Ability of Phytoseiulus longipes to control spider mite pests on tomato in European greenhouses.

HAL Id: hal-01137131

https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-01137131

HAL is a multi-disciplinary open access archive for the deposit and dissemination of sci-entific research documents, whether they are pub-lished or not. The documents may come from teaching and research institutions in France or abroad, or from public or private research centers.

L’archive ouverte pluridisciplinaire HAL, est destinée au dépôt et à la diffusion de documents scientifiques de niveau recherche, publiés ou non, émanant des établissements d’enseignement et de recherche français ou étrangers, des laboratoires publics ou privés.

Ability of Phytoseiulus longipes to control spider mite

pests on tomato in European greenhouses.

Maxime Ferrero, Serge Kreiter, Marie-Stéphane Tixier

To cite this version:

Maxime Ferrero, Serge Kreiter, Marie-Stéphane Tixier. Ability of Phytoseiulus longipes to control spider mite pests on tomato in European greenhouses.. 6. European Congress of Acarology, European Association of Acarologists (EURAAC). INT., Jul 2008, Montpellier, France. �hal-01137131�

Integrative Acarology  Integrative Acarology. Proceedings of the 6th European Congress  M. Bertrand, S. Kreiter, K.D. McCoy, A. Migeon, M. Navajas, M.‐S. Tixier, L. Vial (Eds.)  European Association of Acarolgists, 2008 

ABILITY OF PHYTOSEIULUS LONGIPES TO CONTROL SPIDER MITE

PESTS ON TOMATO IN EUROPEAN GREENHOUSES

M. Ferrero, S. Kreiter and M.-S. Tixier

Montpellier  SupAgro,  UMR  CBGP  1062,  bât  16,  laboratoire  d'Acarologie,  2  Place  Pierre  Viala  34060  Montpellier cedex 01, France 

Abstract 

Even  if  many  studies  dealt  with  the  biological  control  of  spider  mites  on  tomato  in  greenhouses,  no  efficient solution has still been found beyond chemicals to get rid of those phytophagous mites. Among  them, two species, Tetranychus evansi and T. urticae, can be considered as very serious pests, leading to  great damages in tomato crops in Southern Europe. Preliminary experiments showed that Phytoseiulus  longipes is a very promising predator of these two species. In the present study, life tables of a Chilean  strain of this predator have been calculated, at 25 °C, 80 ± 10 % RH and 16/ 8 (L/ D), in several prey/  plant conditions: P. longipes feeding on T. evansi on tomato, P. longipes feeding on T. urticae on tomato  and P. longipes feeding on T. urticae on bean. 88.9 % of the predators did not complete their immature  phase while feeding on T. evansi, and life tables could not be calculated. However, while feeding on T. 

urticae,  immature  survival  was  99.8  %  and  90.0  %  on  bean  and  tomato,  respectively.  Immature 

durations of P. longipes fed with T. urticae were not different, being 4.35 and 4.21 days, on bean and  tomato,  respectively.  The  intrinsic  rate  of  increase  (rm)  was  0.368  and  0.116  female/  female/  day,  on 

bean and tomato, respectively. Those results suggest that the Chilean strain of P. longipes would not be  able  to  control  neither  T.  evansi  nor  T.  urticae  in  tomato  crops.  However,  it  seems  able  to  eat  and  develop on T. urticae in other crops. Another strain of P. longipes, originating from Brazil, is currently  being studied and lead to very enthusiastic perspectives to control spider mites on tomato greenhouses,  both  T.  urticae  and  T.  evansi.  Furthermore,  experiments  are  being  conducted  to  try  to  explain  the  surprising differences in feeding habits and host plants between the two strains of this predaceous mite. 

Key‐words 

Introduction 

Although  many  predatory  mite  species  have  been  studied  to  control  tetranychids,  those  pests  still  cause  serious  damages  to  several  crops,  and  especially  to  tomato  in  greenhouses.  In  Southern  Europe,  the  main  problem  has  been  Tetranychus 

urticae  Koch  for  many  years  (Zhang  2003).  But 

since  the  early  nineties,  an  invasive  pest, 

Tetranychus evansi Baker & Pritchard, which seems 

to  be  originated  from  South  America  (Gutierrez  &  Etienne  1986)  spreads  through  Southern  Europe  (Ferragut  &  Escudero  1999;  Bolland  &  Vala  2000, 

Migeon 2005, Castagnoli 2006, Tsagkarakou 2007)  and  causes  severe  injuries,  especially  to  Spanish  tomato crops (Ferragut pers. comm.). 

