• Aucun résultat trouvé

175 seulement si les deux brins sont complètement séparés. Si le complexe présente une faible activité

hélicase, elle n’est peut-être pas suffisante pour permettre la séparation complète du double brin.

Une publication très récente révèle qu’il est possible de suivre une activité hélicase incomplète en

utilisant les propriétés de l’intercalant fluorescent de l’ADN « SYBR Green I » [173]. Cet intercalant

est spécifique des substrats double brin, sa fluorescence décroit fortement en présence d’un ADN

simple brin. Comme la fluorescence est maximale en début de réaction, une activité hélicase partielle

pourra quand même être observée par une décroissance de la fluorescence. Cette approche pourrait

être testée afin d’estimer si le complexe H-P d’EBV possède une faible activité hélicase, de plus elle

est peu couteuse et facilement réalisable. Il faudrait aussi poursuivre les tests hélicases en affinant

encore les conditions car les hélicases ont besoin de conditions très strictes pour être actives.

L’absence d’un seul composant ou une concentration non adaptée peut bloquer l’activité hélicase du

complexe.

176

Partie V :

177

Conclusion :

Le travail réalisé au cours de ma thèse a permis de produire le complexe H-P d’EBV sous

forme soluble et de pouvoir débuter des analyses structurales et enzymatiques. L’avancement actuel

du projet permet d’étudier la structure et les activités du complexe. Les résultats à venir

contribueront à la description et la compréhension du rôle du complexe H-P d’EBV. Ce futur permet

aussi d’envisager des informations complémentaires pour le mécanisme de réplication des

herpèsvirus en ayant les caractéristiques d’un complexe H-P d’un γ-herpès virus qui pourront être

directement comparées à celles déjà connues pour les α-herpèsvirus. Personnellement je suis déçu

de ne pas pouvoir poursuivre les investigations sur le complexe H-P d’EBV. Mais le travail que j’ai

réalisé durant ma thèse pose les bases de l’expression et de la purification du complexe facilitant les

investigations structurales et enzymatiques du complexe H-P d’EBV.

178

Bibliographie

179

1. Epstein, M.A., Achong, B.G., and Barr, Y.M., Virus Particles in Cultured Lymphoblasts from

Burkitt's Lymphoma. Lancet, 1964. 1(7335): p. 702-3.

2. Epstein, M.A., Henle, G., Achong, B.G., and Barr, Y.M., Morphological and Biological Studies

on a Virus in Cultured Lymphoblasts from Burkitt's Lymphoma. The Journal of experimental

medicine, 1965. 121: p. 761-70.

3. Strauss, J.H. and Strauss, E.G., Viruses and human disease2002, San Diego etc.: Academic

Press. VII, 383 p.

4. Young, L.S. and Rickinson, A.B., Epstein-Barr virus: 40 years on. Nature reviews. Cancer, 2004.

4(10): p. 757-68.

5. Niederman, J.C., Miller, G., Pearson, H.A., Pagano, J.S., and Dowaliby, J.M., Infectious

mononucleosis. Epstein-Barr-virus shedding in saliva and the oropharynx. The New England

journal of medicine, 1976. 294(25): p. 1355-9.

6. Tattevin, P., Cremieux, A.C., Descamps, D., and Carbon, C., Transfusion-related infectious

mononucleosis. Scandinavian journal of infectious diseases, 2002. 34(10): p. 777-8.

7. Gratama, J.W., Oosterveer, M.A., Zwaan, F.E., Lepoutre, J., Klein, G., and Ernberg, I.,

Eradication of Epstein-Barr virus by allogeneic bone marrow transplantation: implications for

sites of viral latency. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of

America, 1988. 85(22): p. 8693-6.

8. Meyohas, M.C., Marechal, V., Desire, N., Bouillie, J., Frottier, J., and Nicolas, J.C., Study of

mother-to-child Epstein-Barr virus transmission by means of nested PCRs. Journal of virology,

1996. 70(10): p. 6816-9.

9. Junker, A.K., Thomas, E.E., Radcliffe, A., Forsyth, R.B., Davidson, A.G., and Rymo, L.,

Epstein-Barr virus shedding in breast milk. The American journal of the medical sciences, 1991.

302(4): p. 220-3.

