III.2 Le plasma autologue
VIII. LES MEDICAMENTS DERIVES DU PLASMA
VIII.3 Les immunoglobulines
On distingue les immunoglobulines (Ig) polyvalentes et les Ig spécifiques. (Ig) polyvalentes
Indications prioritaires Situations de l’AMM
Déficits immunitaires primitifs avec défaut de production d’anticorps Maladie de Kawasaki
Purpura thrombopénique immunologique de l’enfant et de l’adulte avec syndrome hémorragique viscéral
Syndrome de Guillain-Barré de l’enfant Situations hors AMM
Érythroblastopénie associée à une infection chronique par le par vo virus B19 chez les patients immunodéprimés
Maladie de Willebrand acquise , notamment associée à une gammapathie monoclonale IgG (GUSIgG),en cas d’échec ou d’intolérance à la desmopressine et/ou aux concentrés de vWF ,avec syndrome hémorragique
Prophylaxie des sujets à risque suivants, après exposition à un cas confirmé de rougeole: femme enceinte non vacciné et sans antécédents de rougeole, sujet immunodéprimé quels que soient son statut vaccinal et ses antécédents avérés de rougeole, enfants de moins de 6mois dont la mère présente une rougeole, enfants de
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moins de 6 mois dont la mère n’a pas d’antécédent de rougeole et n’a pas été vaccinée (dans le doute, une sérologie maternelle IgG peut être demandée en urgence),enfants âgés de 6à11mois non vaccinés en post-exposition dans les 72heures après contact quelque soit le statut vaccinal de la mère ou ses antécédents de rougeole(août2011) Indications à réserver aux urgences vitales et/ou en cas d’échec des
alternatives thérapeutiques Situations d’AMM
Myélome et leucémie lymphoïde chronique avec défaut de production secondaire d’anticorps, associés à des infections à répétition
Infections bactériennes récidivantes chez l’enfant infecté par le VIH Neuropathies motrices multifocales
Polyradiculonévrites inflammatoires démyélinisantes chroniques Purpura thrombopénique immunologique de l’enfant et de l’adulte Syndrome de Guillain-Barré de l’adulte
Allogreffe de cellules souches hématopoïétiques avec défaut de production d’anticorps, associée à une infection
Situations hors AMM: protocoles thérapeutiques temporaires Myasthénie aiguë dans les phases de poussées.
Syndrome de l’homme raide, réfractaire aux anticonvulsivants ou insuffisamment contrôlé par les antiépileptiques.
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Vascularites systémiques ANCA-positives en cas de rechute ou de résistance à l’association corticoïdes et immunosuppresseurs .
Dermatomyosite corticorésistante et après échec, dépendance, intolérance ou contre-indication aux immunosuppresseurs (méthotrexate, azathioprine)].
Polymyosite corticorésistante et après échec, dépendance, intolérance ou contre-indication aux immunosuppresseurs (méthotrexate, azathioprine)
Syndrome catastrophique des anti phospholipides en cas d’échec du traitement anticoagulant IV associé à des corticostéroïdes, en complément ou en alternative à la plasmaphérèse
Myosites à inclusion avec dysphagie grave.
Prophylaxie du rejet humoral de greffe rénale chez des patients immunisés ou l’ayant été , sous réserve de l’inclusion des patients dans le registre de la base CRISTAL.
Traitement curatif du rejet humoral de greffe rénale pour les patients ne pouvant être inclus dans un PHRC encours dans cette situation, sous réserve de l’inclusion des patients dans le registre de la base CRISTAL.
