Une étude parasitologique des crachats a été réalisée sur 17 (/58,5 %) patients du Bénin et 23 (11,5%) patients venus du Nigéria. Ce sont des patients symptomatiques avec recherche de BARR négative consultés au centre de Pneumo-phtyisiologie d’AKRON pour suspicion de tuberculose. Les patients d’âge de 30 à 50 ans sont les plus représentés venus des deux pays soit 17,5% de la population consultée.
Naturellement, les patients venus du Bénin sont les plus nombreux que ceux venus du Nigéria car le centre se trouve au Bénin. Sur un total de 200 crachats analysés par la technique de soude à 3%, 40 sont positifs soit 20%. Les parasites identifiés au microscope photonique sont des champignons révélés sous forme de levures. Aucune helminthiase n’a été diagnostiquée. Aka et Al ont obtenu le même résultat à Divo en côte d’ivoire au cours d’une étude de séroépidémiologie de paragonimose humaine. Ils n’ont trouvé aucun œuf de Paragonimus sur 167 personnes examinées. Par contre ils ont observé des anticorps contre Paragonimus africanus. Une telle étude sérologique chez les patients consultés à
AKRON peut lever au coin de voile sur l’existence de paragonimose au Bénin.
Commentaire général :
COMMENTAIRE
GENERAL
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Au terme de ce modeste travail de contribution à l’examen parasitologique des crachats reçus au Centre Hospitalier de Pneumo Phtysiologie d’Akron, un certain nombre de points méritent d’être retenus.
- Aucun cas de diagnostic de certitude d’helminthiase n’a été détecté au Bénin et au Nigéria.
- 20% des échantillons négatifs pour la recherche de BAAR contiennent des champignons observés sous forme de levure au microscope photonique.
- Considérant l’aspect macroscopique des crachats, 7,5% des crachats rouillés (hémoptiques) et 12,5 % des crachats sanguinolents renferment des levures.
- La méthode à la soude à 3% a été la technique simple à manipuler que nous avons utilisée.
Une étude plus approfondie sur la séro-épidémiologie des helminthiases en particulier de la paragonimose humaine dans un contexte de dépistage systématique permettra de comprendre la situation des expectocations négatives pour la recherche de BAAR. De même une étude entomologique sur le portage de métacercaire spécifique de paragonimus par les crabes locaux permettra de tirer une conclusion sur cette pathologie de paragonimose au Bénin et au Nigéria.
CONCLUSION
Présenté et soutenu par Jeanne Y. GBAGUIDI KPODJEDO Page 33
A l’endroit des biologistes médicaux
- Nous suggérons qu’ils adoptent pour la recherche des parasites dans le crachat, la méthode à la soude à 3% qui, non seulement est une méthode de concentration, mais facilite aussi la lecture de la préparation.
- Pratiquer l’examen parasitologique des crachats chez les patients chez qui la recherche de BAAR est négative et dont les aspects macroscopiques des crachats sont suspects, c'est-à-dire rouillés ou sanguinolents.
SUGGESTIONS
Présenté et soutenu par Jeanne Y. GBAGUIDI KPODJEDO Page 34 1999.Champignons et parasites isolés dans 142 liquides d’aspiration bronchique à Abidjan (Côted’Ivoire). Med Afr Noire. 46:362-365.
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Présenté et soutenu par Jeanne Y. GBAGUIDI KPODJEDO Page 36
LISTES DES ENSEIGNANTS ………..………… 2
DEDICACE ………..……….. 3
REMERCIEMENTS……… 4
HOMMAGES………...…….... 6
LISTE DES TABLEAUX……… 7
LISTE DES FIGURES………. 7
RESUME………..…… 8
ABSTRACT……….…… 9
SOMMAIRE………... 10
INTRODUCTION………...……… 11
PARTIE1 : Synthèse bibliographique………. 13
1. PARASITOSES PULMONAIRES………. 14
1.1. Paragonimoses ………... 14
1.2. Kystes hydatiques pulmonaires……… 15
1.3. Amibiases intestinales……….. 15
1.4. Toxocarose………... 16
1.5.Mycoses………. 16
1.5.1.Aspergillose……… 16
1.5.2. Pneumocystose à Pneumocystis Jurocécii……….…….... 17
1.5.3. Aspergillose pulmonaire invasive……….…. 18
1.5.4. Candidoses……….… 18
1.5.5. Histoplasmose……… 18
1.5.6. Cryptococcose……….……... 19
Partie II : Matériel et méthodes ……….….…... 21
2.1. Cadre de travail……….…… 22
2.1.2. Cadre Institutionnel ………..…. 22
2.2. Matériel……….… 23
2.2.1. Echantillonnage……….. 23
2.2.2. Matériel et réactifs utilisés ……….……… 23
TABLE DES MATIERES
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2.3. Méthodes utilisés……….…….. 24
2.3.1. Examen macroscopique des crachats……….… 24
2.3.2. Examen direct des crachats……… 24
2.3.3. Méthode direct simple……… 25
2.3.4. Coloration au bleu de méthylène………...……… 25
2.3.5. Analyse des données……….. 26
Partie III : Résultats et commentaires……….………. 27
3.1. Résultats………..……….. 28
Commentaires général………..……… 31
Conclusion………...32
Suggestions ………. 33
Références bibliographiques……… 34