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Dans le lait, les triacylglycérols sont synthétisés au sein de la cellule épithéliale

mammaire puis sont sécrétés dans le lait sous forme de globules gras.

1. Synthèse de la matière grasse dans la cellule épithéliale mammaire

Chez les ruminants, deux sources biologiques d’acides gras sont à l’origine de la

synthèse des triacylglycérols qui composent la matière grasse du lait : d’une part une synthèse

de novo et d’autre part un prélèvement directement dans le sang (McGuire et Bauman, 2002 ;

Palmquist, 2006).

1.1. Synthèse de novo des acides gras à courtes et moyennes chaînes

La synthèse de novo a lieu dans les cellules épithéliales mammaires pour les acides

gras courts et moyens (C4:0 à C14:0, Figure B-7). Cette voie de biosynthèse bien connue et

est détaillée dans Hillgartner et al. (1995), Barber et al. (1997) et Palmquist (2006). Elle

requiert deux types de substrats : des chaînes courtes hydrocarbonées et des équivalents

réducteurs (NADPH

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). Chez les ruminants, cette synthèse d’acides gras à lieu à partir

d’acétate majoritairement, de -hydroxybutyrate à hauteur de 10-15%, dérivé de l’activité

ruménique, et de propionate (C3:0) très minoritairement (Palmquist, 2006).

La synthèse de novo des acides gras a lieu dans le réticulum endoplasmique lisse au

étapes. La première étape consiste en la carboxylation de l’acétyl-coenzyme A (acétyl-CoA)

issu de l’acétate par l’acétyl-CoA carboxylase donnant ainsi du malonyl-CoA (Palmquist,

2006). La deuxième étape consiste en l’élongation d’un acétyl-CoA à l’aide des résidus

malonyl-CoA à l’aide d’un complexe enzymatique appelé acides gras synthase (Smith et al.,

2003 ; Palmquist, 2006). L’élongation se fait ainsi par incrémentation de 2 atomes de carbone.

Le butyryl-CoA dérivant du -hydroxybutyrate peut également servir de précurseur de cette

réaction.

La longueur de chaîne des acides gras synthétisés de novo est régulée par différentes

enzymes, notamment les thioestérases I et II qui stoppent la réaction d’élongation pour libérer

des acides gras ayant entre 8 et 16 atomes de carbone (Chilliard et al., 2001a ; Smith et al.,

2003 ; Palmquist, 2006).

1.2. Prélèvement des acides gras à longues chaînes dans le sang

Les acides gras à plus longues chaînes (C16:0 et > C18:0) sont prélevés par les

cellules mammaires directement dans le sang à partir des lipoprotéines circulantes contenant

des triacylglycérols issus de l’alimentation (Figure B-7, Palmquist, 2006). Le prélèvement est

réalisé par hydrolyse des triacylglycérols à l’aide de la lipoprotéine lipase pour les acides gras

positionnés préférentiellement en sn-3 (Palmquist, 2006 ; Clegg et al., 2001). Les acides gras

entrant dans la cellule épithéliale mammaire par cette voie sont principalement les acides

palmitique, stéarique et oléique.

Figure B-7 : Les différentes voies métaboliques conduisant au pool d’acides gras dans la

cellule épithéliale mammaire (d’après Chilliard et al., 2001a).

1.3. Synthèse des triacylglycérols à partir du pool d’acides gras

Le glycérol-3-phosphate ou -glycérophosphate à l’origine de la synthèse des

triacylglycérols provient essentiellement de la glycolyse (Bickerstaffe et Annison, 1971 ;

Palmquist, 2006). La voie de synthèse des triacylglycérols est détaillée dans la Figure B-8.

Les acides gras doivent être présents sous forme d’acyl-CoA dans la cellule pour être

estérifiés sur le glycérol. Les acides gras issus de la synthèse de novo se trouvent sous cette

forme, en revanche les acides gras issus du prélèvement sanguin sont convertis en acyl-CoA

par l’intermédiaire de l’acyl-CoA synthase (Hawke et Taylor, 1995 ; Coleman et al, 2000 ;

Palmquist, 2006). Le glycérol-3-phosphate est premièrement estérifié en position sn-1 avec un

acide gras plutôt saturé à longue chaîne. Un deuxième acide gras est ensuite estérifié en

position sn-2, lui aussi préférentiellement à longue chaîne ou chaîne moyenne (Hawke et