In order to get rid of T. evansi, many methods have  been  experimented,  like  pesticides  (Blair  1989,  Mabeya et al. 2003), plant resistance development  (Maluf et al. 2001, Resende et al. 2002, Gonçalves 

et  al.  2006,  Resende  et  al.  2008), 

entomopathogenic fungi (Humber & Moraes 1981,  Wekesa  et  al.  2005,  2006,  2007)  and  several  predators  (Sarmento  et  al.  2004,  Ho  et  al.  2005,  Oliveira  et  al.  2005)  including  predatory  mites 

Montpellier ‐ 21‐25 July 2008    ₄₆₂ 

(Moraes & Lima 1983; Moraes & McMurtry 1985a;  Moraes  &  McMurtry  1985b;  Moraes  et  McMurtry  1986; Escudero et Ferragut 2005; Rosa et al. 2005,  Ferrero et al. 2007, Furtado et al. 2007, Koller et al.  2007). The only enthusiastic perspective up to now  has been pointed out by Furtado et al. (2006) and  Ferrero  et  al.  (2007),  with  the  discover  and  the  study  of  a  Brazilian  strain  of  Phytoseiulus  longipes  Evans  (named  P.  longipes  B  thereafter).  Following  those  studies,  this  type  I  predator  (McMurtry  &  Croft 1997), feeding preferentially on mites of the  subfamily  Tetranychinae,  seems  actually  to  be  specific  of  T.  evansi  (Furtado  et  al.  2007).  More  recently, a Chilean strain of this species (written P. 

longipes  C  thereafter)  has  been  found  (Ragusa 

pers.  comm.).  In  order  to  use  these  strains  in  biological  control  for  controlling  T.  evansi,  further  biological  studies  are  required.  This  paper aims  to  determine  the  life  history  of  P.  longipes  C  on  several plant substrates/ prey conditions. 

Material and Methods 

Species and strains studied 

The strain of P. longipes studied was obtained  from  a  colony  initiated  with  specimens  collected in Chile, fed with T. urticae, in Nogal,  Los  Andes,  Valparaiso  Region  (Ragusa,  pers.  comm.).  Mites  were  fed  with  all  stages  of  T. 

urticae,  offered  on  leaves  of  Phaseolus  vulgaris L. cv. Contender, placed underside up 

in rearing units constituted of plastic trays (10  ×  15  cm)  bordered  with  water‐saturated  cotton to avoid mite escapes and to maintain  the  turgescence  of  the  leaves.  Rearing  units  were placed in climatic units at 25 ± 2 °C, 75 ±  10 % RH and 16/ 8 [L/ D]. The T. evansi stock  colony was initiated with specimens collected  from  a  tomato  screenhouse  at  Saint‐Jeannet  (Alpes‐Maritimes, 06, France) in October 2007  (Migeon  pers.  comm.),  and  reared  on 

Lycopersicon  esculentum  Miller  in  rearing 

units similar to those described above. 

The  T.  urticae  stock  colony  initiated  with  specimens  collected  in  Montpellier,  France,  was  reared  on  P.  vulgaris  cv.  Contender  in  a  greenhouse. 

Immature development 

Experimentations were performed at 25 ± 2 °C, 75  ±  10  %  RH  and  16/  8  [L/  D].  Three  items  were  tested, each one being characterised by a prey (T. 

evansi or T. urticae) and a plant substrate (tomato 

or bean): T. evansi / tomato, T. urticae / bean and 

T.  urticae  /  tomato.  The  combination  T.  evansi  / 

bean  has  not  been  tested  because  this  plant  was  unsuitable  for  rearing  our  strain  of  T.  evansi.  Groups  of  five  prey  females  were  placed  using  a  thin paintbrush in experimental units, consisting of  a  leaf  disk  of a  plant  substrate  (2 cm  in diameter)  placed  underside  up  onto  a  moist  disk  of  filter  paper,  inside a  Petri  dish  (2  cm  in  diameter,  1  cm  high). One day later, eggs of P. longipes (between 0  and  6  hours  old)  obtained  from  the  intermediate  stock colony (consisting in 30 to 50 females reared  on  a  leaf  of  P.  vulgaris  cv.  Contender  placed  in  a  plastic  tray  as  described  above)  were  transferred  to  each  experimental  unit  (one  egg/  unit);  then  closed with a transparent plastic film. To maintain  humidity,  distilled  water  was  added  on  the  filter  paper  every  day.  Periodically  (once  a  week  on  tomato,  twice  on  bean)  P.  longipes  individuals  were transferred to new leaves infested with preys  as previously reported. 

Observations  were  carried  out  every  12  hours  to  determine  the  duration  and  the  survivorship  for  each stage. 

Reproduction 

Recently  emerged  adult  P.  longipes  females  obtained  were  transferred  to  new  experimental  units. A male taken from the stock colony was then  added  to  each  unit  containing  one  female,  and  a  new  one  was  added  for  every  male  that  died  or  escaped. At least 30 couples were observed. Daily  observations were conducted to determine female  fecundity  and  survivorship.  The  eggs  laid  were  placed  daily  in  a  single  unit  and  reared  to  adulthood  to  determine  the  secondary  sex  ratio  (female  percentage  of  the  studied  female  cohort  offspring). 