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Ig spécifiques
Antitétaniques Ig humaines antitétaniques : 250UI par seringue pré remplie de 2mL Posologie: préventif 250UI; curatif3000à6000UI
Anti-VHB Ig humaine de l’hépatite B:5000UIpour100mL
Posologie :dans le cadre de l’indication «prévention de récidive de l’hépatite B après transplantation hépatique chez les patients porteurs de l’antigène de surface de l’hépatite B» :10000UI le jour de l’intervention puis 10000UI/j pendant7jours puis renouvellement (10000UI) pour maintenir un taux sérique d’anticorps anti-HBs de100à150UI/L (recherche d’ADN du virus négative)et de 500UI/L (recherche d’ADN du virus positive) Chez l’enfant: adaptation en fonction de la surface corporelle=10000UI/1,73m2
Anti-D (RH1) Seringue IV ou IM à 200μg/2mL et à 300μg/2mL Prévention de l’allo-immunisation fœto-maternelle par injection d’anti-RH1chez les parturientes RH:-1
Traitement des sujets RH:-1 après transfusions incompatibles de sang RH:1 ou d’autres produits contenant des hématies RH:1
Dans le cadre d’une transfusion de concentrés plaquettaires RH1 incompatible ,il est indiqué de faire, dans les 72 heures, une injection chez les personnes de sexe féminin avec avenir obstétrical. Cette injection est réputée protéger pour 10 transfusions RH1 incompatibles pendant 3semaines
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Le principe de la transfusion sanguine actuel repose sur l’hémothérapie sélective, le patient va en effet recevoir uniquement le composant dont il a besoin (globules rouges, plaquettes, plasma).
Des trois principaux produits sanguins labiles : CGR, CPLQ, le plasma thérapeutique est le plus évolutif, obtenu a partir de sang total ou lors d’un don par aphérèse.
Son utilisation s’est accrue mais reste toujours soigneusement pesé car elle peut induire des effets indésirables parfois graves chez les patients transfusés . malgré les méthodes de sécurisation le risque de transmission virale ne peut être écarté.
La transfusion du PFC est indiquée lors de la survenue, ou la persistance des saignements hémorragiques, guidée par le résultat des tests biologique de coagulation, la prise en charge des polytraumatismes et lors des transfusion massives.
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RESUME
Titre : Le plasma thérapeutique : préparation et indications Auteur : CHAKOURI Atimad
Mots clés : transfusion, Produits sanguin labiles, plasma frais congelé , amotosalen, solvant détergent,
La transfusion sanguine est une thérapeutique qui sauve des milliers de personnes dans le monde, elle ne doit pas nuire et doit être utilisé à bon escient. C’est le transfert de sang ou de ses constituants d’un individu (donneur) à un autre (receveur).
Des trois principaux sanguins labiles, les plasmas à usage thérapeutique sont sans conteste les plus évolutifs. leurs utilisation s’est accrue vue l’amélioration de la sécurité transfusionnelle, la diminution du risque de transmission d’agents pathogènes et la confiance retrouvée des prescripteurs dans les produits sanguins . Ils peuvent être obtenus à partir de sang total ou d’un don par aphérèse.
Les formes disponibles du plasma frais congelé sont : PFC-Sécurisé par quarantaine , PFC traité par solvant détergent , PFC traité par amotosalen, et PLYO
La prescription des plasmas thérapeutique et leurs indications sont divers principalement l’hémorragie massive et aigue avec déficit global de tous les facteurs de coagulation, les coagulopathies graves de consommation , …..
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ABSTRACT
Title: Therapeutic plasma: preparation and indications Written by: CHAKOURI Atimad
Keywords : blood transfusion, labile blood products, fresh frozen plasma,
amotosalen, detergent solvent
Blood transfusion is a therapeutic that saves thousands of people worldwide, it must not harm and must be used wisely. It is the transfer of blood or its constituents from one individual (donor) to another (recipient).
Of the three main labile bloods, plasmas for therapeutic use are undoubtedly the most progressive. their use has increased in view of improving blood transfusion safety, reducing the risk of transmission of pathogens and the newfound confidence of prescribers in blood products.
They can be obtained from whole blood or apheresis donation. The available forms of fresh frozen plasma are: PFC-Quarantined, PFC solvent- detergent treated , PFC treated with amotosalen, and PLYO.
