures exprimant AtOle1-GFP et AtClo1-GFP (microscopie électronique à transmission)

CONCLUSION

Les corps lipidiques, structures rondes et blanches sur les photos, sont plus nombreux et plus gros dans les souches exprimant les oléosines que dans la souche de référence. On observe également des modifications morphologiques des cellules au niveau du réticulum endoplasmique et des mitochondries.

+ AtClo1-GFP

Témoin + AtOle1-GFP

Le corps lipidique : un organite complexe et dynamique

Au sein de la cellule, les lipides neutres (triacyglycérols et esters de stérols) sont stockés dans des organites de réserves, les corps lipidiques (CL). Ils sont présents, chez les eucaryotes supérieurs (mammifères, plantes) et aussi chez certains microorganismes (levures, bactéries) [1].

Les corps lipidiques sont visualisables au microscope photonique grâce à l’utilisation marqueurs spécifiques (colorants des lipides neutres ou détection d’une protéine résidente)

Corps lipidiques de graines d’A. thaliana colorées au Rouge Nile [2]

Corps lipidiques de cellules de foie colorées à l’ORO (rouge) [3]

2µm

Levure exprimant une protéine du corps lipidique étiquetée avec la RFP

2µm

Les corps lipidiques font l'objet d'un intérêt grandissant de la part Des biologistes

Le corps lipidique n’est pas un sac inerte mais un organite dynamique qui régule la métabolisme et la signalisation cellulaire

Des industriels

trituration : les huiles alimentaires et non alimentaires

(agrocarburants et chimie verte) sont extraites des corps lipidiques de graines

agroalimentaire, cosmétique et santé : les oléosines ont des propriétés de réduction de la tension de surface et peuvent être utilisées comme agents émulsifiants ou de vectorisation [6]

Du monde médical

Les corps lipidiques ont un rôle important dans des maladies dont la prévalence augmente (obésité, diabète) [4]

Les oléosines (d’arachide et de noisette), protéines associées au corps lipidiques de graines, étaient allergisantes [5].

Le corps lipidique : structure peu connue mais d’intérêt croissant

Les oléosines deviennent les protéines majoritaires du corps lipidique

CONCLUSION

Les oléosines, protéines intégrales et hautement hydrophobes, s’associent fortement aux corps lipidiques, modifiant ainsi leur composition protéique.

On observe également une modification du statut métabolique des lipides stockés (perte de la mobilisation au démarrage de la croissance cellulaire après starvation).

Les oléosines bloquent l’accès au corps lipidique

+ AtOle1 Témoin

BY ERG6-GFPBY-FAA4-GFP

Végétalisation du corps lipidique par les oléosines

AtOle1

Analyse des protéines par SDS PAGE après isolement

des corps lipidiques par ultracentrifugation Témoin = CL dynamique

• Échanges de protéines

• lipides métabolisables

+AtOle1 CL végétalisé inerte

• perte de protéines

• lipides non mobilisables

Les oléosines sont structurées en feuillets béta dans le corps lipidique

Les corps lipidiques purifiés sont analysés par dichroïsme circulaire utilisant le rayonnement synchrotron (SRCD) Spectre de dichroïsme circulaire

Estimation du contenu en structures secondaires

CONCLUSION

Nous avons obtenu un spectre de dichroïsme circulaire sur des corps lipidiques naturels .

Les protéines associées aux corps lipidiques, majoritairement AtOle1, sont essentiellement structurées en feuillets béta.

La végétalisation du corps lipidique de S. cerevisiae par les oléosines a permis

D’augmenter le stockage des lipides de réserves par la cellule qui est une conséquence de l’augmentation du nombre et de la taille des corps lipidique.

D’obtenir des corps lipidiques portant une oléosine végétale insérée biologiquement dans un environnement lipidique naturel permettant ainsi des analyses structurales de ces protéines très hydrophobes et peu manipulables.

BIBLIOGRAPHIE [1] Farese (2009). Cell. 139, 855. [2] Siloto et al. (2006). Plant Cell. 18, 1961. [3] www.fhcrc.org [4] Bostrom et al. (2007). Nat. Cell Biol. 9, 1286. [5] Pons et al.

(2002). Allergy. 57, 88. [6] Capuano et al. (2007). Biotechnol. Adv. 25, 203. [7] Frandsen et al. (2001) Physiol. Plant. 112, 301

Nous nous intéressons maintenant

Aux mécanismes qui sont mis en jeu lors de l’accumulation des lipides de réserves dans ces souches végétalisées (régulation des flux de carbones de réserves et/ou contrôle transcriptionnel des voies métaboliques).

A la structure d’autres protéines intégrales triblock des corps lipidiques issues de différents systèmes cellulaires (des protéines virales aux mammifères) pour déterminer une éventuelle convergence évolutive.

Références

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