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Génétique et prise en charge prénatale des Hyperplasies Congénitales des Surrénales par déficit en 21-Hydroxylase

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(1)

Génétique et prise en charge prénatale des Hyperplasies Congénitales des Surrénales

par déficit en 21-Hydroxylase

DES Endocrinologie, Lyon, 16 juin 2016

Dr. Véronique TARDY-GUIDOLLET

veronique.tardy@chu-lyon.fr

Endocrinologie Moléculaire et Maladies Rares Centre de Biologie et Pathologie Est - LYON

Université Claude Bernard Lyon 1 1

(2)

DHEA Cholestérol

Progestérone

17-OH-Prégnénolone

17-OH-Progestérone

Progestérone Cholestérol

Prégnénolone

Aldostérone

DOC 11-Désoxycortisol

Cortisol

DOC

Corticostérone

∆4 - Adione

21-Hydroxylase

ACTH

Testo

Rénine

21-Hydroxylase

Prégnénolone

CYP11A1

HSD3B2

CYP17

CYP11B2 CYP11B1

Synthèse des hormones stéroïdes dans les surrénales

(3)

Cryptique

Infertilité Hirsutisme

Foetus Nouveau-né Enfance Adolescence Adulte Pseudo-

puberté précoce

Forme non classique Formes classiques

SW SV

Prémature pubarche

Formes cliniques du déficit en 21-hydroxylase

X

3

(4)

Critères de classification

 Perte de sel

 Hypoglycémie

 Augmentation de la 17OHP

 Dépistage néonatal

 Follow-up clinique et biologique

1- Signes dus directement à l’atteinte enzymatique

2- Signes secondaires à l’hyperandrogénie

 Virilisation néonatale chez la fille (variable)

 Autres : - prémature pubarche - avance âge osseux - avance staturale - hirsutisme

- troubles des règles - infertilité

 Follow-up (taille définitive,……..)

En général asymptomatique chez l’homme

(5)

a / b c / d

a / d a / c b / d b / c

Maladie autosomique récessive

5

(6)

Les gènes associés au déficit en 21-hydroxylase

C4A CYP21P C4B CYP21 C2

400kb 210 300

Bras court du chromosome 6

centromère

Classe I Classe II

A C B TNF HSP70 DR DQ/DX DP Classe III

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110 120 kb

5' 3'

XA XB

3' 5'

Homologie de séquence entre les fragments dupliqués C4A-CYP21A1P-XA C4B-CYP21A2-XB

→ recombinaisons homologues lors de la méiose

(7)

1 - Mutations ponctuelles de retentissement variable (80 %)

• Homologie de séquence entre CYP21A2 et CYP21A1P à 98 %

• CYP21A1P réservoir des mutations les plus fréquentes identifiées chez les patients survenant par microconversion génique

• Plus de 130 mutations décrites dans la littérature

p.P30L Promoteur

p.L307fs*

p.V281L IVS2-13A/C>G

p.I172N p.Q318*

p.R356W p.I236N

p.V237E p.M239K

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

abolition de l’activité 21-hydroxylase, FC avec perte de sel clinique

Rouge

Jaune activité faible 1-5%, FC de type virilisante pure

Vert activité 20 à 50%, FNC

Orange activité faible FC avec perte de sel clinique ou de type virilisante pure p.G110fs*

Lésions géniques – 1

(6400 allèles CAH, 3200 patients)

(Tardy et al. JCEM 2010)

7

(8)

Lésions géniques – 2

(6400 allèles CAH, 3200 patients)

2 - Large lésions abolissant l’activité 21OH (20%)

• Locus 6p21.3 normal

CYP21A1P

C4A C4B CYP21A2

• Délétion : perte de matériel génique, gène hybride CYP21A1P-CYP21A2 non fonctionnel

• Conversion génique : pas perte de matériel génique, gène hybride CYP21A1P-CYP21A2 non fonctionnel

21A1P 21A2 C4A

C4A CYP21A1P C4B 21A1P 21A2

(Tardy et al. JCEM 2010)

(9)

Lésions géniques dans les FNC

1 - Larges lésions (8 %)

2 - Mutations ponctuelles isolées et fréquentes (>1%) (92 %)

