1) Présentations
Ce travail de thèse a donné lieu à plusieurs communications orales et affichées en congrès régionaux, nationaux et internationaux.
a) Présentations orales
Journées Francophones de Nutrition (JFN 2014) Bruxelles, Belgique
« Modification précoce de la détection hypothalamique du glucose lors d'un régime gras et sucré : rôle de la dynamique mitochondriale »
Forum des Jeunes Chercheurs (FJC 2014) Besançon, France.
« Sensibilité hypothalamique au glucose chez le rat soumis à un régime gras enrichi en saccharose : rôle de la dynamique mitochondriale et des mROS »
b) Posters
Annual meeting of European Association for the Study of Diabetes (EASD 2014) Vienne, Autriche.
« Alteration of hypothalamic glucose sensing in High Fat-High Sucrose diet fed rats: Early defects linked to mitochondrial dynamics and mROS signaling »
Société Francophone du Diabètes (SFD 2014) Paris, France.
« Effet de l’exposition à un régime gras enrichi en saccharose sur la sensibilité hypothalamique au glucose chez le rat »
Association Française d’Etude et de Recherche sur l’Obésité (AFERO 2014), Dijon,
France.
« Effet de l’exposition à un régime gras enrichi en saccharose sur la sensibilité hypothalamique au glucose chez le rat : rôle de la dynamique mitochondriale »
Forum des Jeunes Chercheurs (FJC 2013) Dijon, France. Prix du meilleur poster
« Effet d’un régime gras enrichi en saccharose sur la détection hypothalamique du glucose »
194
2) Participation à des travaux de recherche
Au cours de ma thèse, j’ai également participé à d’autres études, dans le cadre de collaborations.
Une étude menée par Lionel Carneiro et al., dans l’équipe, sur l’effet de la ghréline sur l’altération de la détection hypothalamique du glucose, via la diminution de la respiration mitochondriale et de la signalisation redox chez le rat. J’ai participé à la caractérisation du modèle de rats injectés avec un antagoniste du récepteur à la ghréline. Ce travail donnera lieu à la publication d’un article.
Une étude réalisée par Na Li et al., sur l’effet d’une restriction alimentaire chez l’adulte présentant des altérations oxydatives, métaboliques et cardiovasculaires induits par une sur-nutrition postnatale. Dans le cadre de cette étude, j’ai participé à l’élaboration d’un protocole d’oxygraphie sur le muscle cardiaque. Ce travail donnera lieu à la publication d’un article.
Une étude menée par Sébastien Rivière et al., sur l’effet d’un régime diabétogène,
enrichi en fructose, sur l’épithélium olfactif et le comportement guidé par les odeurs chez la souris. J’ai ainsi participé à la mise en place et la réalisation de western blot afin de mesurer l’expression du récepteur à l’insuline dans l’épithélium olfactif des souris nourries avec le régime fructose comparé aux souris contrôles. Ce travail donnera lieu à la publication d’un article.
196
Re fe rences
Abizaid, A., and Horvath, T.L. (2008). Brain circuits regulating energy homeostasis. Regul. Pept. 149, 3–10.
Acín-Pérez, R., Fernández-Silva, P., Peleato, M.L., Pérez-Martos, A., and Enriquez, J.A. (2008). Respiratory active mitochondrial supercomplexes. Mol. Cell 32, 529–539.
Addis, P., Shecterle, L.M., and A. St. Cyr, J. (2012). Cellular Protection During Oxidative Stress: A Potential Role for D-ribose and Antioxidants. J. Diet. Suppl. 9, 178–182.
Alán, L., Smolková, K., Kronusová, E., Santorová, J., and Jezek, P. (2009). Absolute levels of transcripts for mitochondrial uncoupling proteins UCP2, UCP3, UCP4, and UCP5 show different patterns in rat and mice tissues. J. Bioenerg. Biomembr. 41, 71–78.
Allard, C., Carneiro, L., Collins, S.C., Chrétien, C., Grall, S., Pénicaud, L., and Leloup, C. (2013). Alteration of hypothalamic glucose and lactate sensing in 48h hyperglycemic rats. Neurosci. Lett. 534, 75– 79.
Allard, C., Carneiro, L., Grall, S., Cline, B.H., Fioramonti, X., Chrétien, C., Baba-Aissa, F., Giaume, C., Pénicaud, L., and Leloup, C. (2014). Hypothalamic astroglial connexins are required for brain glucose sensing-induced insulin secretion. J. Cereb. Blood Flow Metab. 34, 339–346.
Alquier, T., Leloup, C., Atef, N., Fioramonti, X., Lorsignol, A., and Pénicaud, L. (2003). Cerebral insulin increases brain response to glucose. J. Neuroendocrinol. 15, 75–79.
Alvarez, E., Roncero, I., Chowen, J.A., Vázquez, P., and Blázquez, E. (2002). Evidence that glucokinase regulatory protein is expressed and interacts with glucokinase in rat brain. J. Neurochem. 80, 45–53.
Amiel, S. (1991). Glucose counter-regulation in health and disease: current concepts in hypoglycaemia recognition and response. Q. J. Med. 80, 707–727.
Amitani, M., Asakawa, A., Amitani, H., and Inui, A. (2013). The role of leptin in the control of insulin-glucose axis. Front. Neurosci. 7, 1–12.
