1.1 La population
L’étude a été menée uniquement sur des chiennes provenant d’un même élevage, donc soumises aux mêmes conditions environnementales. Or les germes responsables de mammites chez la chienne sont majoritairement d’origine environnementale (Fontaine et al 2007). Il n’est par conséquent pas possible d’extrapoler les résultats de notre étude concernant la prévalence des mammites chez les chiennes en post-partum à l’ensemble des chiennes en post-partum.
Chez les bovins, le nombre de leucocytes dans le lait est affecté par l’âge de la femelle et le nombre de lactations (Plastridge 1958, Harmon 1994). En outre, plusieurs autres facteurs agissent sur la quantité de cellules dans leur lait, comme la saison : une augmentation du nombre de cellules dans le lait est en effet rapportée en été. Le stress est également associé à une augmentation du nombre de cellules dans le lait. Des variations nycthémérales et des variations d’un jour sur l’autre sont aussi présentes sur un même individu, entre les différentes mamelles (Dohoo et Meek 1982). Cependant, chez les vaches ayant des mamelles non infectées, le stade de lactation, l’âge, la saison et les facteurs de stress influencent peu le nombre total de cellules dans le lait. Par conséquent, hormis les variations nycthémérales, peu de facteurs autres que l’infection modifient de façon significative la quantité de cellules dans le lait (Harmon 1994). Chez la chienne, aucune étude n’a été réalisée pour évaluer quels facteurs engendrent une variation de la quantité de cellules dans le lait. Il serait donc intéressant de mener une telle étude pour déterminer pour quels facteurs la variation est significative. Ceci nous permettrait d’évaluer en quelle proportion notre étude est biaisée par ces facteurs de variation. En effet, nous n’avons par exemple pas tenu compte de la parité des chiennes. De même, la taille de la portée n’a pas été prise en compte dans notre étude. Les prélèvements n’étaient pas non plus réalisés à la même heure suivant la chienne.
1.2 Les prélèvements
Il a été prouvé chez les bovins que le nombre de cellules dans le lait varie en fonction de la période du post-partum avec notamment une forte augmentation de leur nombre après le vêlage, pendant 5 à 15 jours (Dohoo et Meek 1982). La proportion de chaque type de leucocytes varie elle aussi au cours de la lactation avec notamment une diminution du pourcentage de lymphocytes et une augmentation du pourcentage de neutrophiles au cours du temps (Figure 25).
39
Figure 25 : Proportion des leucocytes en fonction du stade de lactation chez la vache (Dosogne et al 2003)
Néanmoins, nous avons prélevé le lait seulement au 3ème jour post-partum donc à la fin de la phase colostrale. En effet, le colostrum étant richement cellulaire, la définition d’une mammite sur la seule base du nombre de cellules inflammatoires aurait été difficile.
En outre, chez la chienne le nombre total de cellules varie fortement d’un individu à l’autre, mais lors de mammite leur nombre subit toujours une augmentation (Ververidis et al 2007, Sangha et al 2011). Il faudrait alors réaliser une étude préliminaire chez la chienne pour connaître la cinétique des leucocytes dans le lait en post-partum. Pour cela, il faudrait comparer la quantité de neutrophiles, voire même la proportion de chaque type de leucocytes, chez une même chienne sur des prélèvements de lait réalisés à différents jours de lactation. Cela nous permettrait également d’obtenir des valeurs de référence chez la chienne. Ensuite, nous pourrions tenter de mettre en évidence une période critique pour les chiennes, autrement dit une période du post-partum pendant laquelle le nombre de mammites subcliniques est plus fréquent, ce qui permettrait aux éleveurs de savoir à quel moment il faut nécessairement réaliser des prélèvements pour détecter la majorité des mammites subcliniques. Dans notre étude, nous avons restreint les prélèvements au 3ème jour post- partum pour évaluer les répercussions des mammites subcliniques sur la croissance et la survie des chiots. En effet, la croissance précoce influe sur la survie des chiots.