P453S P30L

Promoteur

L307fs V281L IVS2-13A/C>G

I172N Q318*

R356W R483Pfs I236N

V237E M239K

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

(Tardy et al. JCEM 2010)

p.V281L 56 % p.P453S 5 % p.P30L 3 % Promoteur 1 %

Modérées = 67 %

p.Q318* 3 % p.I172N 4 %

IVS2-13A/C>G 9 %

Fréquence comparable aux autres équipes

Speiser et al, JCI 1992 ; Wedell et al, Acta Paed 1998 ; Krone et al, JCEM 2000 Sévères = 18 %

9

(10)

• Forme classique avec perte de sel clinique (SW)

p.Q318* / p.Q318* (homozygote)

p.Q318* / p.L307fs* (hétérozygote composite) p.Q318* / Large lésion (hémizygote)

• Forme classique avec ou sans perte de sel clinique

IVS2-13A/C>G / IVS2-13A/C>G IVS2-13A/C>G / Large lésion

1 - Formes classiques (2200 patients)

 1 lésion sévère sur les deux allèles

• Forme virilisante pure (SV)

p.I172N / p.I172N

p.I172N / Large lésion

Corrélations génotype - phénotype

(11)

Corrélations génotype - phénotype

• 1 mutation modérée sur un allèle (60 %) p.V281L / p.Q318* ou large lésion p.V281L / p.I172N

• 1 mutation modérée sur les deux allèles p.V281L / p.V281L

p.V281L / p.P30L

2 - Formes non classiques FNC (2300 patients)  1 lésion modérée sur au moins un allèle

11

(12)

20

Modéré/modéré Modéré/sévère

17-OHP sous ACTH (ng/ml)

40 60 80 100 120 140 160 180

Pic de 17OHP sous Synacthène®

en fonction du génotype

(Young et al, Ann. d’Endoc. 2010, Consensus SFE 2008)

(13)

Lésions géniques (6400 allèles, 3200 patients)

1 - Larges lésions (délétions, conversions) (20%)

3 - Mutations multiples (5 %) 4 – Réarrangements complexes (< 1%)

5 – Mutations rares (6 %)

2 - Mutations ponctuelles isolées et fréquentes (>1%) (69%)

Tardy et al. JCEM 2010 p.P30L

Promoteur

p.L307fs*

p.V281L IVS2-13A/C>G

p.I172N p.Q318*

p.R356W p.I236N

p.V237E p.M239K

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

p.R483Pfs*

p.P453S

13

(14)

Génotype avec 2 phénotypes différents

Promoteur

2 3 4 5 6 7 8 9 10

Conversion génique de l’extrémité 5’ du gène CYP21A2 en son pseudogène CYP21A1P

p.P30L

1

CYP21A1P CYP21A2

Mutation du promoteur isolée ou mutation p.P30L isolée = FNC

Conversion génique de l’extrémité 5’ du gène CYP21A2 en son pseudogène CYP21A1P

Forme non classique ou forme virilisante pure

Données clinico-biologiques au diagnostic, évolution

(15)

Analyse de la sévérité des 110 mutations rares

Analyse approfondie du phénotype

limitations dans certains cas

(mutation modérée sur l’autre allèle, hétérozygote, données phénotypiques insuffisantes, conjoint…)

Analyse des caractéristiques de la mutation

Décrite ou non : bases de données (Logiciel Alamut) Nature : 23 non-sens + frameshifts

87 faux-sens, souvent privées

Conservation de l’acide aminé, conséquences du changement

Etudes fonctionnelles in vitro

Semi-quantitatives, cinétiques

Une trentaine de mutations testée à ce jour

Analyse in silico

Modèle protéique par bioinformatique Relations structure-fonctions

Menassa et al. JCEM 2008

Tardy et al. JCEM 2010 15

(16)

Etudes fonctionnelles des nouveaux mutants Mesure activités 21-hydroxylase relatives

WTY259H P453S

I230T V281L

S301Y R369W

G178R P30L

H62L H38L

R233K H62L+P453S

I230T+V2 81L

I172N E320K

G424S L167P

G292D Q318X

0 20 40 60 80 100

17-OHP (µM)

C on ve rs io n 17 -O H P en S (% )

Conversion 17-OHP en composé S (%)

90.5

81.5 63.1

65.6 56.9

45.8 42

34.1

29.2 18.5 15

11.1 9.4

4.3 4.6

1.6 0.7 0.5 0 100

sévères intermédiaires

modérées

Menassa et al. JCEM 2008 16

(17)

Stratégie d’exploration du cas index

1- Recherche de mutations ponctuelles en 1ère intention

Cas index : Amplification spécifique par PCR du gène CYP21A2 Séquençage de la totalité du gène

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10

Parents :

Etude indispensable pour confirmer la ségrégation des mutations Amplification spécifique et séquençage ciblé

Objectif = corrélation biologie moléculaire et phénotype 2 - Recherche de larges lésions (del / conv) en 2ème intention

Par technique MLPA (Multiplex Ligation Probe Amplification Si positive, analyse des parents

3 – Etude indirecte de 7 microsatellites extragéniques en 6p21.3

17

(18)

Etudes familiales

1- Etude des apparentés

Fratrie, apparentés plus éloignés…..