Life Table 

The  life  table  was  constructed  considering  the  females  of  the  cohort  studied.  The  net  reproductive  rate  (Ro),  the  mean  generation  time 

(T), the intrinsic rate of increase (rm), the doubling 

generation time (Dt), and the finite rate of increase 

(λ)  were  calculated  using  the  method 

recommended by Birch (1948):  Ro = Σ (lx × mx)  T = Σ (x × lx × mx)/ Σ (lx × mx)  rm = Ln (Ro) / T  Dt = Ln (2) / rm  λ = exp (rm) 

day  when  eggs  had  been  laid),  lx,  the  cumulative 

female survivorship, and mx, the number of female 

descendants per female at x. 

Calculation of a corrected rm value was performed 

by  iteration.  The  method,  aiming  to  find  rm  for 

which (1 ‐ Σ exp (‐rm × x) × lx × mx) is minimal, was 

given by Maia et al. (2000). 

Analysis  of  variance  (ANOVA)  and  related  Tukey  HSD  mean  comparison  tests  were  performed  to  determine  differences  between  duration  of  the  immature  phases  and  adult  stages  between  the  different items tested. 

The  rm  iteration  and  statistical  analysis  were 

computed with R (R project 2008). 

Results 

Immature development 

Egg  to  adult  duration  ranged  from  4.10  to  4.21  days,  for  the  T.  evansi/  tomato  and  T.  urticae/  tomato  conditions,  respectively  (Table  1).  The  egg  stage  was  the  longest,  varying  from  1.80  to  1.96  days.  The  larval  stage  was  the  shortest,  varying  from 0.35 to 0.55 days. No statistical analysis could  be  performed  for  the  item  T.  evansi/  tomato  for  the protonymphal, deutonymphal and egg to adult  stages  because  too  many  individuals  had  died  prematurely  (11.1  %  of  the  immatures  tested    

Table 1. Mean duration (± Standard Error) in days  of  the immature instars of a Chilean strain of Phytoseiulus longipes for several items 

prey/ plant substrate, number of replicates (N and immature survival rate). 

Item  Stage 

T. evansi/ tomato  T. urticae/ bean  T. urticae/ tomato  F (df1, df2) (α = 0.05) 

Egg  1.80 (0.21) a  1.96 (0.20) b  1.83 (0.00) a  Ft  <  F (2,  109)  =  10.99;  P  = 

4.48 × 10‐5

Larva  0.44 (0.17) ab  0.55 (0.22) a  0.35 (0.23) b  Ft < F (2, 105) = 8.91; P = 2.66 

× 10‐4

Protonymph  1.05 (0.35)  0.85 (0.26) a  1.01 (0.26) b  Ft < F (2, 88) = 4.39 ; P = 1.51 

× 10 ‐2

Deutonymph  1.00 (0.00)  0.99 (0.18) a  1.01 (0.29) a  Ft > F (2, 80) = 0.11; P = 8.9 × 

10‐1 

Egg to adult  4.10 (0.00)  4.36 (0.27) a  4.21 (0.35) a 

N  27  41  44  Immature survival (%)  11.1  99.8  90.9  Ft > F (2,  80)  = 2.91; P= 6.03  × 10‐2   Ft (F from tables) < F(df1, df2) (F calculated) mean that there are differences between the mean durations for a stage (ANOVA, α = 0.5). Durations followed by a  different letter for a stage are significantly different (Tukey HSD test, α = 0.5). No statistical analysis could be performed for some stages of the T. evansi /  tomato condition because of high mortality at the larval stage.  Table 2. Mean durations (± Standard Errors) in days of adult phases, longevity and ovipositional rates of Phytoseiulus longipes C feeding on  Tetranychus urticae on bean or tomato, number of replicates (N).  Plant substrate  Stage  Bean  Tomato  F (df1, df2) (α = 0.05) 

Pre‐oviposition  1.22 (0.93) a  0.95 (0.69) a  Ft > F (1, 40) = 1.05; P = 3.11 × 10

‐1

Oviposition  3.74 (1.85) a  2.63 (2.41) a  Ft > F (1, 40) = 2.70; P = 1.08 × 10

‐1

Post‐oviposition  0.30 (0.46) a  1.21 (1.64) b  Ft < F (1, 40) = 6.10; P = 1.79 × 10‐2 

Longevity  8.95 (2.18) a  8.98 (2.62) a 

Eggs / female / day  1.34 (0.89)  0.57 (0.48)  Total eggs / female  6.77 (5.79)  3.29 (2.78)  N  30  23  Ft > F (1, 51) = 6.00 × 10‐4; P = 9.81 × 10‐1  Ft (F from tables) < F(df1, df2) (F calculated) mean that there are differences between the mean durations for a stage (ANOVA, α = 0.5). Durations followed by a  different letter for a stage are significantly different (Tukey HSD test, α = 0.5).   