The prescription of the therapeutic plasmas and their indications are various mainly the massive and acute haemorrhage with global defect of all the coagulation factors, the severe coagulopathies of consumption, ...
93 ﺺﺨﻠﻣ ناﻮﻨﻌﻟا تﻻﺎﻤﻌﺘﺳاو ﺮﯿﻀﺤﺗ : ﺔﯿﺟﻼﻌﻟا ﺎﻣزﻼﺒﻟا : يرﻮﻜﺷ دﺎﻤﺘﻋا : فﺮط ﻦﻣ ﺔﯿﺳﺎﺳﻷا تﺎﻤﻠﻜﻟا : ﺎﻣزﻼﺑ ،مﺪﻟا ﻞﻘﻧ ،ةﺪﻤﺠﻣ ﺔﺟزﺎط ،ﺮﯿﯿﻐﺘﻠﻟ ﺔﻠﺑﺎﻘﻟا مﺪﻟا تﺎﺠﺘﻨﻣ amotosalen
،
PLYOﺐﺠﯾو ﻚﻟذ يذﺆﯾ ﻻأ ﺐﺠﯾو ، ﻢﻟﺎﻌﻟا ءﺎﺤﻧأ ﻊﯿﻤﺟ ﻲﻓ صﺎﺨﺷﻷا فﻻآ ﺬﻘﻨﯾ جﻼﻋ ﻮھ مﺪﻟا ﻞﻘﻧ
ﺨﺘﺳا
.(ﻢﻠﺘﺴﻣ) ﺮﺧآ ﻰﻟإ (عﺮﺒﺘﻣ) دﺮﻓ ﻦﻣ ﮫﺗﺎﻧﻮﻜﻣ وأ مﺪﻟا ﻞﻘﻧ ﮫﻧإ .ﺔﻤﻜﺤﺑ ﮫﻣاﺪ
داز ﺪﻘﻓ .ﺔﯿﻣﺪﻘﺗ ﺮﺜﻛﻷا ﻚﺷ ﻼﺑ ﻲھ ﻲﺟﻼﻌﻟا ماﺪﺨﺘﺳﻼﻟ ﺎﻣزﻼﺒﻟا ، ﺔﺛﻼﺜﻟا ﺔﯿﺴﯿﺋﺮﻟا ءﺎﻣﺪﻟا ﻦﯿﺑ ﻦﻣ
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ةﺪﻤﺠﻤﻟا ﺔﺟزﺎﻄﻟا ﺎﻣزﻼﺒﻟا :ﻲھ ةﺪﻤﺠﻤﻟا ﺔﺟزﺎﻄﻟا ﺎﻣزﻼﺒﻟا ﻦﻣ ﺔﺣﺎﺘﻤﻟا لﺎﻜﺷﻷا
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،
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95
[1] Cohen BJ, Taylor JJ. Structure et fonctions du corps humain. Anatomie
et physiologie. Paris: Maloine; 2008
[2] Auby J-M. Le sang humain et le droit. Paris: Presses Universitaires de
France; 1997.
[3] Robert C, Vincent P. Biologie et physiologie humaines. Paris: Vuibert;
1997.
[4] Rouger P. La transfusion sanguine. Paris: Presses Universitaires de
France; 1997
[5] Schaller J, Gerber S, Kampfer U, Lejon S, Traschsel C. Human
blood plasma proteins: structure and function. John Wiley and Sons; 2008.
[6] McCullough J. Transfusion Medicine, 2nd edition. Churchill
Livingstone; 2005.
[7] George J. Plasma Proteins. 2005.
[8] Muller J-Y, Avenard G, Martini E. Les dérivés sanguins. Paris; 1992.
[9] Quinlan GJ, Martin GS, Evans TW. Albumin: biochemical properties
and therapeutic potential. Hepatology 2005; 41: 1211-1219.
[10] Lefrère J-J, Rouger P. Transfusion sanguine : une approche sécuritaire.
2000.
[11] Antibody. Encyclopaedia Britannica Online. 2009.
