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BSV_PEPI_2019-No1

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Academic year: 2022

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Bulletin n°1 du 8 mars 2019

Page 1 sur 5

HORTICULTURE / PEPINIERE

LEGENDE DES TABLEAUX

Ravageurs

et maladies Intensité des attaques Très faible à nulle Faible Moyenne Elevée

Auxiliaires Stades observés Adulte : A Larve : L Nymphe : N Œuf : O

Intensité des observations Absence Présences ponctuelles Présences généralisées PT = Pleine terre / CT ext = conteneurs extérieur / CT ab = conteneurs sous abris

Photos Isabelle VANDERNOOT Chambre d’Agriculture-Conseil Horticole IDF sauf mention spécifique

PRESENTATION DU RESEAU D’OBSERVATEURS 2019

Animatrice : Isabelle VANDERNOOT Chambre Agriculture Île de France

Pour 2019, 16 établissements réalisant de la production de pépinières suivront leurs cultures dans le cadre réseau d'observateurs pépinières du BSV pépinière IDF. Les observations peuvent être réalisées sur 1 à 3 types de productions : pépinières de pleine terre (PT), de conteneurs en extérieur (CT ext) et/ou conteneurs sous abris (CT ab).

A cela s’ajoutent des suivis particuliers de populations de ravageurs par le biais de piégeages phéromones :

 En pleine terre : Cécidomyie du Gleditsia, Processionnaire du pin, Processionnaire chêne, Tordeuse des pousses du pin, Mineuse du marronnier, Cossus, Zeuzère.

 En conteneurs : Tordeuse de l’œillet.

Participants au réseau d'observateurs pépinière 2019 : Pépinières Allavoine / B DE MOLLIENS et N CHEMINEL (91 et 78), Pépinières de Bazainville / P LE PEN et A PINEL (78), Pépinières Chatelain / N AVRIL, L COTTREZ (95 et 77), Pépinières Croux / C MOQUET (77), Pépinières Euvé /S DIDON et JR EUVE (78), Pépinières de l’HUREPOIX / M MARION et K CHARRIAU (91), Pépinières L’Orme Montferrat / D MESSANT et B PICARD (77), Pépinières PESCHEUX THINEY / P THINEY (91), Plant Services / S MARECHAL (02), Pépinières Poullain / S PLU et F LE BORGNE (78), Pépinières Thuilleaux / T GABORIAU et N POUILLOT (78), Pépinières de Vieux Champagne / T COMPIN, Centre de Production Horticole de la Ville de Paris / T PERROUAS, S LE BOURHIS, L FABIANI, O MATHY, S HANQUET, JL FERRE, D BALLETTI (94)/ Ph LAMBIN, C MORIN (78), Exploitation pépinière du Lycée Horticole de St Germain En Laye (78)/ P MATHÉ, Astredhor Seine Manche / E RODRIGUEZ, GPSEA (94)/ M GAY et P BOIROT ; ainsi que des observations réalisées par Isabelle VANDERNOOT lors de visites en pépinières.

SITUATION GENERALE

Observations basées sur 0 visites terrain conseiller, 8 retours en hors sol et 5 en pleine terre.

Climatologie Après une 2nde quinzaine de février très douce et ensoleillée, la végétation s’est mise en activité rapidement.

Cependant le temps plus froid et pluvieux de cette semaine réduit quelque peu la vitesse de démarrage des pousses et 1ères floraisons.

A surveiller notamment

Les ravageurs et les maladies sont faiblement présents mais assez diversifiés. Cependant, on observe déjà de nombreux auxiliaires principalement sous abris.

Ravageurs : Sous abris, présence ponctuelle d’acariens, aleurodes, cicadelles, pucerons, psylles de l’Elaeagnus, chrysomèle sur romarin mais surtout cochenilles et otiorhynques au stade larvaire.

Maladies : Botrytis (bien aérer les abris)

AUXILIAIRES

Déjà de nombreux auxiliaires repérés dans les entreprises principalement sous abris (coccinelles, syrphes, chrysope, parasitoïdes pucerons, mésanges) mais aussi en extérieur en pleine terre et en conteneurs.

Auxiliaires 7/3 21/3 4/4 18/4 2/5 16/5 30/5 13/6 27/6 11/7 25/07 8/8 22/8 5/9 19/9 3/10 17/10

Commentaires BSV

Coccinelles A

Présences d’adultes de coccinelles notées dans plusieurs entreprises en PT, CT ext et CT ab

Syrphes O L A Présences de Syrphes adultes, œufs et larves

sous abris uniquement.

