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HEMOCULTURES (mise à jour protocole CHU mars 2017) DEFINITION ;

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IFSI DIJON 2ème Année 2018-2019

UE 2.5.S.3. : Processus inflammatoires et infectieux Promotion Bottard CPe ICo

HEMOCULTURES (mise à jour protocole CHU mars 2017)

DEFINITION ;

 Prélèvement aseptique de sang en vue d’un ensemencement sur différents milieux de croissance (le sang est normalement stérile)

 Acte I.D.E. sur prescription médicale ou sur application d’un protocole écrit. Code de la Santé Publique Article R. 4311- 7.

OBJECTIF :

 Etablir un diagnostic : Identifier le ou les germes pathogènes o Bactériémie ou septicémie?

Bactériémie = présence de bactéries dans le sang, affirmée par l’isolement d’un ou de plusieurs germes pathogènes dans les hémocultures. Présence transitoire de germes dans le sang, dépourvue de signes cliniques avec un point de départ infectieux

Septicémie = bactériémie + sepsis (SRIS) : syndrome de réponse inflammatoire systémique avec T > 38°5 ou < 36° - FC>90 - FR>20 – GB >12000 ou <4000 associé à une infection. Présence permanente ou non de bactéries dans le sang à partir d’un foyer infectieux + signes généraux

 Choisir une thérapeutique : Souche bactérienne identifiée ⇒ élaboration d’un antibiogramme ou d’un mycogramme ⇒ choix thérapeutique

Antibiogramme : (lien avec 2.11 et 2.10)

o Évalue l’activité des ATB sur une souche bactérienne présumée responsable o Etudie la sensibilité d’un germe aux différents ATB. Pour chaque ATB testé,

l’activité est exprimée en termes de Sensibilité (S), Résistance(R) ou activité Intermédiaire (I)

o Précise l’activité de l’ATB : si bactériostatique ou bactéricide

o Les antibiotiques n’agissent que sur les bactéries. Ils ne doivent pas être prescrits pour toutes les fièvres mais seulement quand les hémocultures sont positives avec identification d’une souche bactérienne

o Effectuer une surveillance : Evaluer l’efficacité d’une antibiothérapie o Affirmer la guérison et arrêter le traitement

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2 INDICATIONS

 Devant tout syndrome infectieux, suspicion de septicémie ou devant tout foyer infectieux complexe

 Devant toute température sup. ou égale à 38°5 (à ajuster en fonction de la température habituelle de la personne)

 Devant toute température inf. ou égale à 36°5(à ajuster en fonction de la température habituelle de la personne)

 Devant la survenue de frissons ou de marbrures

 Devant certains signes cliniques

 En l’absence de fièvre : chez patient immunodéprimé, âgé, quand suspicion d’endocardite…

 Sur prescription ou protocole

RIEDEL Journal of Microbiology 2008 1436 patients

(“We conclude from the results of this investigation that is not necessary in routine practice to collect blood for culture at the time that adult patients are experiencing a temperature elevation as a means for optimizing the detection of bacteremia »). Nous concluons des résultats de cette étude qu'il n'est pas nécessaire dans la pratique courante de prélever du sang pour culture au moment où les patients adultes subissent une élévation de température comme moyen d'optimiser la détection de la bactériémie.

Un train de 3 paires de flacons chez adulte et grand enfant, renouvelable. 10 à 20 ml de sang dans chaque flacon.

Nouveau-né : un flacon pédiatrique d’1 ml de sang minimum (mycosis si prescrit).

MISE EN ŒUVRE :

Fermer fenêtre et porte, porter un masque si besoin.

MATERIEL

 Garrot nettoyé-désinfecté

 Sets de pansements stériles ou compresses stériles

 Antiseptique en solution alcoolique

 Protection lit

 Gants stériles

 Dispositifs de prélèvement pour hémoculture

 Corps de pompe

 Les flacons Milieux de culture aérobies et anaérobies. Différents systèmes pour différentes recherches : recherche de germes aérobies et anaérobies, recherche d’éléments fongiques, recherche de mycobactéries

 Pansement

 Boite à objet coupant piquant tranchant

 Sac à déchets

 Matériel d’acheminement au laboratoire et bons REALISATION :

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 Installer la protection sous le bras du patient

 Repérage du site

 Nettoyer si nécessaire le bras à l’eau et au savon

 Réaliser l’hygiénique des mains par friction SHA

 Retirer capuchons et désinfecter bouchons des flacons avec antiseptique alcoolique, ouvrir les emballages

 Réaliser l’hygiénique des mains par friction SHA

 Monter corps de pompe sur unité de prélèvement sécurisée

 Réaliser une antisepsie de la peau, en frictionnant, selon en 1 temps sur la peau visuellement propre. Respecter le temps de séchage de l’antiseptique alcoolique (min 30s)

 Mettre le garrot

 Friction des mains SHA

 Enfiler gants stériles

 Oter protection de l’aiguille à ailettes

 Introduction aiguille dans veine / le sang apparaît

 Engager le 1er flacon aérobie dans corps de pompe

 Laisser couler jusqu’au repère 10ml ou 1ml minimum

 faire de même avec les autres flacons et mycosis si prescrit...

 ôter garrot

 éliminer l’ensemble du système dans le conteneur déchets perforants

 comprimer et poser un pansement

 agiter doucement les flacons d’hémocultures

 enlever protection et gants, réaliser une friction des mains par SHA

 effectuer traçabilité du soin + acheminer le prélèvement au plus vite (étuve)

A ADAPTER AUX PROTOCOLES EN VIGUEUR DANS LES ETABLISSEMENTS

AVANTAGES DU PRELEVEMENT UNIQUE :

Moindre sollicitation du patient Moindre taux de contamination Moindres coût et temps Personnel Diminution du risque AES

Pas d’oubli des prélèvements 2 et3

Gain de temps pour mise en route antibiothérapie

EVALUATION :

 Asepsie rigoureuse

 Respect de la procédure

 Remplissage des flacons (10 ml adulte x 6 soit 60 ml, 1 ml enfant)

 Rigueur dans l’identification du patient

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 Renseignements précis et fiables du bon

 Acheminement rapide avant 2 heures et mis en étuve au laboratoire

 Noter sur le bon : l’heure, la température et lieu de prélèvement

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