[12] Jesty J. Blood coagulation. In: Sons JWa (ed.) Encyclopedia of life
96
[13] Giangrande PLF. The history of blood transfusion. British Journal of
Haematology 2000; 110: 758-767.
[14] The history of blood transfusion medicine. 2009. Bloodbook.com
[15] Watkins WM. The ABO blood group system: historical background.
Transfusion Medicine 2001; 11: 243-265.
[16] Dzik WH. The James Blundell award lecture 2006: transfusion and the
treatment of haemorrhage: past, present and future. Transfusion Medicine 2007; 17: 367-374.
[17] Greenwalt TJ. Antibodies, antigens, and anticoagulants: a historical review of a lifetime in transfusion medicine - the Landsteiner Lecture 2004. Transfusion 2005; 45: 1531-1539.
[18] Schneider WH. Blood transfusion between the wars. Journal of the
History of Medicine 2003; 58: 187-224.
[19] Hess JR, Thomas MJG. Blood use in war and disaster: lessons from the
past century. Transfusion 2003; 43: 1622-1633.
[20] Journal de Gynécologie Obstétrique 2014 ; 43 : 748-1179
[21] Thrombopénie obstétricale : diagnostic et conduite à tenir. AS
Ducloy-Bouthors et al. MAPAR, 2001 : 153-65).
[22] Prise en charge anténatale des patientes à risque d’hémorragie du
post-partum. Journal de Gynécologie obstétrique et biologie de la reproduction 2014 ; 43 : 951-65
97
[24] Ch. Giraud et al. Application transfusionnelle et thérapeutique des
techniques d’aphérèse. Transfusion clinique et biologique N°3 juillet 2002 ; 9 : 186 – 228
[25] E.A, Burgstaler. Current Instrumentation for apheresis. In: Mc Leod
BD, Price TH, Drew HJ, editors. Apheresis: principles and practice. AABB Press; 1997. p. 85–112.
[26] F. Schooneman / Transfusion Clinique et Biologique 12 (2005) 208–211 [27] Rock G. A comparison of methods of pathogen inactivation of FFP. Vox
Sang 2011;100:169–78
[28] Sachs UJ. Non-infectious serious hazards in plasma transfusion.
Transfus Apher Sci 2010;43:381–6.
[29] Shanwell A, Andersson TML, Rostgaard K, Edgren G, Hjalgrim H, Norda R, et al. Post-transfusion mortality among recipients of
ABO-compatible but non-identical plasma. Vox Sang 2009;96:316–23.
[30] Inaba K, Branco BC, Rhee P, Holcomb JB, Blackbourne LH, Shulman I, et al. Impact of ABO-Identical vs ABO-compatible non
identical plasma transfusion in trauma patients. Arch Surg 2010;145:899–906.
[31] Taraldsrud E, Kjollesdal KS, Pripp AH, Solheim BG. ABO identical
versus ABO compatible plasma transfusions. Vox Sang 2012;103:177–8
[32] Arrêté du 30 décembre 1992 interdisant la délivrance d’un produit
sanguin humain à usage thérapeutique. Journal Officiel, NOR: SANP9203357A.
98
[33] The collection, testing and use of blood and blood components in
Europe. 2008Report. Directorate for the Quality of Medicines and HealthCare of the Council of Europe (EDQM). Council of Europe, May 2011.
[34] Report of the US Department of Health and Human Services. The 2009
national blood collection and utilization survey report 2011. Washington, DC: US Department of Health and Human Services
[35] Hellstern P, Solheim BG. The use of solvent/detergent treatment in
pathogen reduction of plasma. Transfus Med Hemother 2011;38:65–70.
[36] Flamholz R, Jeon HR, Baron JM, Baron BW. Study of three patients
with thrombotic thrombocytopenic purpura exchanged with solvent/detergenttreated plasma: is its decreased protein S activity clinically related to their development of deep venous thromboses. J Clin Apher 2000;15:169–72.
