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Test d'autocontrôle de l'efficacité des procédés de traitement biologique des effluents phytosanitaires

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Academic year: 2021

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HAL Id: hal-02823364

https://hal.inrae.fr/hal-02823364

Submitted on 6 Jun 2020

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Test d’autocontrôle de l’efficacité des procédés de traitement biologique des effluents phytosanitaires

Karine Esteve, Christian Poupot, Martine Mietton-Peuchot

To cite this version:

Karine Esteve, Christian Poupot, Martine Mietton-Peuchot. Test d’autocontrôle de l’efficacité

des procédés de traitement biologique des effluents phytosanitaires. 8. Symposium International

d’Œnologie ”Œno 2007”, Jun 2007, Talence, France. 1 p., 2007. �hal-02823364�

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TEST D’AUTOCONTROLE DE L’EFFICACITE DES PROCEDES DE TRAITEMENT BIOLOGIQUE

DES EFFLUENTS PHYTOSANITAIRES :

Saccharomyces cerevisiae bio-marqueur de la toxicité des pesticides

Karine ESTEVE, Christian POUPOT et Martine MIETTON-PEUCHOT

UMR INRA Œnologie 1219, Université Bordeaux 2, ISVV, Faculté d’œnologie ; 351, cours de la libération – 33405 TALENCE cedex – France: 05 40 00 64 93; mmp@genproc.u-bordeaux.fr

Avec 107 000 tonnes de produits phytosanitaires consommés par an en France, dont 50 % pour la viticulture, la prise en compte des enjeux environnementaux s’est imposée au secteur vitivinicole. L'arrêté du 12 septembre 2006 décrit les modalités pour qu’un procédé de dégradation des résidus phytosanitaires puisse être autorisé. Pour répondre à

cette autorisation, des tests de toxicité normés relativement coûteux sont exigés.

L’objectif du travail est de développer un test d’autocontrôle permettant de définir l’efficacité de ces procédés.

OBJECTIF:

MATERIELS ET METHODES:

RESULTATS ET DISCUSSION:

CONCLUSION ET PERSPECTIVES Levain régénéré 30 min., 20°C

(souche Saccharomyces cerevisiaeAWRI 350 (SC)) 10 g de souche

+ 10 g de glucose dans 100 ml d’eau

1ml de levain

4 ml TEMOIN (Eau minérale)

4 ml ESSAI

(Produits phytosanitaires)

Stick préleveur

Mesure ATPmètre Tableau 1. Les produits phytosanitaires sélectionnés

Figure 1. le protocole expérimental du test

Le tableau 1représente les pesticides constituant le mélange (1 g/L de matières actives). Les quantités de chaque molécule sont définies après une étude, chez des viticulteurs, de plusieurs cahiers de traitement. 1 mL de la suspension de levain (100 g/L) a été mis en contact avec 4 mL d’échantillon (témoin (eau minérale) et essai (produits phytosanitaires)) (Figure 1).

Nom commercial Molécule active Concentration molécule active

ANTEOR Cymoxanil / Folpel 30 mg/L - 254 mg/L

BOUILLIE

BORDELAISE Sulfate de cuivre 40 mg/L

CASCADE Flufénoxuron 10 mg/L

EPERON PEPITE Mancozèbe / Méfénoxam 7 680 mg/L - 466 mg/L

FLUDIOSOUFRE Soufre 693 mg/L

FORUM Dimétomorphe 43 mg/L

GRAMOXONE Diquat / Paraquat 60 µL /L - 60 / µL L

ROUNDUP Glyphosate acide 105 mg/L

SCALA Pyriméthanil 50 mg/L

SWITCH Cyprodinil / Fludioxonil 364 mg/L - 243 mg/L MELANGE

PHYTOSANITAIRE

100 ml de chacune des

solutions commerciales environ 1 g/L

Figure 2. Évolution des teneurs en ATP de la levure (Témoin(z), Mélange phytosanitaire(„))

0 50000 100000 150000 200000 250000 300000 350000

0 30 60 90 120 150 180

temps (min) teneur ATP (URL)

30 min. de contact

L’évolution en ATP de S.C. en présence et en absence de pesticides est représentée Figure 2.

• Max. [ATP]: 30 min. Îtémoin ; 120 min. Îessai.

• 0 à 30 min.: [ATP] Òdans le témoin / [ATP] Ôpour l’essai.

• 30 à 90 min.: [ATP] Ôdans le témoin / [ATP] ≈pour l’essai.

• 90 à 180 min.: [ATP] Ôdans le témoin / [ATP] Òpour l’essai.

Cette expérimentation montre que les pesticides ont un effet non permanent sur la synthèse d’ATP et que la différence d’ATP entre le témoin et l’essai atteint son maximum à 30 minutes de contact. Ce temps sera employé dans les expériences suivantes.