Selon le résultat du CI et ses parents (Séquençage ciblé, MLPA) Etude indirecte de 7 microsatellites

Exclure une erreur dans la chaîne de traitement du tube Confirmer une mutation de novo chez le CI (1 %)

Objectif = détecter les porteurs de mutation sévère

2- Etude des conjoints

Risque d’être porteur d’une lésion sévère 1/60

Séquençage de la totalité du gène + Analyse MLPA Contrôle sur 2ème prélèvement si nécessaire

(19)

Dépistage biochimique du conjoint par dosages du 21-désoxycortisol sous Synacthène®

DHEA Cholestérol

Progestérone

17-OH-Prégnénolone 17-OH-Progestérone Prégnénolone

11-Désoxycortisol Cortisol

DOC

Corticostérone

P450c21 21-Hydroxylase

∆4 - Adione

21-désoxycortisol

P450c11

11ß-hydroxylase

Abandonné depuis 2011

 VPP mauvaise (45% seuil 400 pg/ml ou 1140 pmol/L), FN, coût

 Seule indication : nouveau variant chez un conjoint

(Tardy et al, Horm Res 2005) 19

(20)

Pourquoi faire une étude génétique

• Contribuer au diagnostic

1 - Le confirmer

Forme classique

Le plus souvent clinique et biologie suffisent Parfois doute : prématurés, dépistage limite...

Forme non classique

17OHP sous Synacthène® > 30-36 nmol/L

(Bidet et al, JCEM 2010, Tardy et al, Horm. Res. 1996)

17OHP de base > 6 nmol/L (consensus SFE 2013)

2 - En préciser la sévérité, aider au traitement

• Proposer un conseil génétique

- Identifier les sujets avec mutation rouge ou jaune - Diagnostic prénatal si risque de forme classique 3 - Affiner les seuils biologiques

(21)

• Exploration de la totalité du gène CYP21A2

Séquençage de tout le gène : Résultat < 1 semaine

Recherche de larges lésions par MLPA (Multiplex Ligation Probe Amplification) : Résultat < 2 semaines

Modalités de l’étude du gène CYP21A2

• Documents obligatoires

Prescription médicale signée par le clinicien

Consentement génétique

Données cliniques et biologiques

• Coût

 B500 (135 euros pour un B=0,27 euros)

 BHN pour un patient prélevé en CH

• Prélèvement de sang total sur EDTA : 2 tubes de 4 ml

! Attention

Un résultat génétique est confidentiel

Information à la parentèle (décret 2013)

21

(22)

Conseil Génétique

• Couples avec un 1er enfant atteint de FC (SW ou SV) Risque récurrence = ¼

Risque d’avoir 1 fille virilisée = ⅛

• Couples avec un sujet porteur d’une mutation sévère

FC, 60 % FNC (Tardy et al, Horm Res 1996) , apparenté, hétérozygote

Risque pour le conjoint d’avoir une mutation sévère = 1/60 Risque de FC pour les enfants du couple

FC + conjoint = 1/120

(1X1/60X1/2)

FNC / apparenté / hétérozygote + conjoint = 1/240

(1/2X1/60X1/2)

(23)

Prise en charge d’une grossesse à risque de FC

• Double consentement obligatoire pour le DPN

 Risque de fausse couche lié au prélèvement fœtal

 Accord pour la réalisation du DPN

• Information éclairée des (futurs) parents

 Par l’endocrinologue pédiatre ou adulte, le généticien

 Outils disponibles pour la grossesse : Diagnostic prénatal, Traitement prénatal, Détermination sexe fœtal sur sang maternel

Notice d’information

• Génotypage familial

23

(24)

Diagnostic prénatal

1- DPN précoce par ponction de villosités choriales (PVC) 9-10 SG (11-12 SA )

 Génotypage dans un Laboratoire de BM Habilité + caryotype

Diagnostic moléculaire en urgence

 Etude ciblée du gène CYP21A2 (étude préalable CI et parents)