[37] Williamson LM, Llewelyn CA, Fisher NC, Allain JP, Bellamy MC, Baglin TP, et al. A randomized trial ofsolvent/detergent-treated and
standard freshfrozen plasma in the coagulopathy of liver disease and liver transplantation. Transfusion 1999;39:1227–34.
[38] Martinaud C, Civadier C, Ausset S, Verret C, Deshayes AV, Sailliol
A. In vitro hemostatic properties of French lyophilized plasma. Anesthesiology 2012;117:339–46.
[39] Djoudi, R. (2013). Transfusion de plasma : produits–indications.
99
[40] Benhamou, D. (2012). Transfusion de plasma thérapeutique : produits,
indications. Actualisation 2012. Transfusion Clinique et Biologique, 19(4-5), 253–262.doi:10.1016/j.tracli.2012.09.0010
[41] Garraud, O., Chavarin, P., Boussoulade, F., Morata, P., Rochette-Eribon, S., Acquart, S., … Cognasse, F. (2014). Les différents types de
plasmas thérapeutiques sont-ils équivalents ? Transfusion Clinique et Biologique, 21(1), 31–36.
[42] Klein HG, Anstee DJ. The transf usion of platelets, leucocytes,
haematopoietic cells and plasma components. In: Mollison’s Blood Transfusion in Clinical Medicine. 11th ed Oxford: Blackwell publishing; 2004, p. 611–65.
[43] Shanwell A, Andersson TML, Rostgaard K, et al. Post-transfusion
mortality among recipients of ABO-compatible but non-identical plasma. Vox Sang 2009;96:316–23.
[44] Iorio A, Basileo M, Marchesini E, Materazzi M, Marchesi M, Esposito A, et al. The good use of plasma. A critical analysis of five
international guidelines. Blood Transfus 2008;6:18–24.
[45] Vlaar AP, in der Maur AL, Binnekade JM, Schultz MJ, Juffermans NP. A survey of physicians’ reasons to transfuse plasma and platelets in
the critically ill: a prospective single-centre cohort study. Transfus Med 2009;19:207–12.
[46] Luk C, Eckert KM, Barr RM, Chin-Yee IH. Prospective audit of the
use of fresh-frozen plasma, based on Canadian Medical Association transfusion guidelines. Can Med Assoc J 2002;166:1539–40.
100
[47] Puetz J, Witmer C, Huang YS, Raffini L. Widespread use of fresh
frozen plasma in US children’s hospitals despite limited evidence demonstrating a beneficial effect. J Pediatr 2012;160:210–5.
[48] Stanworth SJ, Grant-Casey J, Lowe D, Laffan M, New H, Murphy MF, et al. The use of fresh-frozen plasma in England: high levels of
inappropriate use in adults and children. Transfusion 2011;51:62–70.
[49] Brohi K, Singh J, Mischa H, Coats T. Acute traumatic coagulopathy. J
Trauma Inj Infect Crit Care 2003;54:1127–30.
[50] Bhangu A, Nepogodiev D, Doughty H, Bowley DM. Meta-analysis of
plasma to red blood cell ratios and mortality in massive blood transfusions for trauma. Injury 2012,
[51] Rajasekhar A, Gowing R, Zarychanski R, Arnold D, Lim W,
Crowther MA, et al. Survival of trauma patients after massive red blood cell transfusion using a high or low red blood cell to plasma transfusion ratio. Crit Care Med 2011;39:1507–13
[52] Sambasivan CN, Kunio NR, Nair PV, Zink KA, Michalek JE, Holcomb JB, et al. High ratios of plasma and platelets to packed red
blood cells do not affect mortality in nonmassively transfused patients. J Trauma Inj Infect Crit Care 2011;71:S329–36
[53] Tripodi A, Salerno F, Chantarangkul V, Clerici M, Cazzaniga M, Primignani M, et al. Evidence of normal thrombin generation in
cirrhosis despite abnormal conventional coagulation tests. Hepatology 2005;41:553–8.