Montpellier ‐ 21‐25 July 2008    ₄₆₄  Table 3. Phytoseiulus longipes C demographic parameters on two substrates fed with Tetranychus urticae at 25 °C, 80 ± 10 % RH and 16/ 8  (L/ D). Net reproductive rate (Ro), mean generation time (T), finite rate of increase (λ), doubling generation time (Dt), estimated  and iterated intrinsic rate of increase (rm).  Demographic parameter  Substrate 

Ro  T  λ  Dt  rm (Birch)  rm (iterated) 

Bean  3.92  4.04  1.40  2.05  0.338  0.368 

Tomato  1.39  2.91  1.12  6.12  0.113  0.116 

survived).  No  significant  differences  were  found  between  the  two  other  conditions  tested  for  the  egg  to  adult  and  deutonymph  durations.  For  the  three  other  immature  stages  (i.e.  egg,  larva  and  protonymph),  significant  differences  were  always  found  between  the  items  T.  urticae/  bean  and  T.  urticae/ tomato. 

Reproduction 

Adult  phase  durations  and  oviposition  rates  were  observed only when P. longipes was feeding on T. 

urticae,  on  bean  or  tomato  (Table  2),  because  of 

the high mortality of P. longipes when fed with T. 

evansi. The longevity was not significantly different 

between the two conditions, varying from 8.95 and  8.98  days,  on  bean  and  tomato,  respectively.  The  pre‐oviposition  period  ranged  from  1.22  to  0.95  days, oviposition from 3.74 to 2.63 days and post‐ oviposition  from  0.30  to  1.21  days,  on  bean  and 

tomato,  respectively.  The  only  significant 

difference  found  between  these  two  conditions  was  for  the  post‐oviposition  period.  The  mean  oviposition rate and total oviposition were highest  when  P.  longipes  was  fed  with  T.  urticae  on  bean  than on tomato, being 1.34 eggs/ female/ day and  6.77 eggs/ female, respectively. 

Life tables 

Calculated life table parameters are given in Table  3. Congruently with the previous observations, the  best  features  were  obtained  for  the  item  T. 

urticae/  bean.  The  intrinsic  rate  of  increase 

(iterated)  was  more  than  three  times  higher  on  bean than on tomato, while the doubling time and  the net reproductive rate were almost three times  lower  on  bean  than  on  tomato.  The  calculated  mean generation time was 4.04 and 2.91 days, and  the  finite  rate  of  increase  1.40  and  1.12,  on  bean  and tomato, respectively. 

Discussion, conclusions and perspectives 

This  study  has  been  performed  in  order  to  determine  first  the  ability  of  the  predaceous  mite 

P.  longipes  C  to  develop  and  reproduce  fed  with 

tetranychids on tomato, through the analysis of its  life  parameters  The  second  goal  was  to  compare  the biological characteristics of the studied strains  of this species. Up to 2007, experiments had been  performed on two other strains of this predator: a  South‐African  strain  (reported  as  P.  longipes  SA  thereafter)  and  a  Brazilian  strain  (Badii  &  McMurtry 1983, 1984; Moraes & McMurtry 1985b;  Takahashi  &  Chant  1992,  Badii  et  al.  1999).  It  has  been  reported  that  the  South‐African  strain  is  unable to control T. evansi in the conditions tested,  even if promising results had been found to control 

Tetranychus  pacificus  (McGregor)  (Badii  et  al., 

1999).  On  the  opposite,  the  results  obtained  for  the Brazilian strain, discovered in 2005 (Furtado et  al.  2006),  are  enthusiastic  for  the  control  of  T. 

evansi  but  also  of  T.  urticae  on  tomatoes (Ferrero  et al. 2007; Furtado et al. 2007. 

Concerning the developmental phase of P. longipes  C, several points could be pointed out. At first, for  the  item  T.  evansi/  tomato,  only  3  individuals  out  of 27 reached the adult stage, and none of these 3  mites  survived  enough  to  mate.  These  conditions  thus seem to be unsuitable for the Chilean strain of 

P. longipes, which is a key difference to notice with  P.  longipes  B,  which  seems  specific  to  T.  evansi 

(Furtado  et  al.  2007).  For  the  other  conditions  tested  in  the  present  paper  (see  table  IV),  egg  to  adult  durations  were  lower  to  what  has  been  observed previously with 4.7 and 4.8 days while P. 

longipes B was feeding on T. evansi and T. urticae, 

respectively,  on  Canavalia  ensiformis  (L.)  (Furtado 

et  al.  2007),  4.9  days  while  P.  longipes  B  was 

feeding  on  T.  evansi  on  Solanum  americanum  Miller  (Ferrero  et  al.  2007)  and  5.23  days  for  P.  longipes  SA  feeding  on  T.  pacificus  on  bean  (Badii  &  McMurtry  1984).  The  Chilean  strain  of  P.  longipes  thus  seems  to  develop  faster  than  the  other strains feeding on T. urticae. 