 Etude de microsatellites extragéniques

Résultat en 3-4 jours, arrêt ou non de la DEX, IMG

! Double consentement obligatoire

24

(25)

Diagnostic prénatal

2- DPN plus tardif par ponction de liquide amniotique (PLA) 12-14 SG (14-16 SA )

 Génotypage et Dosages hormonaux (10 ml de LA frais) Laboratoire de BM Habilité / Biochimie Foetale Habilité

 Caryotype + cultures (10 ml de LA frais) en Cytogénétique

 Diagnostic moléculaire idem PVC

 ADN foetal extrait du culot d’amniocytes / de cultures

 Diagnostic biochimique

 Dosage des hormones stéroïdes : 17OHP, 21-DF, D4A, T

 Résultat informatif pour la FC (SW +++ / SV)

 Problème si mère sous DEX 3- Coût d’un DPN

 BM = B700 (187 euros) + BHN si CH

 Dosages hormonaux

25

(26)

Traitement prénatal

• Dexaméthasone versus Hydrocortisone

- Passage placentaire, ½ vie + longue, pas d’inactivation par 11b-HSD2 - 20 mg/kg/jour en 2 à 3 prises, max 1.5 mg/j, < 6 SG jusqu’à naissance

Proposé depuis 1979 aux couples à risque de forme classique de déficit en 21OH ou 11OH et qui souhaitent garder une fille atteinte

(David et Forest, J Ped 1984)

- Inutile chez les garçons et les filles saines (7 grossesses sur 8) - Pas d’AMM

• Information éclairée des parents bien avant la grossesse - Centres de référence

- Notice avec balance bénéfices / risques Fœtus : troubles neuro-cognitifs

Mère : prise de poids, vergetures, acné, HTA, diabète

• Suivi par un endocrinologue référent - Analyses des facteurs de risque

- Mères traitées toute la grossesse : suivi mensuel

(27)

27

(28)

Détermination précoce du sexe fœtal

• Détermination du sexe foetal sur sérum maternel “Test SRY”

(Laboratoire Cerba, Jean-Marc COSTA)

 ADN fœtal libre dans le sang maternel

 Maladies liées à l’X, entre 6 et 11.4 SG (Costa et al, 2001)

 Intérêt dans les HCS, avant 6 SG (Y Morel & JM Costa) Déficit en 21-hydroxylase

Déficit en 11-hydroxylase

 Attention : protocole de prélèvement particulier

(tube sec avec gel séparateur, décantation, centrifugation)

 Non informatif dans les grossesses gémellaires

 A la nomenclature depuis février 2011 (4084, B500, JO du 15-02)

Intérêts : ne pas traiter inutilement les garçons

Contraintes : traiter efficacement les filles atteintes

(29)

PVC 9-10 SG (11-12 SA) - Etude gène CYP21A2 (Bron)

- Caryotype

SRY-

Morel et al, Ann Endoc 2003 Tardy-Guidollet et al, JCEM 2014

DEX < 6 SG (8 SA) SRY-

Pas de DPN

Prise en charge néonatale OU

Test SRY : 4.4 - 5.4 SG (6.4 - 7.4 SA) Consultation dès le retard de règles

Datation échographique

PLA 12-14 SG (14-16 SA) - Etude gène CYP21A2 (Bron) Dosages hormonaux (Bron)

- Caryotype

SRY+

Prise en charge de la femme enceinte en France

Contrôle SRY 8 SG (10 SA)

Si fille atteinte

dosages stéroïdes mensuels chez la mère

(Bron) + surveillance échographique 29

(30)

French experience 2002 – 2011 (258 cases)

(Tardy-Guidollet et al, JCEM 2014)

• 255 fetuses at risk of 21OHD, 3 fetuses at risk of 11OHD 134 males and 124 females

• Sensitivity of SRY test: 64 males with SRY < 5.4 WG (48%) 58 SRY +

6 SRY - test < 4 WG (3)

test at 4.2 WG (2) and 5.6 WG (1)

• Data of the 134 males

 14 CAH / 120 unaffected

 No DEX for 92 males

 No prenatal diagnosis (95) / AF (30) or CVS (9)

• Data of the 124 females

 14 CAH with 21OHD, 3 CAH with 11OHD (sisters)

 DEX for 112 females

 CVS (105) or AF (12) / no prenatal diagnosis (7)

• No malformation in the 154 children in utero treatead with DEX

(31)

En Suède

Arrêt de la DEX en 2010

(Hirvokoski et al, JCEM 2012)