101
[54] SegalJB, Dzik WH, Transfusion Medicine/Hemostasis Clinical Trials
Network. Paucity of studies to support that abnormal coagulation test results predict bleeding in the setting of invasive procedures: an evidence-based review. Transfusion 2005;45:1413–25
[55] Massicotte L, Denault AY, Beaulieu D, Thibeault L, Hevesi Z, Nozza
A, et al. Transfusion rate for 500 consecutive livertransplantations: experience of one liver transplantation center. Transplantation 2012;93:1276–81
[56] Stanworth SJ, Brunskill SJ, Hyde CJ, McClelland DBL, Murphy
MF. Is fresh frozen plasma clinically effective? A systematic review ofrandomized controlled trials. Br J Haematol 2004;26:139–52.
[57] Yang L, Stanworth S, Hopewell S, Doree C, Murphy M. Is
fresh-frozen plasma clinically effective?An update of a systematic reviewofrandomized controlled trials. Transfusion 2012;52:1673–86.
[58] Rahe-Meyer N, Solomon C, Hanke A, Schmidt DS, Knoerzer D, Hochleitner G, et al. Effects of fibrinogen concentrate as first-line
therapy during major aortic replacement surgery: a randomized, placebo-controlled trial. Anesthesiology 2013;118:40–50
[59] Rock GA, Shumak KH, Buskard NA, Blanchette VS, Kelton JG, Nair RC, et al.Comparison of plasma exchange with plasma infusion in
the treatment of thrombotic thrombocytopenic purpura. N Engl J Med 1991;325:393–7.
102
[61] Lubetsky A, Yonath H, Olchovsky D, Loebstein R, Halkin H, Ezra D. Comparison of oral vs intravenous phytonadione (vitamin K1) in
patients with excessive anticoagulation: a prospective randomized controlled study. Arch Intern Med 2003;163:2469–73.
[62] Demeyere R, Gillardin S, Arnout J, Strengers PFW. Comparison of
fresh frozen plasma and prothrombin complex concentrate for the reversal of oral anticoagulants in patients undergoing cardiopulmonary bypass surgery: a randomized study. Vox Sang 2010;99:251–60.
[63] RideauC, Gaertner E,Blay M, TrojaniC, Toulon P.
Successfulmanagement of fresh-frozen plasma transfusion therapy based upon clinical symptoms for total knee arthroplasty in a patient with severe factor V deficiency. Haemophilia 2010;16:381–3.
[64] de Alarcon P, Benjamin R, Dugdale M, Kessler C, Shopnick R, Smith P, et al. Fresh frozen plasma prepared with amotosalen HCl
(S-59) photochemical pathogen inactivation: transfusion of patients with congenital coagulation factor deficiencies. Transfusion 2005;45:1362– 72.
[65] ANSM-HAS-Juin 2012
[66] Popovsky MA, Moore SB. Diagnostic and pathogenetic considerations
in transfusion associated acute lung injury. Transfusion 1985; 25:573–7.
[67] Boshkov LK. Transfusion related acute lung injury (TRALI): an
evolving understanding of the role of anti-leukocyte antibodies. Vox Sang 2002;83(Suppl.1):299–303.
103
[68] MercatA. Complications non infectieuses et non immunologiques des
transfusions plaquettaires. Réanimation 2003;12:575–9.
[69] KolleeMH, SchusterDP. Theacuterespiratorydistress. NEnglJMed
1995;5:27–37.
[70] Popovsky MA.Transfusion and lung injury.Transfus Clin Biol 2001;
8:272–7.
[71] Popovsky MA. Breathlessness and Blood: a combustible
combination.Vox Sang 2002;83(Suppl 1):147–50
[72] Moalic, V., Vaillant, C., & Ferec, C. (2005). Syndrome de détresse
respiratoire aiguë post-transfusionnel : une pathologie méconnue. Pathologie Biologie, 53(2), 111–115.