The  whole  immature  phase  durations  are  of  the  same  order  of  magnitude  or  longer  for  the  other 

Table 4. Comparison of immature development durations (in days), longevity (in days) and intrinsic rates of increase (female/ female/ days)  for several Phytoseiulus species, depending on the prey provided, the plant substrate and climatic conditions.    Refer ence   Fer rer o  et  al . 2 007   Furtado  et  al . 2 007   Badi i &  McMurtry   19 84   Silva  et  al . 2005   Escude ro  &  Fe rr agu t  20 05   Va scon cel o s  et  al .  20 08   Intr insic  rat e  of   inc rease  rm  (f e m al e/   female/  day )  0. 29 3   0. 32   0. 36 3   0. 36 6   0. 19 3   0. 11 6   0. 37 3   0. 27 3   Longevity  in   days   20. 3   29. 7   31. 1   34. 1 2   44   NA   NA   23. 3   Immat u re   development  dura tion   in  days   4. 9   4. 8   4. 7   5. 23   4. 8   6. 91   4. 16   5. 5   Clim atic  condition s  25  ±  2  °C,  80  ±  10  %   RH,  12/  12  L/  D   25  ±  1  °C,  83  ±  12  %   RH,  12/  12  L/  D   25  ±  1  °C,  80  ±  7  %  RH,   14 /  10  L/  D   26  °C , 60  ±  5  %  RH ,  12 /  12  L/  D   25  ±  1  °C,  70 ‐80  %  RH,   12 /  12  L/  D   25  ±  0. 8,  12 /  12  L/  D   Plant  substrate   Solan u m   a m eric an um   C ana val ia   en siformis   P.  lunat us   C.  en siformis   P.  vul gar is   S. ame ri can u m   Prey  sp ecies   Te tr any chus   ev ansi   T.  ur ti cae   T.  e vansi   T.  paci fi cus   T.  ur ti cae   T.  e vansi   T.  ur ti cae   T.  ur ti cae   P h yt ose iul us   species   P.  lo ngi pe s  B   P.  lo ngi pe s  SA   P.  m a cr op ilis   P.  p ersim ilis   P.  f ragar ia e   

Montpellier ‐ 21‐25 July 2008    ₄₆₆ 

fragariae Denmark & Schicha feeding on T. urticae 

on  S.  americanum  (Vasconcelos  et  al.  2008),  4.8  days for Phytoseiulus macropilis (Banks) feeding on 

T.  urticae  on  C.  ensiformis  (Silva  et  al.  2005)  and 

6.91  and  4.16  days  for  Phytoseiulus  persimilis  Athias‐Henriot  feeding  on  T.  evansi  and  T.  urticae 

on  bean  (Escudero  &  Ferragut  2005).  Results 

obtained  here  on  the  developmental  phase  of  P. 

longipes  C  showed  that  this  strain  is  not  able  to 

develop, thus to control, T. evansi on tomato, but  can develop in the same way on tomato and bean  while  feeding  on  T.  urticae.  At  last,  as  defined  by  McMurtry  &  Croft  (1997),  type  I  phytoseiids,  belonging  to  the  genus  Phytoseiulus,  do  not  need  food until they reach the protonymphal stage. This  has  also  been  observed  during  the  present  experiment for the Chilean strain of P. longipes  Adult  phase  durations  of  the  Chilean  strain  of  P. 

longipes  were  calculated  only  with  T.  urticae  as 

prey. These durations were very short compared to  all  the  data  previously  compiled  (table  IV).  Longevity was only 8.95 and 8.98 days in our data  for  items  T.  urticae/  bean  and  T.  urticae/  tomato,  respectively,  while  Ferrero  et  al.  (2007)  showed  a  20.3  days  longevity  for  P.  longipes  B  and  Badii  (1984)  a  34.12  days  longevity  for  P.  longipes  SA.  For the other Phytoseiulus species studied feeding  on T. urticae at the same temperatures than in the 

present study, longevity is also variable, from 44.0 

and  23.3  days,  for  P.  macropilis  and  P.  fragariae,  respectively  (Silva  et  al.  2005;  Vasconcelos  2008).  The  only  difference  that  could  explain  those  variations  beyond  the  species  might  be  the  photoperiod,  which  was  16/  8  (L/  D)  in  our  experiment,  and  12/  12  or  14/  10  (L/  D)  on  the 

others  (Overmeer  1985).  Values  of  rm  reported  by 

Furtado  (2007)  for  P.  longipes  B,  and  by  Badii  (1984) for P. longipes SA, both reared on bean, are  very  similar  to  what  was  obtained  in  the  present  study  for  P.  longipes  C  feeding  on  T.  urticae  on  bean, with 0.320, 0.366 and 0.368 female/ female/  day,  respectively.  Similar  or  lower  figures  were  found  for  other  species  feeding  on  T.  urticae  on  bean, ranging from 0.373 to 0.193 female/ female/  day, for P. persimilis and P. macropilis, respectively  (Escudero  &  Ferragut  2005;  Silva  et  al.  2005). 

However,  the  low  rm  found  in  the  present 

experiment  for  P.  longipes  C  feeding  on  T.  urticae  on  tomato  can  suggest  that  the  item  T.  urticae/  tomato  is  not suitable  for  this  strain,  thus  that  no  effective  control  of  T.  urticae  could be  considered  by  releasing  this  predaceous  mite  on  tomato  greenhouses. 

