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Inventaire et cartographie des communautés microbiennes des sols de la zone OPE ANDRA

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Academic year: 2022

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(1)

HAL Id: hal-02740777

https://hal.inrae.fr/hal-02740777

Submitted on 2 Jun 2020

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Inventaire et cartographie des communautés microbiennes des sols de la zone OPE ANDRA

Samuel Dequiedt, Nicolas Chemidlin Prévost-Bouré, Lionel Ranjard

To cite this version:

Samuel Dequiedt, Nicolas Chemidlin Prévost-Bouré, Lionel Ranjard. Inventaire et cartographie des communautés microbiennes des sols de la zone OPE ANDRA. Journée scientifique de l’Observatoire pérenne de l’environnement (OPE), Observatoire Pérenne de l’Environnement (OPE). FRA., Nov 2016, Paris, France. �hal-02740777�

(2)

Inventaire et cartographie des communautés microbiennes des sols de la zone OPE ANDRA

- Samuel Dequiedt, Nicolas Chemidlin Prevost-Bourré, Lionel Ranjard - INRA de Dijon – UMR Agroécologie

(3)

La diversité microbienne dans les sols Le sol

= le réservoir de diversité microbienne de notre planète

= un patrimoine naturel

Les microorganismes du sol sont abondants et avec une forte diversité !!

Bactéries

Champignons

1 g sol

1 million à 1 milliard d’individus Mille à 1 million d’espèces

Mille à 1 million d’individus Mille à 100 milles espèces

1 hectare 2 500 kg C

3 500 kg C 5 – 6 UGB

(4)

La diversité microbienne dans les sols

Capacités d’adaptation énormes

Temps de génération court

Réponse rapide aux modifications environnementales

Petite taille Plasticité du génome

Implications dans de nombreuses fonctions

= les ingénieurs chimiques du sol

Lutte contre pathogènes Minéralisation matière organique,

recyclage carbone, nutriments

Structuration du sol Dépollution du sol

Matière organique

(humus)

C-H-O-N-S

microorganismes NH4+

NO3-

BioIndicateurs per>nents d’évalua>on de la qualité biologique des sols et de l’impact des pra>ques

(5)

L’écologie moléculaire microbienne

Sol

Substrat

Metaproteome

Produit

Metabolome

Activité Protéine

  ARN

Metatranscriptome

2 3 4

Fonctionnalité Abondance

Diversité génétique, taxonomique et fonctionnelle

Metagenome

  ADN

1

Services

(6)

ObjecHfs du projet dans le cadre de l’OPE-ANDRA

D’un point de vue technique :

-  Établir une base de données de l’abondance et structure généHque microbienne des sols de l’OPE

D’un point de vue opéra>onnel :

-  Etablir une banque de conservaHon à long terme d’échanHllons de sol de référence -  Elaborer des cartes de distribuHon de l’abondance et diversité

-  QuanHfier l’impact des acHvités anthropiques

D’un point de vue fondamental :

-  Évaluer l’abondance et la structure généHque des communautés microbiennes -  Définir la distribuHon spaHale des communautés microbiennes

-  Hiérarchiser les filtres environnementaux

(7)

Stratégie d’échanHllonnage

-  Grille systéma>que selon une maille carrée de 1,5 km de côté (117 points – campagnes 2009 à 2012)

-  Sites supplémentaires (13 – campagne 2013) -  Sites aléatoires (16 – campagne 2013)

Réseau de surveillance des sols de l’OPE

= 146 sites mis en place par l’Unité InfoSol – INRA d’Orléans

25 prélèvements -> échanHllon composite

Conservatoire des Ressources Géné>ques Microbiennes

(8)

CaractérisHques physico-chimiques des sols de l’OPE

Variabilité importante des types de sol

Sols principalement à textures fines riches en maHères organiques

(9)

