Validation par spectrométrie de masse

La thèse présente les premiers développements de l’optophysiologie, ainsi que divers exemples de son application dans l’analyse des sécrétions cellulaires. Afin que cette méthode soit acceptée par la communauté scientifique et qu’elle soit réellement utilisée dans divers domaines de recherches, il est essentiel que la méthode soit validée en la comparant à une autre méthode analytique robuste. La validation de la méthode est actuellement à l’étude. Pour y arriver, des expériences d’optophysiologie SERS seront réalisées près de neurones originaires de différentes régions du cerveau de souris. Ces régions, correspondantes au mésencéphale, le cortex ainsi que le striatum, sont toutes composées de différents neurones libérant des neurotransmetteurs spécifiques. Le mésencéphale libère exclusivement DA en majorité, puis Glu et GABA ; le cortex libère majoritairement du Glu, puis GABA ; le striatum libère presque exclusivement du GABA, puis de ACh. Ces trois régions permettront de démontrer la capacité de l’optophysiologie à différencier les neurones selon la composition des neurotransmetteurs libérés. Pour valider la méthode, des échantillons de l’environnement extracellulaire avant et après stimulation, seront localement prélevés à l’aide d’un capillaire et analysés par MS (Fig. 5.2). L’utilisation de la MS permettra de valider l’identité des neurotransmetteurs en plus de les quantifier. Ce faisant, il sera possible de confirmer la détection des neurotransmetteurs par SERS, puis évaluer si l’augmentation du nombre d’évènements moléculaires est associée à une augmentation de la concentration réelle extracellulaire.

Figure 5.2 Validation de l’optophysiologie SERS par analyse comparative avec la spectrométrie de masse (MS). Une expérience typique d’optophysiologie sera effectuée près de neurones. Durant cette expérience, le milieu extracellulaire sera prélevé à l’aide d’un capillaire situé à la même distance des neurones que le capteur SERS. Le milieu extrait être par la suite séparée par chromatographie liquide (LC), ionisée par nébulisation électrostatique (ESI) puis analysée par triple quadripôle. Les divers neurotransmetteurs sont ensuite identifiés et quantifiés.

5.2.3. Couplage à l’optophysiologie

Un axe de recherche intéressant serait d’évaluer les couplages potentiels de l’optophysiologie a d’autres méthodes analytiques permettant des analyses in situ. Par exemple, puisque le capteur plasmonique est généré à la surface d’un capillaire de verre, il serait possible, en théorie, d’utiliser ce même capillaire pour effectuer une micro extraction locale pouvant être directement utilisé pour une analyse MS, ou encore par électrophorèse capillaire. Ce type de couplage permettrait de directement confirmer l’identité des molécules détectées par SERS. Cette information pourrait d’ailleurs servir à peaufiner les modèles d’intelligence artificielle, où actuellement, la détection d’une nouvelle molécule pour laquelle le modèle n’a pas été préalablement entrainé, est problématique.

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Autrement, un couplage hautement prometteur serait de convertir le capillaire en une électrode nanométrique afin de permettre l’électrochimie-SERS (EC-SERS). Ce couplage apporterait plusieurs avantages : premièrement, il serait possible d’effectuer la co-détection in

situ par SERS et par voie électrochimique de molécules élecro-actives, et ce, avec une haute

résolution temporelle de l’ordre de la milliseconde. Cette détection simultanée SERS- électrochimique servirait de preuve solide quant à la véracité des résultats associées à la détection par optophysiologie. Deuxièmement, l’utilisation d’une électrode comme support permettrait de moduler le potentiel appliqué à l’électrode. Ce faisant, il est possible d’ajuster l’amplification en surface dans un état favorisant l’adsorption pour la molécule d’intérêt25_{. De}

plus, il fut rapporté par Karaballi et al que l’application d’un potentiel augmente significativement la sensibilité en SERS en induisant la désorption de molécule adsorbée en surface comme le citrate26_{. Des capteurs EC-SERS furent d’ailleurs appliqués pour la détection}

et l’identification de bactéries27_{, pour la détection précoce de pré-éclampsies}28_{, ou encore pour}

la détection d’antibiotique29_{. Ces exemples démontrent le potentiel des capteurs EC-SERS en}

tant qu’outils diagnostiques. Le couplage entre l’optophysiologie et l’électrochimie permettrait sans aucun doute de dépasser les performances actuelles de la méthode.

5.2.4. Limitation des méthodes d’apprentissages supervisées

Le chapitre 4 présentait l’utilisation d’un CNN afin de classifier les différents spectres SERS acquis durant une mesure d’optophysiologie près de cellules. Bien que hautement sélectif et sensible, les méthodes d’apprentissages supervisées, tels les réseaux neuronaux artificiels, effectuent leur classification strictement parmi les classes pour lesquels ils furent préalablement entrainés. Ainsi, si une nouvelle molécule pour laquelle le modèle n’a pas été préalablement entrainé est détectée par SERS, son spectre SERS sera associé exclusivement à l’une des classes du modèle. Cette caractéristique des conséquences majeures sur l’analyse des données : Le CNN ne permet pas de distinguer les molécules qui lui sont inconnues, nécessitant donc la création de classes pour toutes les molécules présentes dans l’environnement étudié. Puisque l’optophysiologie a pour objectif primaire l’étude d’environnement cellulaire, composé d’un cocktail complexe de différentes molécules et protéines, la création d’une classe pour chaque

molécule est donc impensable. Ce problème fut abordé par Stöckel et al en introduisant n classeurs binaires, de type One-against-the rest (OATR), pour les n molécules30-32_{. Lorsqu’un}

spectre SERS est présenté au modèle, il est comparé à chaque classeur binaire. Si le spectre n’est associé à aucune ou à plus d’une des n molécules, le spectre sera associé à une classe inconnue. Cette ségrégation permet de minimiser le taux de faux positif associé à la présence de nouvelles molécules. De manière alternative, Kemmler et al, ainsi que Schmid et al ont tous deux démontrés la détection de nouvelles classes en incorporant des processus gaussiens (GP)33-35

dans leur méthode d’analyse multivariée.

La détection de nouvelles classes fut aussi introduite par le groupe de Yan LeCun pour la reconnaissance faciale36_{, où le réseau identifiait les nouveaux visages pour lesquels il n’avait}

pas été préalablement entrainé. Cet exemple met en lumière les progrès rapides de l’intelligence artificielle au cours des dernières années. Le développement de nouvelles architectures de réseaux neuronaux, de nouvelles fonctions d’activation et d’optimisation offrants de meilleures performances ne serait tardées, dû à l’importante croissance des domaines de visions par ordinateur et de reconnaissance faciale. Ces nouveaux algorithmes pourront ensuite être appliqués au domaine de la spectroscopie et permettre le développement de modèle de classification plus performante. À l’aide de tel modèle, l’optophysiologie SERS pourra ultimement analyser des environnements extracellulaires complexes avec des performances analytiques inégalées, permettre une compréhension approfondie de processus biologiques, du métabolisme cellulaire et des mécanismes de signalisation moléculaire entre des cellules vivantes. Le développement de l’optophysiologie peut être perçu comme une pierre angulaire dans le domaine de la biodétection et que grâce à elle, plusieurs questions d’ordre biologique pourront être répondues.

5.3.

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