Chrysopes A Chrysopes adultes en sortie d’hivernation

sous abris.

(2)

Page 2 sur 5

Parasito ïdes Momies pucerons

Momies de pucerons repérées dans quelques sites sous abris

Mésanges A Mésanges et Bergeronnettes repérées sous

abris

RAVAGEURS

INSECTES PIQUEURS SUCEURS

ACARIENS / PHYTOPTES

RAVAGEURS 8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10 18/10

Commentaires BSV

Aca- riens

PT CT ext

CT ab Buddleia

ALEURODES

Aleurodes CT ab : Abelia, Photinia, V tinus dans 1

entreprise 1

Cultures sensibles

Lavatera, Viburnum tinus, Choisya, Pittosporum...

Symptômes et dégâts

 Plantes bloquées qui jaunissent puis développent de la fumagine - noircissement du feuillage. Observation de piqûres.

 Adultes : ressemblent à des moucherons blancs <5 mm. Ailes en forme de toit couchées sur le corps.

 Œufs : souvent pondus en arc de cercle, blancs après la ponte, puis plus sombres. Une femelle peut pondre jusqu’à 100-150 œufs.

 Larves : aplaties, translucides -0.3 à 0.7 mm -dépourvues d’ailes et peu mobiles qui ressemblent à des cochenilles

 Insecte piqueur principalement en face inférieure des feuilles. Réalise son cycle en 3 à 6 semaines

Conditions favorables au développement / période de présence

 Attaques assez rares en pépinière en IDF mais qui se développent sous abris.

Prophylaxie

 Eliminer au plus vite les lots de plantes atteintes notamment si le lot est réduit ou si ce sont des « vieilles » plantes. Les brûler afin d’éviter toute propagation.

Lutte biologique

Encarsia formosa et Eretmocerus mundus

Amblyseius swirskii

CICADELLES / APHROPHORES

RAVAGEURS 8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10

18/10

Commentaires BSV

Cica- delle

PT CT ext

CT ab Abelia, Photinia

COCHENILLES

Coche- nilles

PT

1 CT ext

CT ab Choisya, Euonymus, Syringa, V tinus

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Page 3 sur 5

COCHENILLES

Cultures sensibles

 Très nombreuses cultures dont Camelia, Euonymus japonicus, Taxus, Choisya, V tinus, Pittosporum…

Symptômes et dégâts

 Insecte piqueur suceur qui se nourrit de la sève des plantes, et provoque l’apparition de tâches jaunes puis une chute progressive des feuilles

 Diverses formes et aspects : à bouclier, en bâtonnets, farineuses ou à virgule. Très grand dimorphisme sexuel : certains males peuvent être volant sur une phase de leur développement.

 Œufs pondus sous le bouclier chez les espèces à carapace ou à bouclier, dans un sac chez les espèces à corps mou.

En cas de pullulation les dégâts sont à la fois directs et indirects :

 Prélèvement de sève, blessures sur l'écorce, déformations, suintements.

 Grande production de miellat puis développement de fumagine.

Conditions favorables au développement / période de présence

 Aime la chaleur et une certaine humidité d’où un risque important en été avec la rosée du matin et températures importantes.

Prophylaxie

 Pour éviter toute nouvelle contamination, ne pas placer des plantes sensibles sur les mêmes parcelles d’une année sur l’autre.

 Faire un nettoyage minutieux des installations, par exemple au Karcher.

 Vérifier que les jeunes plants reçus sont sains.

 En cours de saison, éliminer les plantes les plus atteintes ou couper les branches atteintes.

 Faites identifier les cochenilles rencontrées, cela conditionne la lutte.

Lutte biologique

 Il existe des pièges à phéromones pour certaines cochenilles afin de détecter la présence des mâles adultes et donc de limiter les accouplements.