Anand, B.K., and Brobeck, J.R. (1951). Hypothalamic control of food intake in rats and cats. Yale J. Biol. Med. 24, 123–140.
Anand, B.K., Chhina, G.S., Sharma, K.N., Dua, S., and Singh, B. (1964). Activity of single neurons in the hypothalamic feeding centers: effect of glucose. Am. J. Physiol. 207, 1146–1154.
de Andrade, I.S., Zemdegs, J.C.S., de Souza, a P., Watanabe, R.L.H., Telles, M.M., Nascimento, C.M.O., Oyama, L.M., and Ribeiro, E.B. (2015). Diet-induced obesity impairs hypothalamic glucose sensing but not glucose hypothalamic extracellular levels, as measured by microdialysis. Nutr. Diabetes 5, e162.
Andrews, Z.B., Diano, S., and Horvath, T.L. (2005). Mitochondrial uncoupling proteins in the CNS: in support of function and survival. Nat. Rev. Neurosci. 6, 829–840.
Andrews, Z.B., Liu, Z.-W., Walllingford, N., Erion, D.M., Borok, E., Friedman, J.M., Tschöp, M.H., Shanabrough, M., Cline, G., Shulman, G.I., et al. (2008). UCP2 mediates ghrelin’s action on NPY/AgRP neurons by lowering free radicals. Nature 454, 846–851.
Archer, S.L. (2013). Mitochondrial dynamics--mitochondrial fission and fusion in human diseases. N. Engl. J. Med. 369, 2236–2251.
198 Arletti, R., Benelli, A., and Bertolini, A. (1990). Oxytocin inhibits food and fluid intake in rats. Physiol. Behav. 48, 825–830.
Arluison, M., Quignon, M., Nguyen, P., Thorens, B., Leloup, C., and Penicaud, L. (2004a). Distribution and anatomical localization of the glucose transporter 2 (GLUT2) in the adult rat brain--an immunohistochemical study. J. Chem. Neuroanat. 28, 117–136.
Arluison, M., Quignon, M., Thorens, B., Leloup, C., and Penicaud, L. (2004b). Immunocytochemical localization of the glucose transporter 2 (GLUT2) in the adult rat brain. II. Electron microscopic study. J. Chem. Neuroanat. 28, 137–146.
Atalayer, D., Robertson, K.L., Haskell-Luevano, C., Andreasen, A., and Rowland, N.E. (2010). Food demand and meal size in mice with single or combined disruption of melanocortin type 3 and 4 receptors. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 298, R1667–R1674.
Atef, N., Ktorza, A., and Pénicaud, L. (1995). CNS involvement in the glucose induced increase of islet blood flow in obese Zucker rats. Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 19, 103–107.
Atef, N., Laury, M.C., N’Guyen, J.M., Mokhtar, N., Ktorza, a., and Penicaud, L. (1997). Increased pancreatic islet blood flow in 48-hour glucose-infused rats: Involvement of central and autonomic nervous systems. Endocrinology 138, 1836–1840.
Avshalumov, M. V, and Rice, M.E. (2003). Activation of ATP-sensitive K+ (K(ATP)) channels by H2O2 underlies glutamate-dependent inhibition of striatal dopamine release. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.
100, 11729–11734.
Babior, B.M. (2004). NADPH oxidase. Curr. Opin. Immunol. 16, 42–47.
Bach, D., Pich, S., Soriano, F.X., Vega, N., Baumgartner, B., Oriola, J., Daugaard, J.R., Lloberas, J., Camps, M., Zierath, J.R., et al. (2003). Mitofusin-2 determines mitochondrial network architecture and mitochondrial metabolism. A novel regulatory mechanism altered in obesity. J. Biol. Chem. 278, 17190– 17197.
Bagnol, D., Lu, X.Y., Kaelin, C.B., Day, H.E., Ollmann, M., Gantz, I., Akil, H., Barsh, G.S., and Watson, S.J. (1999). Anatomy of an endogenous antagonist: relationship between Agouti-related protein and proopiomelanocortin in brain. J. Neurosci. 19, RC26.
Balkan, B., and Dunning, B.E. (1994). Glucosamine inhibits glucokinase in vitro and produces a glucose-specific impairment of in vivo insulin secretion in rats. Diabetes 43, 1173–1179.
Banks, W.A. (2004). The source of cerebral insulin. Eur. J. Pharmacol. 490, 5–12.
Barson, J.R., Morganstern, I., and Leibowitz, S.F. (2013). Complementary roles of orexin and melanin-concentrating hormone in feeding behavior. Int. J. Endocrinol. 2013, 983964.
Barsoum, M.J., Yuan, H., Gerencser, A.A., Liot, G., Kushnareva, Y., Gräber, S., Kovacs, I., Lee, W.D., Waggoner, J., Cui, J., et al. (2006). Nitric oxide-induced mitochondrial fission is regulated by dynamin-related GTPases in neurons. EMBO J. 25, 3900–3911.
Battey, J., and Clayton, D. a (1978). The transcription map of mouse mitochondrial DNA. Cell 14, 143–156.
Bélanger, M., Allaman, I., and Magistretti, P.J. (2011). Brain energy metabolism: Focus on Astrocyte-neuron metabolic cooperation. Cell Metab. 14, 724–738.