10. Niedobitek, G., Agathanggelou, A., Herbst, H., Whitehead, L., Wright, D.H., and Young, L.S.,

Epstein-Barr virus (EBV) infection in infectious mononucleosis: virus latency, replication and

phenotype of EBV-infected cells. The Journal of pathology, 1997. 182(2): p. 151-9.

11. Nicolas, J.S., J., Virologie Médicale, Herpesviridae : Virus d’Epstein-Barr. Presses Universitaires

de Lyon, 2002.

12. Miller, N. and Hutt-Fletcher, L.M., Epstein-Barr virus enters B cells and epithelial cells by

different routes. Journal of virology, 1992. 66(6): p. 3409-14.

13. White, J.M., Viral and cellular membrane fusion proteins. Annual review of physiology, 1990.

52: p. 675-97.

14. Fingeroth, J.D., Weis, J.J., Tedder, T.F., Strominger, J.L., Biro, P.A., and Fearon, D.T.,

Epstein-Barr virus receptor of human B lymphocytes is the C3d receptor CR2. Proceedings of the

National Academy of Sciences of the United States of America, 1984. 81(14): p. 4510-4.

15. Kirschner, A.N., Sorem, J., Longnecker, R., and Jardetzky, T.S., Structure of Epstein-Barr virus

glycoprotein 42 suggests a mechanism for triggering receptor-activated virus entry.

Structure, 2009. 17(2): p. 223-33.

16. Mullen, M.M., Haan, K.M., Longnecker, R., and Jardetzky, T.S., Structure of the Epstein-Barr

virus gp42 protein bound to the MHC class II receptor HLA-DR1. Molecular cell, 2002. 9(2): p.

375-85.

17. Hutt-Fletcher, L.M., Epstein-Barr virus entry. Journal of virology, 2007. 81(15): p. 7825-32.

18. Tugizov, S.M., Berline, J.W., and Palefsky, J.M., Epstein-Barr virus infection of polarized

tongue and nasopharyngeal epithelial cells. Nature medicine, 2003. 9(3): p. 307-14.

19. Wang, X. and Hutt-Fletcher, L.M., Epstein-Barr virus lacking glycoprotein gp42 can bind to B

cells but is not able to infect. Journal of virology, 1998. 72(1): p. 158-63.

20. Wang, X., Kenyon, W.J., Li, Q., Mullberg, J., and Hutt-Fletcher, L.M., Epstein-Barr virus uses

different complexes of glycoproteins gH and gL to infect B lymphocytes and epithelial cells.

180

21. Hadinoto, V., Shapiro, M., Sun, C.C., and Thorley-Lawson, D.A., The dynamics of EBV shedding

implicate a central role for epithelial cells in amplifying viral output. PLoS pathogens, 2009.

5(7): p. e1000496.

22. Borza, C.M. and Hutt-Fletcher, L.M., Alternate replication in B cells and epithelial cells

switches tropism of Epstein-Barr virus. Nature medicine, 2002. 8(6): p. 594-9.

23. Adams, A. and Lindahl, T., Epstein-Barr virus genomes with properties of circular DNA

molecules in carrier cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United

States of America, 1975. 72(4): p. 1477-81.

24. Rowe, M., Lear, A.L., Croom-Carter, D., Davies, A.H., and Rickinson, A.B., Three pathways of

Epstein-Barr virus gene activation from EBNA1-positive latency in B lymphocytes. Journal of

virology, 1992. 66(1): p. 122-31.

25. Kutok, J.L. and Wang, F., Spectrum of Epstein-Barr virus-associated diseases. Annual review of

pathology, 2006. 1: p. 375-404.

26. Chaudhuri, B., Xu, H., Todorov, I., Dutta, A., and Yates, J.L., Human DNA replication initiation

factors, ORC and MCM, associate with oriP of Epstein-Barr virus. Proceedings of the National

Academy of Sciences of the United States of America, 2001. 98(18): p. 10085-9.

27. Ritzi, M., et al., Complex protein-DNA dynamics at the latent origin of DNA replication of

Epstein-Barr virus. Journal of cell science, 2003. 116(Pt 19): p. 3971-84.