 Favoriser le développement des auxiliaires naturels : abris à auxiliaires dont Chrysopes et coccinelles, bandes fleuries, plantes relais (Potentilla fructicosa), …

 Lâcher des Chrysopes, coccinelles Cryptolaemus, parasitoïdes Leptomastix dactylopii et Leptomastix abnormis

 Action mécanique avec alcool à 10%

PSYLLES

RAVAGEURS 8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10 18/10

Commentaires BSV

Elaeag nus

CT ext

CT ab Présence sous abris notamment d’œufs

PSYLLES DE L’ELAEAGNUS / CACOPSYLLA FULGURALIS

Cultures sensibles

 Les fortes attaques sont principalement notées sur Elaeagnus x ebbingei, Elaeagnus x ebbingei ‘Gilt Edge’ mais elles semblent moins importantes sur Elaeagnus x ebbingei

‘Compacta’ (à confirmer) et Elaeagnus x ebbingei ‘Viveleg’.

Symptômes et dégâts

 Forte présence de miellat et de fumagine sur les branches au cœur des Elaeagnus ebbingei à touche-touche et chute des feuilles. Ravageur apparu en France en 1999.

 Adultes 2-2,5 mm observables quasiment toute la saison. Ailes en toit translucides et corps brun. Pontes quand T° > 25 – 30°C, dispersées à la 1ère génération - Œuf 0,3 à 0,4 mm. Donnent des adultes puis une 2nde ponte massive (> 200 œufs/femelle) sous les écailles des feuilles jeunes qui entrent en maturité. Engendrent une 2nde génération - foyers jusqu’à 100 larves par feuille.

 Plusieurs générations se succèdent si les températures sont fraiches. Environ 4 générations avant les chaleurs d’été – Cycle : 10 j à 20°C / 1,5 mois à 40°C.

 Larves : Populations de larves localement très importantes.

 Jeunes stades larvaires caractérisés par des exsudats blancs filamenteux quelquefois difficiles à différencier de la pruine émise par la plante.

Conditions favorables au développement / période de présence

 Principalement au cours de l’hiver et au printemps, plantes resserrées sous abris. Bien observer les bourgeons en hiver. Grosse augmentation au printemps.

Adultes de psylles

Différents stades larvaires avec production de cire pouvant aller jusqu’à des dégâts importants sur plantes en hivernage !

(4)

Page 4 sur 5 Prophylaxie/ Lutte biologique

 Pour réussir sa lutte contre le Psylle de l’Elaeagnus il faut trouver le bon équilibre entre les auxiliaires en combinant sur toute l’année la présence :

 de l’auxiliaire parasitoïde Tamarixia,

 des anthocorides (petites punaises),

 des syrphes et des coccinelles.

 Afin de limiter le développement du psylle sur Elaeagnus lors de l’hivernage des végétaux sous tunnel ou sous serre il est important :

 de rentrer les Elaeagnus le plus tard possible et le moins longtemps possible. Ne pas trop serrer les plantes afin que l’auxiliaire hyménoptère parasitoïde Tamarixia upis puisse se déplacer et ainsi pondre dans les larves dès que les températures lui sont favorables (dès début mars).

 Entre deux cultures dans un abri, procéder à un bon nettoyage des bâches et structures afin de réduire les populations de psylles.

Produits de biocontrôle

 savon potassique, kaolin

Anthocorides adultes

Larves de psylles parasitées par Tamarixia sp avec trou d’émergence

PUCERONS

Puce- rons

PT CT ext

CT ab Photinia dont ‘Little Red Robin’ qui est très

sensible, Hypericum Pucerons

lanigères

En PT et CT ext, sur Malus tiges et scions

COLEOPTERES PHYTOPHAGES

Chrysomèles et

Galéruques Chrysomèles sur Romarin en CT ab

Otio rhyn ques

PT

CT ext L Heuchera

CT ab L Choisya, Lavandula

LEPIDOPTERES - CHENILLES PHYTOPHAGES

RAVAGEURS

8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10 18/10

Commentaires BSV

Pyrale du Buis Présence de chenilles en PT

Processionnaire

du chêne Sur Quercus en PT et en CT ext

Processionnaire du pin

Pinus nigra, Cedrus deodara en PT et gros CT ext

AUTRES RAVAGEURS

RAVAGEURS

8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10 18/10

Commentaires BSV

Mollus ques

PT Quelques présences de mollusques repérées

en cultures CT ext

CT ab

Plathelminthes Signalisation dans 1 entreprise en CT ext

Campagnols Signalisation dans 1 entreprise en PT sur

Malus

Lapins/Lièvres Sangliers / Cervidés

PT : Dégâts de lapins suite aux gelées signalés dans de nombreuses entreprises notamment sur Malus fruitiers et Syringa