Stratégie technique

Sol

Métagénome microbien

qPCR 16S/18S ADNr

Biomasse Moléculaire

Microbienne Densité bactéries

Densité champignons Rapport Champ./Bactéries Quan>té ADN sol

Structure Géné>que des communautés

microbiennes Génotypage - ARISA

Abondance microbienne

(10)

Résultats : Biomasse Moléculaire Microbienne

0"

5"

10"

15"

20"

25"

0"&"20" 20"&"40" 40"&"60" 60"&"80" 80"&"100" 100"&"120" 120"&"140" 140"&"160" 160"&"180" 180"&"200" 200"&"220" 220"&"240" 240"&"260" 260"&"280" 280"&"300" 300"&"320" 320"&"340"

Effec%f'

Biomasse'Moléculaire'Microbienne'

(rendement"d'extrac6on"d'ADN"&"µg"d'aDN/g"de"sol)'

éch."grille"(2009"&"2012)" éch."supplémentaires"(2013)" éch."aléatoires"(2013)"

AmélioraHon de la représentaHvité avec les échanHllons de la campagne 2013

(11)

Résultats : Biomasse Moléculaire Microbienne

0"

5"

10"

15"

20"

25"

30"

0"

100"

200"

300"

400"

500"

600"

0")"20" 20")"40" 40")"60" 60")"80" 80")"100" 100")"120" 120")"140" 140")"160" 160")"180" 180")"200" 200")"220" 220")"240" 240")"260" 260")"280" 280")"300" 300")"320" 320")"340" Nombre'de'sols'OPE'ANDRA'

Nombre'de'sols'RMQS'

Biomasse'Moléculaires'Microbienne'(µg'd'ADN/g'de'sol)' sols"RMQS" sols"OPE"ANDRA"

Biomasse(Moculaire(Microbienne(

ANDRA$OPE$

Dans la gamme de variaHon naHonale Valeurs plus hautes en moyenne

(12)

Résultats : Biomasse Moléculaire Microbienne

RéparHHon spaHale structurée (peu robuste staHsHquement)

Biomasse(Moculaire(Microbienne(

ANDRA$OPE$

(13)

Résultats : Biomasse Moléculaire Microbienne

Influence de la texture du sol, du pH et du taux de maHère organique

a"

a,b"

b"

b"

Biomasse microbienne:

Prairies > Forêt > Culture (idem naHonal (cf RMQS))

3 sites

76 sites

45 sites 22 sites

Prairies Forêt

Cultures

(14)

Résultats : Densités de Bactéries et Champignons

0"

5"

10"

15"

20"

25"

30"

0,25" 1,25" 2,25" 3,25" 4,25" 5,25" 6,25" 7,25" 8,25" 9,25" 10,25" 11,25" 12,25" 13,25" 14,25" 15,25" 16,25" 17,25" 18,25"

Ra#on&densité&Champignons&/&densité&

Bactéries&(%)&

0"

5"

10"

15"

20"

25"

30"

35"

40"

7,1" 7,5" 7,9" 8,3" 8,7" 9,1" 9,5" 9,9" 10,3" 10,7" 11,1"

Nombre&de&site&de&l'OPE&ANDRA&

Densités&(log10&de&copies&d'ADNr/g&de&sol)&

Bactéries" Champignons"

Ech."Grille"(2009B2012)"

Ech."Aléatoires"(2013)"

Ech."Supplémentaires"(2013)"

RaHo"

RaHo équilibré (1 – 5%) dans la majorité des sites

Densités de bactéries et de champignons dans la gamme de ce qui est observé à

l’échelle naHonale

(15)

Résultats : Densités de Bactéries et Champignons

Bactéries Champignons Ra>o

DistribuHon spaHale propre des bactéries et champignons (peu robuste staHsHquement)

(16)

Résultats : Densités de Bactéries et Champignons

a"

a,b"

b"

a"

Non"significa-f"

Non"significa-f"

Prairies Forêt

Cultures

Bactéries : argiles, pH et C/N Champignons : sables

RaHo : C/N

Bactéries : Prairies > Cultures > Forêt Champignons : non significaHf

RaHo : Forêt > Cultures = Prairies (non significaHf) -> typicité des forêts de l’OPE