L'Adénosine-5-triphosphate (ATP) est un intermédiaire énergétique universelde la cellule vivante. Cette molécule est en relation directeavec l'activité de la cellule, toute cellule vivante produit et consomme de l'ATP. Pour doser l'ATP, la technique la plus

rapide, d’une grande sensibilité et relativement précise est la bioluminescence.

Lumière λ= 562 nm Luciférine + ATP + O2 Luciférase + Mg 2+ Oxyluciférine + CO2+AMP + PP

+ photons

APPLICATION: Procédés boues activées

Bioréacteur 20L

2 L Effluent / jour DCO =900mg/L; 1,5 g/L pesticides

2L Boues activées / jour DCO < 300mg/L; pesticides ≤7,5mg/L

Les quantités de chaque molécule dans le substrat sont définies après l’étude de plusieurs cahiers de traitement de viticulteurs. La concentration totale en matières actives est de 1 g/l(Tableau 1). L’épuration des produits phytosanitaires est suivie durant 30 jours. Le volume de boues activées (liqueur mixte) est de 20 litres; les boues sont aérées en continu et maintenues en suspension par un agitateur. 2 litresd’effluent sont ajoutés par jour et un volume équivalent est soutiré pour analyse (figure 4).

Figure 4. Bioréacteur expérimental pour le traitement biologique aérobie

20 30 40 50 60 70 80 90

0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30

Temps (jours)

% d'inhibition de Saccharomyces cerevisiae

Les mesures de toxicité sont basées sur l’inhibition métabolique de la synthèse d’ATP de S. cerevisiae.

PHASE 1:Adaptation de la biomasse pendant laquelle la toxicité augmente.

PHASE 2: Décroissance de la toxicité;

confirmation des résultats de dégradation et assurance que les métabolites formés ne sont pas toxiques.

PHASE 3:Augmentation de la toxicité due à une dose de floculant non optimisée.

Figure 5. Toxicité de l’effluent traité

PHASE 1 PHASE 2 PHASE 3

Les pesticides ont affecté le métabolisme énergétique des levures en inhibant la biosynthèse de l’ATP.

Les pesticides ont affecté la synthèse d’ATP de SC pendant une période courte (30 minutes).

•Le nouveau test pourra être employé pour l'évaluation en continu des procédés de traitement des effluents phytosanitaires.

Ce test est rapide, fiable et peu coûteux comparé aux essais biologiques traditionnels (Daphnia magna, Pseudokirchneriella subcapitata...).

Ce test pourrait être employé pour évaluer la pollution de l'eau.

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Soares, A.M.V.M. and Calow, P. (1993). Chapter 1. Lewis, London.

REFERENCE BIBIBIOGRAPHIQUE

Floculant La CE50 (half maximal effective concentration)

représente la concentration d'un composé où on observe 50 % d’effet maximum.

Les valeurs d’ATP mesurées après 30 min. de contact entre SC avec divers pesticides ont été comparées, la CE50 a été calculée. Les résultats sont présentés dans le tableau 2.

• CE50 S.C.≈CE50 Daphnia pour les 3 molécules.

• Résultats CE 50 SC beaucoup plus rapide (30 min.).

Ces résultats montrent que le test rapide développé est aussi sensible que le test normé.

Matières actives

CE50 Saccharomyces cerevisiae Durée d’exposition :

30 min.

CE50 Daphnia magna (méthode normée) Durée d’exposition :

48 h.

Diuron 1,2 mg/l 1,4 mg/l

Fludioxonil 1,1 mg/l 0,4 mg/l

Cymoxanil 0,9 mg/l 2,7 mg/l

75 69

95 95 48

34 37

72 28

27 6

55

Melange phyto. (test) Effluent Château Dillon Effluent domaine le Renaudin Eperon pepite Switch Fluidosoufre Anteor Bouillie bordelaise Gramoxone + Roundup Scala Forum

Concentration

Tableau 2. CE50 de quelques molécules actives phytosanitaires

Tableau 3. Pourcentage d’inhibition de chacun des produits présents dans le mélange

Les valeurs d’ATP mesurées après 30 min. de contact entre SC et divers pesticides composant le mélange (Concentration en produits : voir Figure 1) on permis de calculer le pourcentage d'inhibition. Les résultats sont présentés dans le tableau 3.

● ≈50 mg/l , le % d’Inhibition de Forum est 1.5 X plus grand que celui du Scala.

●Pour des % d’inhibition similaires (≈45 %), [Gramoxone +] ≤[Scala] ≤[Anteor].

●Pour des % d’inhibition similaires (≈30 %), [Roundup] 7 X plus importante que [Fludiosoufre].

●Pour des % d’inhibition de 70 à 95 %, [Anteor] 20 X plus importante que [Forum].

Ces résultats montrent que l'inhibition de SC dépend de la composition chimique du pesticide, plutôt que sa concentration.

Références

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