This is the first report of a study on the biology of a 

Chilean  strain  of  P.  longipes.  This  work  showed  results  different  than  those  already  obtained  for  other  strains  of  this  species.  Phytoseiulus  longipes  C  was,  as  the  SA  strain,  unable  to  complete  its  development  feeding  on  T.  evansi  on  tomato,  while  the  B  strain  could.  Those  observations  lead  to  the first  major  conclusion of  this  work  which  is  that  P.  longipes  C  would  be  unable  to  control  T. 

evansi  populations  in  tomato  greenhouses.  Great 

differences in longevity had been also pointed out  between  the  Chilean  strain  and  the  two  others.  These  differences  could  be  due  to  differences  in  the  setup  (photoperiod),  or  to  the  strain  itself. 

Values  of  rm  showed  that  P.  longipes  C  would  be 

able  to  develop  and  reproduce  well  feeding  on  T. 

urticae  on  bean,  but  apparently  not  enough 

feeding  on  T.  urticae  on  tomato  to  settle  an  enthusiastic  prognosis  for  its  use  in  biological  control. 

In  this  paper,  particular  attention  was  paid  to  the  differences  between  the  three  strains  of  P. 

longipes  already  studied:  differences  in  the 

suitability  of  plant  substrate  and  in  prey  items,  in  differences  in  longevity  and  oviposition  at  the  same  conditions.  All  these  observations  lead  the  authors  to  settle  a  whole  study  to  compare  those  strains  in  combined  conditions.  Along  with  more  biological studies, other tools like genetic markers  or morphological analysis are presently being used  to  determine  and  explain  some  of  those  differences.  Many  conclusions  on  the  usefulness  and  the  efficiency  of  those  strains  to  control  tetranychids  on  tomato  greenhouses  should  be  given later. 

Acknowledgements 

The  PhD  grant  for  the  whole  study  in  which  this  paper  is  included  is  coming  half  from  the  French  ANRT  (Association  Nationale  de  la  Recherche  Technique)  and  half  from  Koppert  BV,  The  Netherlands.  The  authors  would  like  to  thank  particularly  Pr.  Salvatore  Ragusa  for  its  help  in  providing  the  strain  of  Phytoseiulus  longipes,  and  Alain Migeon for providing Tetranychus evansi. 

References 

Badii M.H., McMurtry J.A. 1983. Effect of different foods  on  development,  reproduction  and  survival  of 

Phytoseiulus  longipes  [Acarina:  Phytoseiidae]. 

Badii  M.H.,  McMurtry.  J.A.  1984.  Life  history  of  and  life  table  parameters  for  Phytoseiulus  longipes  with  comparative  studies  on  P.  persimilis  and 

Typhlodromus  occidentalis  (Acari:  Phytoseiidae).  Acarologia XXV, 111‐123. 

Badii  M.H.,  McMurtry  J.A.,  Flores  A.E.  1999.  Rates  of  development,  survival  and  predation  of  immatures  stages  of  Phytoseiulus  longipes  (Acari:  Mesostigmata:  Phytoseiidae).  Experimental  and 

Applied Acarology 23, 611‐621. 

Birch  L.C.  1948.  The  intrinsic  rate  of  natural  increase  of  an  insect  population.  Journal  of  Animal  Ecology  17,  15‐26. 

Blair  B.W.  1989:  Laboratory  screening  of  acaricides  against Tetranychus evansi Baker and Pritchard. Crop 

Protection 8, 212‐216. 

Bolland H.R., Vala F. 2000. First record of the spider mite 

Tetranychus  evansi  (Acari:  Tetranychidae)  from 

Portugal. Entomologische Berichten 60 (9),180.  Castagnoli  M.,  Nannelli  R.,  Simoni  S.  2006.  Un  nuovo 

temibile  fitofago  per  la  fauna  italiana:  Tetranychus 

evansi  (Baker  e  Pritchard)  (Acari  Tetranychidae).  Informatore Fitopatologico 5, 50‐52. (in Italian) 

Escudero L. A., Ferragut F. 2005. Life history of predatory  mites  Neoseiulus  californicus  and  Phytoseiulus 

persimilis  (Acari:  Phytoseiidae)  on  four  spider  mite 

species as prey, with special reference toTetranychus 

evansi  (Acari:  Tetranychidae).  Biological  Control  32, 

378‐384. 

Ferragut  F.,  Escudero  L.  A.  1999.  Tetranychus  evansi  Baker & Pritchard (Acari: Tetranychidae), una nueva  araña  roja  en  los  cultivos  horticolas  españoles. 

Boletin  de  Sanidad  Vegetal.  Plagas.  25,  157‐164.  (in 

Spanish) 

Ferrero M., Moraes G.J. de, Kreiter S., Tixier M.‐S., Knapp  M.  2007.  Life  tables  of  the  predatory  mite 

Phytoseiulus longipes feeding on Tetranychus evansi 

at  four  temperatures  (Acari:  Phytoseiidae,  Tetranychidae). Experimental and Applied Acarology  41, 45‐53. 