Bactéries

Champignons

Ra>o

(17)

Résultats : Structure GénéHques des Communautés

(Infosol Orléans) Sol ADN

200 pb 1659 pb

1120 pb

698 pb

Génotypage (B/F-ARISA)

= composi>on de la communauté Technique :

Bactéries Champignons

Bonne complémentarité des campagnes de prélèvement Bactéries : dans la gamme naHonale, bonne variabilité

(18)

Résultats : Structure GénéHques des Communautés

Ajributs écologiques propres des bactéries et champignons

Patchs de 3 à 6km (280km à l’échelle de la France) -> existence de facteurs proximaux qui structurent les communautés

Bactéries Champignons

(19)

Résultats : Structure GénéHques des Communautés

Bactéries structurées par pH, textures

fines, C/N Champignons structurés par C/N, pH, maHères organiques

Bactéries Champignons

(20)

Résultats : Structure GénéHques des Communautés

Bactéries Champignons

Gradient Forêts – Prairies - Cultures Cultures ≠ Prairies ≠ Forêts

(21)

Conclusions et PerspecHves

Cons>tu>on de la banque de sols

-  Point de référence pour iniHer le suivi dynamique des indicateurs microbiens -  Complémentarité des échan>llons (grille, aléatoires, supplémentaires)

-> bonne représentaHvité du disposiHf

-  Conserva>on des ressources géné>ques à long terme permejant de suivre l’évoluHon des quesHonnements et les avancées technologiques

Génotypage

= structure généHque

« Hier » Aujourd’hui

Métagénome microbien

Séquençage haut débit

Inventaires taxonomiques et fonc>onnels

Indices de diversité

Acidobacteria, 42%

Ac0nobacteria, 3%

Bacteroidetes, 2%

Chloroflexi, 0%

Firmicutes, 11%

Gemma0monadete s, 6%

Nitrospira, 2%

Planctomycetes, 7%

α- proteobacteria,

9%

β-proteobacteria, 5%

δ-proteobacteria, 2%

γ-proteobacteria, 2% Verrucomicrobia,

8%

phylums minoritaires, 2%

Etat écologique

Poten>alités fonc>onnelles

(22)

Conclusions et PerspecHves

Intérêt d’un tel réseau de surveillance à ce[e échelle « régionale »

-  Complémentarité avec le réseau na>onal (RMQS)

-  Structures spa>ales et filtres environnementaux propres

µ-habitat Parcelle

(ORE, PIC, ADEME,…) Paysage

(Zone Atelier Fenay, OPE ANDRA, IGCS Massif Central, …)

Territoire naHonal

(RMQS)

ConHnent

(LTO Ecofinders)

-  Intégra>on dans des probléma>ques de changement d’échelle

-  Aborder des no>ons de fonc>onnement (turnover MO – cycle C)

(23)

Conclusions et PerspecHves

Ini>er le diagnos>c de la qualité des sols et évaluer les pra>ques

Selon chaque pédo-climat

Niveau'Bas'' Niveau'Moyen'' Niveau'Haut''

Modèle prédicHf :

Valeur de référence pour un type pédoclimaHque

-> Diagnos>c de l’état biologique :

Assurance écologique, durabilité écosystème, évaluaHon des praHques

Fiche de diagnosHc de l’état microbiologique

(CASDAR AgrInnov)

Elabora>on des Référen>els : Modèles prédic>fs de l’abondance et de la diversité

Biomasse moléculaire microbienne

Nombre'de'taxons'

Inventaires de diversité

Nécessité d’un référenHel adapté au contexte local en vue du suivi et de l’étude d’impact

(ex : iniHaHve Chambre d’Agriculture de Saône-et-Loire)

Obtenir les données de diversité taxonomique bactéries et champignons dans les sols de l’OPE Elaborer les modèles prédicHfs spécifiques de l’OPE

(24)

MERCI DE VOTRE ATTENTION

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