28. Humme, S., Reisbach, G., Feederle, R., Delecluse, H.J., Bousset, K., Hammerschmidt, W., and

Schepers, A., The EBV nuclear antigen 1 (EBNA1) enhances B cell immortalization several

thousandfold. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of

America, 2003. 100(19): p. 10989-94.

29. Levitskaya, J., et al., Inhibition of antigen processing by the internal repeat region of the

Epstein-Barr virus nuclear antigen-1. Nature, 1995. 375(6533): p. 685-8.

30. Cohen, J.I., Wang, F., Mannick, J., and Kieff, E., Epstein-Barr virus nuclear protein 2 is a key

determinant of lymphocyte transformation. Proceedings of the National Academy of Sciences

of the United States of America, 1989. 86(23): p. 9558-62.

31. Abbot, S.D., et al., Epstein-Barr virus nuclear antigen 2 induces expression of the

virus-encoded latent membrane protein. Journal of virology, 1990. 64(5): p. 2126-34.

32. Marshall, D. and Sample, C., Epstein-Barr virus nuclear antigen 3C is a transcriptional

regulator. Journal of virology, 1995. 69(6): p. 3624-30.

33. Zhao, B. and Sample, C.E., Epstein-barr virus nuclear antigen 3C activates the latent

membrane protein 1 promoter in the presence of Epstein-Barr virus nuclear antigen 2 through

sequences encompassing an spi-1/Spi-B binding site. Journal of virology, 2000. 74(11): p.

5151-60.

34. Harada, S. and Kieff, E., Epstein-Barr virus nuclear protein LP stimulates EBNA-2 acidic

domain-mediated transcriptional activation. Journal of virology, 1997. 71(9): p. 6611-8.

35. Rickinson, A.B.a.K., E, Epstein-Barr virus, in Fields Virology, D.M. Knipe, Howley, P.M., Griffin,

B.D., Lamb, R.A., Martin, M.A., Roizman, B. and Straus, S.E., Editor 2007, Lippincott Williams

et Wilkins: Philadelphia. p. 2655-2700.

36. Hatzivassiliou, E.G., Kieff, E., and Mosialos, G., Constitutive CD40 signaling phenocopies the

transforming function of the Epstein-Barr virus oncoprotein LMP1 in vitro. Leukemia research,

2007. 31(3): p. 315-20.

37. Merchant, M., Caldwell, R.G., and Longnecker, R., The LMP2A ITAM is essential for providing

B cells with development and survival signals in vivo. Journal of virology, 2000. 74(19): p.

9115-24.

38. Takada, K., Role of EBER and BARF1 in nasopharyngeal carcinoma (NPC) tumorigenesis.

Seminars in cancer biology, 2012. 22(2): p. 162-5.

39. Samanta, M., Iwakiri, D., and Takada, K., Epstein-Barr virus-encoded small RNA induces IL-10

through RIG-I-mediated IRF-3 signaling. Oncogene, 2008. 27(30): p. 4150-60.

181

40. Feederle, R., Linnstaedt, S.D., Bannert, H., Lips, H., Bencun, M., Cullen, B.R., and Delecluse,

H.J., A viral microRNA cluster strongly potentiates the transforming properties of a human

herpesvirus. PLoS pathogens, 2011. 7(2): p. e1001294.

41. Fahmi, H., Cochet, C., Hmama, Z., Opolon, P., and Joab, I., Transforming growth factor beta 1

stimulates expression of the Epstein-Barr virus BZLF1 immediate-early gene product ZEBRA by

an indirect mechanism which requires the MAPK kinase pathway. Journal of virology, 2000.

74(13): p. 5810-8.

42. Luka, J., Kallin, B., and Klein, G., Induction of the Epstein-Barr virus (EBV) cycle in latently

infected cells by n-butyrate. Virology, 1979. 94(1): p. 228-31.

43. Petosa, C., Morand, P., Baudin, F., Moulin, M., Artero, J.B., and Muller, C.W., Structural basis

of lytic cycle activation by the Epstein-Barr virus ZEBRA protein. Molecular cell, 2006. 21(4): p.

565-72.

44. Dickerson, S.J., Xing, Y., Robinson, A.R., Seaman, W.T., Gruffat, H., and Kenney, S.C.,

Documents relatifs