3. Résultats et Commentaire
3.2. Commentaire
Au terme de notre étude, il ressort que parmi les examens de selles et de sang réalisés, 58 et 37 enfants sur 132, hébergeaient respectivement le paludisme et les parasites intestinaux, soient 43,94% et 18,03%, respectivement. Le taux pas très élevé du paludisme peut être expliqué par les campagnes de distribution de moustiquaires imprégnées à longue durée d’action par le Ministère de la Santé.
[1-6[ [6-11[ [11-15]
54,54%
31,82%
13,64%
Statistiquement, le portage plasmodial en fonction des facteurs âge et sexe n’est pas démontré (p > 0,05).
En ce qui concerne la prévalence des parasitoses intestinales trouvée, leur faible taux de prévalence peut être lié à la méthode de concentration utilisée. Cette méthode ne diagnostique pas tous les parasites. Il peut aussi être expliqué par le fait que l’étude a été faite dans une ville où les règles d’hygiène sont de plus en plus respectées et où l’automédication est pratiquée par la majorité. Ainsi avons-nous noté que la majorité des patients pratiquait le déparasitage systématique. Nos résultats sont comparables à ceux de Bouskraoui [22] en 2010 au Maroc et Ozgumus et coll. [23] en 2007 en Turquie qui ont trouvé respectivement une fréquence de 23,78% et de 15%.
Cependant, nos résultats sont nettement inférieurs à ceux de SENA M’PO [24] 2013 au Bénin dans la localité de Tanguiéta, qui a trouvé 76,03% de cas positifs.
Le portage des parasitoses intestinales en fonction des facteurs âge et sexe n’est pas statistiquement démontré (p > 0,05).
Parmi les 22 cas de co-infection diagnostiqués, la tranche d’âge de [1-6[ a été la plus touchée avec une prévalence de 54,54%. Ceci peut être dû à la mobilité de ces enfants, à leur contact quasi permanent avec le sol et à leur exposition aux piqûres de moustiques durant les heures de distractions télévisées. Le sexe féminin est le plus atteint par la co-infection (63,63% contre 36,37% pour le sexe masculin). Le portage de la co-infection en fonction du facteur sexe fut démontré mais ne l’était pas en fonction de l’âge.
CONCLUSION ET
SUGGESTIONS
CONCLUSION
L’association parasitaire est très répandue chez les sujets vivant dans les zones intertropicales. L’organisme des sujets porteurs d’infections concomitantes réagit et devient le lieu de multiples interactions. L’étude de ces cas d’association a fait l’objet de notre étude. Il s’agit des cas diagnostiqués au laboratoire et non pas d’un dépistage actif de la population.
Au terme de l’étude, nous n’avons pas eu de lien entre le paludisme et les parasitoses intestinales. Cela signifie qu’un sujet qui souffre du paludisme, ne porte pas systématiquement un parasite intestinal.
SUGGESTIONS
Au vu de ces résultats, Nous suggérons :
Aux cliniciens d’associer systématiquement la coprologie parasitaire à la goutte épaisse demandée pour les enfants admis en consultation pour des cas de paludisme.
Aux techniciens des laboratoires des hôpitaux de Bethesda, de pratiquer en plus de la concentration de Willis, celle de Bailenger qui est bien meilleure. Ceci augmenterait les chances d’identification des formes parasitaires et diminuerait les cas de faux négatifs.
Aux autorités de Bethesda, de fournir au laboratoire les réactifs nécessaires pour la réalisation de la méthode de concentration de Bailenger.
REFERENCES
BIBLIOGRAPHIQUES
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[8] Fall D : Prévalence du paludisme et des parasitoses intestinales au niveau du centre de sante Nabil Choucair de la patte d'oie Builders. Thèse de doctorat. biologique du paludisme. Revue Tunisienne d’Infectiologie 2010, 4 : 5- 9.
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[14] ANOFEL : Parasitoses et mycoses des régions tempérées et tropicales.
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[17] Gentillini M : Médecine tropicale. Flamarion, Paris, 5e éd 1993, 91-201.
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[20].http://dpd.cdc.gov/DPDx/HTML/ImageLibrary/Amebiasis_il.htm [21].www.jimdo.fr
[22].Bouskraoui : Dépistage des parasites intestinaux chez les enfants consultant à l’hôpital de jour de pédiatrie au CHU Mouhamed VI de Marrakech. Thèse de doctorat en médecine 2010.
[23] Ozgumus OB, Karaoglu SA : Screening of intestinal parasites of children in special day nurseries in the city of Rize. Tukiye Parazitol Derg 2007.
[24] SENA M’PO FB : Prévalence des parasitoses intestinalis chez les maladies pédiatriques à l’hôpital de zone Saint Jean de Dieu de Tanguiéta (HZ SJDT).