Furtado  I.P.,  Moraes  G.J.  de,  Kreiter  S.,  Knapp  M.  2006.  Search  for  effective  natural  enemies  of  Tetranychus 

evansi  in  south  and  southeast  Brazil.  Experimental  and Applied Acarology 40 (3‐4), 157‐174. 

Furtado  I.  P.,  Moraes  G.  J.  de,  Kreiter  S.,  Tixier  M.‐S.,  Knapp M. 2007. Potential of a Brazilian population of  the  predatory  mite  Phytoseiulus  longipes  as  a  biological control agent of Tetranychus evansi (Acari:  Phytoseiidae,  Tetranychidae).  Biological  Control  42,  139‐147 

Gonçalves L. D., Maluf W. R., Cardoso M. G., Resende J.  T. V. de, Castro E. M. de, Santos N. M., Nascimiento I.  R.,  Faria  M.  V.  2006.  Relationship  between  zingiberene,  foliar  trichomes  and  repellence  of  tomato  plant  to  Tetranychus  evansi.  Pesquisa 

Agropecuaria Brasileira 41, 267‐273. 

Gutierrez J., Etienne J. 1986. Les Tetranychidae de l'île de  la  Réunion  et  quelques‐uns  de  leurs  prédateurs. 

L'Agronomie Tropicale. 41, 84‐91. (in French) 

Ho C. C., Wang S. C., Chien Y. L. 2005. Field observation  on  2  newly  recorded  spider  mites  in  Taiwan.  Plant 

Protection Bulletin (Taipei) 47 4, 391‐402. 

Humber R. A., Moraes G. J. de 1981. Natural infection of 

Tetranychus  evansi  (Acarina:  Tetranychidae)  by  a  Triplosporium sp (Zygomycetes: Entomophtorales) in 

Northeastern Brazil. Entomophaga 26, 421‐425.  Koller  M.,  Knapp  M.,  Schausberger  P.  2007.  Direct  and 

indirect  adverse  effects  of  tomato  on  the  predatory  mite  Neoseiulus  californicus  feeding  on  the  spider  mite Tetranychus evansi. Entomol. Experimental and 

Applied Acarology 125, 297‐305. 

Mabeya  J.,  Knapp  M.,  Nderitu  J.  H.,  Olubayo  F.  2003.  Comparaison  de  l'efficacité  de  Oberon  (Spiromefisen)  avec  celle  d'autres  acaricides  dans  la  lutte  contre  les  acariens  rouges  (Tetranychus  evansi  Baker  &  Pritchard)  sur  la  tomate.  15th  Biennal  Congress  of  the  African  Association  of  Insect  Scientists (AAIS), Nairobi, Kenya, 2003. (French) 

Maluf  W.  R.,  Campos  G.  A.,  Cardoso  M.  G.  2001.  Relationships  between  trichome  type  and  spider  mite  (Tetranychus  evansi)  repellence  in  tomatoes  with  respect  to  foliar  zingiberene  contents. 

Euphytica 121, 73‐80. 

Maia  A.,  Luiz  A.  J.  B.,  Campanhola  C.  2000.  Statistical  inference on associated fertility life table parameters  using  Jakknife  technique:  computational  aspects. 

Journal of Economic Entomology 93 (2), 511‐518. 

McMurtry J. A., Croft B. A. 1997. Life‐styles of phytoseiid  mites  and  their  roles  in  biological  control.  Annual 

Review of Entomology 42, 291‐321. 

Migeon A. 2005: Un nouvel acarien ravageur en France : 

Tetranychus evansi Baker et Pritchard. Phytoma 579, 

38‐43. (in French) 

Moraes  G.  J.  de,  Lima  H.  C.  1983.  Biology  of  Euseius 

concordis (Chant) (Acarina: Phytoseiidae) a predator 

of the tomato russet mite. Acarologia 24, 251‐255.  Moraes  G.  J.  de,  McMurtry  J.  A.  1985a.  Chemically 

mediated  arrestment  of  the  predaceous  mite 

Phytoseiulus  persimilis  by  extracts  of  Tetranychus  evansi  and  Tetranychus  urticae.  Experimental  and  Applied Acarology 1, 127‐138. 

Moraes  G.  J.  de,  McMurtry  J.  A.  1985b.  Comparison  of 

Tetranychus  evansi  and  T.  urticae  [Acari: 

Tetranychidae] as prey for eight species of Phytoseiid  mites. Entomophaga 30, 393‐397. 

Moraes  G.  J.  de,  McMurtry  J.  A.  1986.  Suitability  of  the  spider  mite  Tetranychus  evansi  as  prey  for 

Phytoseiulus  persimilis.  Entomologia  Experimentalis  et Applicata 40, 109‐115. 