Taylor, 1995). Le phosphatidate alors produit occupe un point central dans la biosynthèse des

lipides (Palmquist, 2006) dans le sens où il peut se diriger vers la voie de biosynthèse des

acéthylCo-A carboxylase

Globule gras

Cellule épithéliale mammaire Capillaire sanguin Glycérol Acide gras - Albumine Acétate 3-hydroxy-butyrate Lipoprotéine lipase Glucose Chylomicron ou VLDL (lipoprotéine de très faible densité) Acides gras Glycérol Acides gras synthétase Acyl-CoA Triglycérides D-9 désaturase (C4 – C16) (C14 – C18) 3-glycérol-P (C12 – C22) Glut 1 (transporteur du glucose de type I)

glycérophospholipides ou être utilisé comme précurseur des triacylglycérols (Coleman Lee,

2004). L’estérification de la position sn-3 du glycérol est alors effectuée en deux étapes : la

déphosphorylation puis l’estérification.

La cellule épithéliale de la glande mammaire des ruminants estérifie directement le

butyryl-CoA et l’hexanoyl-CoA sur la position sn-3 du glycérol, ce qui explique la proportion

d’acides gras C4:0 et C6:0 en quantités non négligeables dans le lait (Hawke et Taylor, 1995).

Figure B-8 : Synthèse des triacylglycérols du lait – voie de l’-glycérophosphate (Hawke et

Taylor, 1995).

2. Sécrétion des globules gras par la cellule épithéliale mammaire

Les triacylglycérols synthétisés dans le réticulum endoplasmique lisse de la cellule

transitent sous forme de micro-gouttelettes qui coalescent avant d’être excrétées au niveau de

l’apex de la cellule (Figure B-9, Keenan et Mather, 2006). Ces micro-gouttelettes lipidiques

(MLD) sont les précurseurs intra-cellulaires des globules gras. Elles proviennent

exclusivement du réticulum endoplasmique de la partie basale de la cellule épithéliale

de la membrane du réticulum endoplasmique où ils sont synthétisés (Zazcek et Keenan, 1990)

puis sont ainsi expulsés dans le cytosol sous forme de micro-gouttelettes lipidiques appelées

gouttelettes lipidiques cytoplasmiques recouvertes de la face externe du réticulum

endoplasmique (Mather et Keenan, 1998). Ces microgouttelettes ne dépassent pas la taille de

0.5 µm à la sortie du réticulum endoplasmique (Heid et Keenan, 2005).

Une fois expulsées dans le cytosol, les microgouttelettes transitent vers l’apex

cellulaire et grossissent par action de plusieurs phénomènes, dont la fusion ou le transfert à

l’aide de protéines cytoplasmiques sont généralement avancés (Patton, 1973 , Valivullah et

al., 1986 ; Heid et Keenan, 2005 ; Ollivier-Bousquet, 2002).

A l’approche de l’apex de la cellule, un processus d’enveloppement des gouttelettes

lipidiques cytoplasmiques dans la membrane plasmique de la cellule intervient jusqu’à

dissociation complète des globules gras nouvellement formés (Keenan et Mather, 2006). Lors

de ce processus d’enveloppement, une partie du cytoplasme peut être entraînée dans le

globule gras formé (Heid et Keenan, 2005).

Figure B-9 : schéma représentant l’origine intracellulaire des globules gras du lait, depuis la

croissance à la sécrétion des gouttelettes (d’après Keenan et Mather, 2006). CLD = gouttelette

lipidique cytoplasmique, CM = micelle de caséine, ER = réticulum endoplasmique, Ga =

appareil de Golgi, MLD = gouttelette microlipidique, MFG = globule gras du lait, N = noyau,

SV = vésicule sécrétrice.

Les globules gras sont concentrés dans le lait de vache à raison de ~15.10

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unités par

l’ensemble des globules gras, mais moins de 10% du volume total de matière grasse. Les

globules gras d’un diamètre compris entre 1 et 8 µm constituent 90% du volume de matière

grasse. Les globules gras d’un diamètre supérieur à 8 µm représentent 1 à 3% du volume de

matière grasse (Mulder et Walstra, 1974 ; Couvreur et Hurtaud, 2007).

Enfin, Timmen et Patton (1988) ont émis l’hypothèse que la taille des globules gras

serait conditionnée par leur composition tryglycéridique. Cette hypothèse a été reprise par

Fauquant et al. (2005) qui ont observé des teneurs plus fortes en acides gras longs et insaturés

dans les globules gras de petite taille isolés par filtration par rapport à l’ensemble des globules

gras du même lait.

D. Composition et structure de la membrane des globules gras natifs

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