Mémoire de licence professionnelle en analyses biomédicales, Université d’Abomey-Calavi 2013.
[25]Deluol A-M, Levillayer H, Poirot J-L : Diagnostic du paludisme.
Développement et Santé n° 138 1998.
ANNEXES
Fiche de renseignements
Date : ………/ ………/ 2014 N°
Nom et Prénoms :……….……… Age :………… Sexe : Masculin Féminin Domicile :………... Téléphone :………
Résultats
Paludisme Helminthiase
Goutte épaisse : Positive Négative Macroscopie : ………..………
…...
Frottis sanguin : P.falciparum P.vivas P.malariae P.ovale P. knowlesi
Etat frais :……….
……….
Densité Parasitaire :………...p/µl de sang
Concentration de Bailenger : ………..
……….
Figure 12: Plasmodium à divers stades: aspects sur frottis minces [25]
TABLE DES MATIERES
LISTE DES ENSEIGNANTS CHARGES DE LA LICENCE PROFESSIONNELLE DE BIOLOGIE
HUMAINE ...ii
DEDICACES... iv
REMERCIEMENTS ... vii
HOMMAGES ... ix
LISTE DES SIGLES ET ABREVIATIONS ... xi
LISTE DES TABLEAUX ... xii
1.1.1. Définition et Epidémiologie ... 4
1.1.2. Agents pathogènes ... 5
1.1.3. Répartition géographique ... 6
1.1.4. Vecteurs et mode de transmission ... 7
1.1.5. Cycle biologique des plasmodies ... 7
1.1.5.1. Chez l'homme ... 8
1.1.5.2. Chez l'anophèle femelle ... 9
1.1.6. Symptomatologie du paludisme ... 11
1.1.6.2. Accès palustre à fièvre périodique: accès intermittent ... 11
1.1.6.3. Paludisme grave... 12
1.1.6.4. Complications du paludisme ... 12
1.1.7. Diagnostic biologique ... 13
1.1.7.1. Diagnostic direct : Examen après coloration ... 13
1.1.7.2. Diagnostic indirect: Méthodes sérologiques ... 13
1.1.7.3. Méthode de recherche: la Protéine Réactive C (PCR) ... 14
1.1.8. Prophylaxie du paludisme ... 15
1.1.8.1. Prophylaxie individuelle ... 15
1.1.8.2. Mesures collectives : lutte anti- vecteur ... 16
1.1.8.3. Vaccin contre le paludisme: Etat actuel des recherches ... 16
1.2. Parasitoses intestinales ... 16
1.2.1. Définitions ... 17
1.2.2. Classification des parasites digestifs ... 17
1.2.3. Diagnostic des parasitoses intestinales ... 18
1.2.3.1. Diagnostic clinique ... 18
1.2.3.2. Diagnostic parasitologique... 18
1.2.4. Mode de transmission ... 19
1.2.4.1. Transmission par voie orale ... 19
1.2.4.2. Transmission transcutanée ... 20
1.2.4.3. Transmission par inhalation ... 20
1.2.7. Description des parasites intestinaux rencontrés au cours de l’étude ... 20
1.2.5.1. Protozoaires ... 20
1.2.5.2. Helminthes ... 25
1.2.6. Prophylaxie des parasitoses intestinales ... 27
1.2.6.1. Prophylaxie individuelle ... 27
1.2.6.2. Prophylaxie collective ... 28
2. Matériel et méthodes ... 29
2.1. Cadre ... 30
2.1.1. Historique et présentation de l’hôpital de Bethesda ... 30
2.1.2. Présentation du laboratoire de l’hôpital Bethesda ... 32
2.1.3. Organisation du travail au laboratoire ... 32
2.2. Matériel pour la réalisation des examens ... 33
2.2.1. Echantillon ... 33
2.4. Réalisation des analyses ... 36
2.4.1. La goutte épaisse ... 37
2.4.1.1. Technique de confection et de coloration ... 37
2.4.1.2. Technique de lecture ... 37
2.4.2. Le frottis mince ... 38
2.4.2.1. Technique de confection et de coloration ... 38
2.4.2.2. Technique de lecture ... 38
2.4.3. Réalisation de la coprologie parasitaire ... 38
2.4.3.1. Prélèvement ... 38
2.4.3.2. Examen simple ... 39
2.4.3.3. Concentration de Bailenger ... 39
2.5. Calcul des indices ... 39
2.6. Traitement des données ... 41
3. Résultats et Commentaire ... 42
3.1. Résultats 43 3.1.1. Caractéristiques de l’échantillon ... 43
3.1.2. Prévalence du paludisme... 43
3.1.3. Prévalence du parasitisme intestinal ... 44
3.1.4. Prévalence de la co-infection ... 47
3.2. Commentaire ... 48