1.3 Les frottis de lait
La coloration des lames n’a pas eu lieu le même jour pour toutes les lames. En effet, un envoi des lames était effectué chaque semaine ; la coloration était donc réalisée au fur et à mesure. Si nous attendions plus de 15 jours pour la réaliser, nous risquions de perdre des informations, l’étalement ne restant stable qu’après coloration. Bien qu’étant réalisée avec le même appareil, la coloration n’apparaît pas de la même façon sur toutes les lames. Nous pouvons donc nous demander si cela est dû au lait en lui-même ou alors au délai entre l’étalement et la coloration. En effet, certaines lames ont un fond plus bleu, tandis que d’autres ont une trame plus rosée. Par conséquent, les neutrophiles n’étaient pas colorés de la même façon sur
40
toutes les lames ; la couleur pouvait induire en erreur et n’était donc pas un critère fiable à lui seul pour pouvoir identifier les neutrophiles. De plus, l’étalement sur certaines lames a été en partie altéré par des mouches (qui ont ingéré le lait étalé au cours du séchage).
1.4 La centrifugation
Les résultats de cette étude montrent une faible corrélation entre le nombre de neutrophiles comptés sur les étalements de lait total et les étalements correspondants, issus de lait centrifugé. Par ailleurs, la variation est très élevée entre les comptages effectués sur les deux types d’étalements et en général (46% des frottis) le nombre le plus élevé de neutrophiles est obtenu sur les frottis provenant de lait centrifugé. Le lait de la chienne est très riche en globules lipidiques. Le taux lipidique est maximal au 2ème jour post-partum, où il atteint 5,2%, et diminue ensuite progressivement jusqu’au sevrage pour atteindre 2,7% (Bebiak et al 1987). Ainsi, la matière grasse représente 41% de la matière sèche du lait (Greco 2014). En comparaison, chez la truie ainsi que chez la vache, la matière grasse représente environ 30% de la matière sèche du lait (Hughes et Hart 1935). Par conséquent, sur un étalement après coloration au May-Grünwald-Giemsa®, de nombreuses vacuoles optiquement vides sont observables. Ces vacuoles, très nombreuses, gènent le dénombrement des neutrophiles. La centrifugation, en séparant la composante lipidique de la composante cellulaire, a pour objectif de limiter le nombre de ces globules lipidiques facilitant ainsi la lecture des lames et donc le comptage des neutrophiles. Cependant, sur certaines lames centrifugées, la quantité de globules lipidiques était très proche de celle contenue sur les lames non centrifugées (comme par exemple sur la lame de la Figure 26). Ceci peut s’expliquer par le fait que la couche lipidique soit la couche la plus superficielle après centrifugation. Par conséquent, pour accéder au culot, il faut d’abord passer cette couche lipidique. Le pertuis au sein de cette couche était réalisé avec l’embout de la pipette, il est donc possible que l’extrémité de l’embout contienne parfois un peu de lipides. De plus, en étudiant les variations entre les comptages réalisés sur les deux types de prélèvements en fonction de la période de l’étude, donc en distinguant les périodes pendant lesquelles des opérateurs différents étaient présents, nous remarquons que la différence entre le comptage réalisé sur lait centrifugé et sur lait total varie de façon significative suivant la période de l’étude et donc suivant les opérateurs. Ceci montre l’implication de la technique dans le comptage des neutrophiles, sur les étalements de lait centrifugé. Suivant les opérateurs, le culot a pu ne pas suffisamment avoir été remis en suspension avant le prélèvement, entrainant une sous-estimation du nombre de neutrophiles. Le culot a tendance en effet à se coller au plastique ; des tubes en verre auraient été préférables.
41
Figure 26 : Frottis de lait après centrifugation de la chienne 30, mamelle M2G (grossissement X200)