Oliveira E. E., Oliveira C. L., Sarmento R. A., Fadini M. A.  M.,  Moreira  L.  R.  2005.  Biological  aspects  of  the  predator  Cycloneda  Sanguinea  (Linnaeus,  1763)  (Coleoptera:  Coccinellidae)  fed  with  Tetranychus 

evansi  (Baker  &  Pritchard,  1960)  (Acari: 

Tetranychidae)  and  Macrosiphum  euphorbiae 

(Thomas,  1878)  (Homoptera:  Aphididae).  Bioscience 

Montpellier ‐ 21‐25 July 2008    ₄₆₈  Overmeer  W.  P.  J.  1985.  Diapause:  95‐102.  In  Spider 

mites  –  Their  biology,  Natural  Enemies  and  Control, 

Vol 1B. Edited by Helle W. & Sabelis M. W., Elsevier,  Amsterdam. 

R  Development  Core  Team.  2008.  R.  A  language  and 

environment  for  statistical  computing.  R  Foundation 

for  Statistical  Computing,  Vienna,  Austria. 

http://www.R‐project.org 

Resende J. T. V., Maluf W. R., Cardoso M. G., Nelson D. L.  2002. Inheritance of acylsugar contents in tomatoes  derived  from  an  interspecific  cross  with  the  wild  tomato  Lycopersicon  pennellii  and  their  effect  on  spider  mite  repellence.  Genetic  and  Molecular 

Research 1, 106‐116. 

Resende J. T. V., Maluf W. R., Cardoso M. G., Faria M. V.,  Gonçalves L. D., Nascimento I. R. do 2008. Resistance  of tomato genotypes with high level of acylsugars to 

Tetranychus  evansi  Baker  &  Pritchard.  Scientia  Agricola 65, 31‐35. 

Rosa A. A., Gondim Jr. M. G. C., Fiaboe K. K. M., Moraes  G. J. de, Knapp M. 2005. Predatory mites associated  with  Tetranychus  evansi  Baker  &  Pritchard  (Acari:  Tetranychidae)  on  native  solanaceous  plants  of  coastal  Pernambuco  State,  Brazil.  Neotropical 

Entomology 34, 689‐692. 

Sarmento R. A., Oliveira H. G. de, Holtz A. M., Silva S. M.  da, Serrão J. E., Pallini A. 2004. Fat body morphology  of  Eriopis  connexa  (Coleoptera,  Coccinelidae)  in  function  of  two  alimentary  sources.  Brazilian 

Archives of Biology and Technology 47, 407‐411. 

Silva  F.  R.  da,  Vasconcelos  G.  J.  N.,  Gondim  Jr  M.  G.  C.,  Oliveira  J.  V.  2005.  Exigências  térmicas  e  tabela  de  vida de fertilidade de Phytoseiulus macropilis (Banks)  (Acari: Phytoseiidae). Neotropical Entomology 34 (2),  291‐296 (in Brazilian). 

Takahashi F., Chant D. A. 1992. Adaptive strategies in the  genus  Phytoseiulus  Evans  (Acari:  Phytoseiidae):  I.  Developmental  times.  International  Journal  of 

Acarology 18, 171‐176. 

Tsagkarakou  A.,  Cros‐Arteil  S.,  Navajas  M.  2007.  First  record  of  the  invasive  mite  Tetranychus  evansi  in  Greece. Phytoparasitica 35, 519‐522. 

Vasconcelos  G.  J.  de,  Moraes  G.  J.  de,  Delalibera  Jr  I.,  Knapp  M.  2008.  Life  history  of  the  predatory  mite 

Phytoseiulus  fragariae  on  Tetranychus  evansi  and 

Tetranychus  urticae  (Acari:  Phytoseiidae, 

Tetranychidae)  at  five  temperatures.  Experimental 

and Applied Acarology 44, 27‐36. 

Wekesa V. W., Knapp M., Maniania N. K., Bog, H. I. 2006.  Effects  of  Beauveria  bassiana  and  Metarhizium 

anisopliae on mortality, fecundity and egg fertility of  Tetranychus  evansi.  Journal  of  Applied  Entomology 

130, 155‐159. 

Wekesa  V.  W.,  Maniania  N.  K.,  Knapp  M.,  Boga  H.  I.  2005.  Pathogenicity  of  Beauveria  bassiana  and 

Metarhizium  anisopliae  to  the  tobacco  spider  mite  Tetranychus  evansi.  Experimental  and  Applied  Acarology 36, 41‐50. 

Wekesa V. W., Moraes G. J. de, Knapp M., Delalibera Jr I.  2007.  Interactions  of  two  natural  enemies  of 

Tetranychus  evansi,  the  fungal  pathogen  Neozygites  floridana  (Zygomycetes:  Entomophtorales)  and  the 

predatory  mite,  Phytoseiulus  longipes  (Acari:  Phytoseiidae). Biological Control 41, 408‐414.  Zhang  Z.  Q.  2003.  Mites  of  greenhouses,  Identification, 

Biology and Control. CABI, London, 244 p.