CT ext : consommation du bois et des jeunes bourgeons

MALADIES

FEUILLES – POUSSES

MALADIES

8/3 22/3 5/4 194 2/5 17/5 31/5 14/6 28/6 12/7 26/7 9/8 23/8 6/9 20/9 4/10 18/10 Commentaires BSV

Botrytis

Pourriture grise CT ab : Nandina, Œillet de poète 1

Entomosporiose Photinia

Oïdium PT CT ext

CT ab Aquilegia

Septo- riose

PT

1

CT ext Escallonia, Lavandula

CT ab

(5)

Page 5 sur 5

BOTRYTIS – POURRITURE GRISE

Symptômes et dégâts

 Développement d’un duvet gris caractéristique sur les jeunes rameaux, feuilles, fruits, bourgeons et fleurs nécrosés.

 Ce champignon entraine :

 le dépérissement des jeunes plants,

 des taches et nécroses sur feuilles et jeunes pousses,

 le dessèchement et la pourriture des fleurs et des fruits.

 Cette maladie se développe notamment sur jeunes pousses et plantes serrées, sous abris en hiver et au printemps.

Conditions favorables au développement / période de présence

 Ce champignon se conserve sur les plantes, les débris végétaux ou sur le sol. Il pénètre dans la plante par les plaies ou par des cellules saines de végétaux jeunes. Germination dans l’eau et développement optimal du mycélium entre 18 et 23°C. Les fructifications par très forte humidité permettent les contaminations secondaires.

Prophylaxie

 Eliminer les parties de culture atteintes, sur la plante et au sol ; les brûler.

 Eviter l’humidité stagnante ou les fortes hygrométries sous abris (arrosage par aspersion), couplées avec des températures entre 18 et 23°C.

 Aérer les abris dès que le temps le permet.

 Eviter les fertilisations trop azotées.

 Desserrer les plantes.

SEPTORIOSE

Cultures très sensibles

Lavandula, Gaurra, Hebe, Cornus.

Symptômes et dégâts

 taches rouges-brunes auréolées de jaune à rouge suivant les cultures touchées

 Sur Lavandula les symptômes sont des taches noires et un dépérissement de la plante.

 Jusqu’à 6 cycles/an

 Apparition de pycnides en fin d’été en relief sur les taches (mycélium) qui vont se conserver durant l’hiver sur les feuilles (sur plantes pour les persistants ou au sol).

 En période favorable les pycnides vont libérer des spores qui seront disséminées par les pluies. Incubation 14 à 20j.

Prophylaxie

 Afin d’éviter la propagation de la maladie, il est important d’assécher au maximum les plantes

 Dans la journée, aérer dès que possible les abris pour réguler l’hygrométrie et la température.

 Éviter les arrosages par aspersion ou les faire le matin ainsi le feuillage pourra sécher rapidement et il restera sec pendant la nuit.

 Si possible préférer une irrigation goutte à goutte pour les lavandes.

 Distancer les plantes et notamment les jeunes plants de lavandes à la réception.

 Eliminer les feuilles mortes.

******************

Action pilotée par le Ministère chargé de l'agriculture, avec l’appui financier de l’Agence française pour la biodiversité, par les crédits issus de la redevance pour pollutions diffuses attribués au financement du plan Ecophyto.

Observations : Chambre d'Agriculture de Région Ile-de-France, les horticulteurs et les pépiniéristes du réseau épidémio-surveillance d'Ile-de-France.

Rédaction : Chambre d'Agriculture de Région Ile-de-France : Isabelle CADIOU pour l'horticulture et Isabelle VANDERNOOT pour la pépinière.

Comité de relecture: DRIAAF – SRAL, FREDON Ile de France

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Le Bulletin de Santé du Végétal est édité sous la responsabilité de la Chambre d’agriculture de Région Ile-de-France sur la base d’observations réalisées par le réseau. Il est produit à partir d’observations ponctuelles. S’il donne une tendance de la situation sanitaire régionale, celle-ci ne peut être transposée telle quelle à la parcelle. La Chambre d’agriculture de Région Ile-de-France dégage toute responsabilité quant aux décisions prises par les agriculteurs pour la protection de leurs cultures. Tout document utilisant les données contenues dans le Bulletin de Santé du Végétal Ile-de-France doit en mentionner la source en précisant le numéro et la date de parution du Bulletin de Santé du Végétal.

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