Pas de confirmation des effets neurocognitifs publiés…

(Wallensteen et al, Horm Res 2015)

Aux USA

DEX maintenue avec études de suivi

(MI New et al, JCEM 2014)

Positions internationales pour la DEX

• En France

DEX au cas par cas, respect de la décision des parents DEX acceptée surtout si 1ère fille HCS virilisée (72%) Plus de garçons traités, exposition courte chez les filles PHRC national pré-DEX

En 2010 Endocrine Society’s Clinical Practice Guidelines

(Speiser et al, 2010)

31

(32)

Cas 1

Melle A. consulte à 6 ans pour premature pubarche apparue à 4 ans et une avance de l’âge osseux à 8 ans

Dosages Résultats Valeurs normales

17 OHP (nmol/L) 55,2 0,3 – 3,0

ACTH (ng/ml) 84,2 10 – 40

Testostérone (nmol/L) 1,1 < 0.3

D4-A (nmol/L) 5,4 0.4 – 0.8

Etude du gène CYP21A2 = p.V281L/p.I172N

Forme non classique de déficit en 21OH

Parents à prélever pour confirmation diagnostique

(33)

Conseil génétique : Cas 1

p.I172N / N ? N ? / p.P453S

p.I172N / p.P453S

Est-ce que les parents désirent d’autres enfants ?

Si oui, exclure le risque de forme classique et mutation sévère sur l’autre allèle de la mère

Séquençage complet du gène CYP21A2 chez la mère

Génotypage de la fratrie (même si mineurs)

Génotypage des apparentés du père

Dépistage du conjoint de la patiente à l’âge adulte 33

(34)

Cas 2

Melle H. présente un SOPK diagnostiqué à 16 ans face à des cycles irréguliers : pas de preuve diagnostique

Face à l’hyperandrogénie biologique : test Synacthène® à 18A

Dosages Résultats Valeurs normales

Pic de 17 OHP (nmol/L) 94 < 36

Testostérone (nmol/L) 2,8 0.6-1,8

D4-A (nmol/L) 9,10 2,8 – 6,3

Pas d’étude du gène CYP21A2, mise sous HC 20 mg/J

Démarrage d’une 1ère grossesse : naissance garçon sain

Démarrage d’une 2ème grossesse et consultation à 17 SA !

Etude du gène CYP21A2 en urgence (séquençage)

 Génotype p.P30L/p.V281L

 Pas de dépistage du conjoint ni de prise en charge prénatale

 Arrêt de l’Hydrocortisone

(35)

Conseil génétique : Cas 2

p.P30L / N N / p.V281L

p.P30L / p.V281L

Etude des parents : génotypage ciblé

Pas d’étude des apparentés

35

(36)

Cas 3

Mme L. consulte à 38 ans pour hirsutisme, spanioménorrhée et infertilité

Dosages Résultats Valeurs normales

17 OHP (nmol/L) 30 0.3 – 4,5

Testostérone (nmol/L) 1,5 0.6-1,8

D4-A (nmol/L) 13,5 2,8 – 6,3

Etude du gène CYP21A2 = p.P453S/p.Q318*

Forme non classique de déficit en 21OH

Parents prélevés pour confirmation diagnostique

Mise sous Hydrocortisone 15 mg/jour avant l’étude du conjoint : démarrage d’une grossesse…

(37)

Cas 3 : Dépistage du conjoint

IVS2-13A/C>G / N p.Q318* / p.P453S

?

Risque de FC = ¼, risque de fille virilisée = 1/8

Prise en charge prénatale

Prélèvement en urgence du conjoint pour génotypage : séquençage de tout le gène CYP21A2 en 3 jours

37

(38)

Cas 4

Melle D. consulte à 26 ans pour hirsutisme et asthénie, surpoids

Dosages Résultats Valeurs normales

17 OHP (nmol/L) 27 0.40 – 3,3

ACTH (ng/ml) 31,7 10 – 40

Testostérone (nmol/L) 9,1 0.6-1,8

D4-A (nmol/L) 26,9 2,8 – 6,3

Débute une grossesse malgré l’hyperandrogénie

Suspicion forme non classique face au taux de 17OHP : Hydrocortisone puis dexaméthasone !

Etude du gène CYP21A2 = Aucune mutation

Forme non classique de déficit en 21OH écartée

Arrêt des glucocorticoïdes

Face à l’urgence de la grossesse, le conjoint a été d’emblée exploré !

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