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Formation  du  système  nerveux  central  du  poisson-­‐zèbre

5.   LE  POISSON-­‐ZEBRE,  UN  ORGANISME  MODELE

5.3   Formation  du  système  nerveux  central  du  poisson-­‐zèbre

5.3 Formation  du  système  nerveux  central  du  poisson-­‐zèbre  

 

5.3.1 Développement  du  cerveau    

   

Le  développement  embryonnaire  du  cerveau  du  poisson-­‐zèbre,  prend  ses  origines   comme   c’est   le   cas   pour   tous   les   autres   vertébrés,   durant   la   spécification   du   neuroectoderme.  Ce  processus  est  appelé  «  l’induction  neurale  »  et  est  initié  au  moment  de   la   gastrulation,   lorsque   la   couche   mésodermique   en   formation   entre   en   contact   avec   l’ectoderme   le   recouvrant   (Doniach   and   Musci,   1995;   Lumsden   and   Krumlauf,   1996;   Spemann   and   Mangold,   2001).   Cette   couche   mésodermique   présomptive   sécrète   localement   des   facteurs   importants   pour   induire   ou   inhiber   l'induction   neurale   dans   la   couche   ectodermique.   Une   fois   déterminé,   l'ectoderme   neural   forme   la   plaque   neurale,   précurseur  du  système  nerveux.    

La   plaque   neurale   se   creuse   ensuite,   s'invagine   de   manière   à   former   la   gouttière   neurale  puis,  les  plis  neuraux  qui  bordent  la  gouttière  fusionnent  pour  fermer  la  gouttière   qui   devient   le   tube   neural   Au   cours   de   ce   processus   de   neurulation,   le   poisson-­‐zèbre   diffère   des   autres   vertébrés:   au   lieu   de   replier   la   plaque   neurale   immédiatement   pour   former   un   tube   avec   une   lumière,   il   se   forme   d'abord   une   épaisse   couche   de   cellules   (neural   keel).   Cependant,   la   disposition   topologique   des   cellules   chez   le   poisson-­‐zèbre   pendant  la  formation  de  ce  ‘neural  keel’  à  partir  de  la  plaque  neurale  est  similaire  à  celle   d'autres   vertébrés   (Schmidt   et   al.,   2013)   (Figure   18).   On   observe   alors   une   partie   antérieure  renflée,  la  vésicule  céphalique  primitive,  qui  se  segmente  en  trois  vésicules  qui   deviendront  le  prosencéphale,  le  mésencéphale,  et  le  rhombencéphale  qui  est  rattaché  à  la   moëlle  épinière.  Chacune  des  trois  vésicules  se  subdivise  ensuite  en  différentes  régions.  Le   prosencéphale,    la  plus  antérieure  des  vésicules,  se  divise  en  deux  régions,  le  diencéphale   pour   sa   partie   caudale   et   le   prosencéphale   secondaire   pour   sa   partie   rostrale,   cette   dernière   contenant   entre   autre   l’aire   préoptique   et   l’hypothalamus,   qui   sont   impliqués   dans  les  régulations  endocrines.  

   

 

Figure  18  :  Principales  subdivisions  du  cerveau  embryonnaire  des  Vertébrés.  D’après   (Medina,  2009)  

   

En  ce  qui  concerne  le  modèle  du  poisson  zèbre,  la  présence  des  trois  vésicules    ne   devient  évidente  qu’après  environ  12  heures  de  développement  (Kimmel  et  al.,  1995).  La  

et  22  hpf  pour  initier  l’ouverture  des  ventricules  cérébraux.  Les  ventricules  croissent  alors   en  taille,  jusqu’  à  48hpf  où  la  phase  initiale  de  neurogenèse  est  terminée  (Lowery  and  Sive,   2009).  La  neurogenèse  prend  ensuite  place  autour  de  la  lumière  des  ventricules.  Chacune   de   ces   vésicules   contient   alors   des   zones   prolifératives   dans   lesquelles   les   neurones   et   cellules  gliales  sont  formés.    

Le   destin   des   neurones   nouvellement   formés,   est   fortement   influencé   par   les   morphogènes   secrétés   par   les   différents   centres   de   signalisations,   ainsi   que   par   l'expression  d'un  ensemble  spécifique  de  gènes  exprimés  au  sein  de  territoires  distincts  du   tube  neural  (Vieira  et  al.,  2010).  Ainsi,  comme  les  molécules  de  signalisation  et  les  profils   d'expression   de   nombreux   facteurs   de   transcription   au   cours   des   différents   stades   de   développement   sont   bien   conservés,   les   mécanismes   de   base   de   la   régionalisation   sont   considérés  comme  conservés.  

Profitant  des  techniques  de  transgenèse  ou  d’ARN  antisens  de  type  morpholino,  la   connaissance   des   gènes   impliqués   dans   le   développement   du   cerveau   ne   cessent   de   s’améliorer.  Certains  gènes  semblent  avoir  des  fonctions  similaires  chez  les  mammifères  et   les  téléostéens.  Par  exemple,  comme  chez  les  mammifères,  foxg1a  joue  un  rôle  crucial  dans     le  développement  du  télencéphale  des  téléostéens,  et,  Rx3  est  nécessaire  pour  la  formation   des  yeux  et  du  «  eye  field  »  (Stigloher  et  al.,  2006;  Danesin  et  al.,  2009).  De  façon  similaire,   le  patron  d’expression  de  shha  et  nkx2.1a  est  conservé,  suggérant  un  rôle  important  de  ces   deux   facteurs  de   transcription   dans   le   développement   de   l'hypothalamus   (Rohr   et   al.,   2001;  van  den  Akker  et  al.,  2008).  

En   revanche,   alors   même   qu’elle   occupe   une   grande   partie   du   cerveau   antérieur   chez  le  poisson  zèbre  adulte,  la  région  préoptique  n'a  pas  été  aussi  clairement  définie  chez   la  larve.  L’aire  préoptique  se  trouve  en  fait  située  dans  une  région  charnière,  rostralement   par  rapport  à  l’hypothalamus  et  caudalement  par  rapport  au  télencéphale,  et  de  fait,  son   origine  embryonnaire  (télencephalique  ou  hypothalamique)  est  toujours  l’objet  de  débats.   Si  les  études  fonctionnelles  ont  coutume  de  relier  l’aire  préoptique  à    l’hypothalamus,  des   études  génétiques  plus  récentes  menées  chez  la  souris  et  le  poulet  contredisent  clairement   ce   dogme   et   montrent   que   cette   région   appartient   au   moins   en   partie   au   télencéphale   (Flames  et  al.,  2007)  (Bardet  et  al.,  2010).  

   

5.3.2 Neurogenèse  dans  le  cerveau  adulte  

 

En   quelques   années,   plusieurs   découvertes   ont   contribué   à   l’effondrement   du   dogme   qui   définissait   le   cerveau   adulte   comme   incapable   de   générer   de   nouveaux   neurones  (Altman  and  Das,  1965;  Kaplan,  1981;  Reynolds  and  Weiss,  1992).  L’émergence   de  nouvelles  techniques  pour  étudier  la  prolifération  cellulaire,  telles  que  le  marquage  à  la   bromodéoxyuridine   (Brdu)   ou   au   5-­‐éthynyl-­‐2'-­‐deoxyuridine   (EdU),   ou   encore   l’immunohistochimie   de   la   protéine   PCNA   (proliferating   cell   nuclear   antigen),   a   favorisé   considérablement  l’avancée  des  recherches  sur  la  neurogenèse  adulte.    

Chez  les  mammifères,  il  est  maintenant  admis  que  dans  le  cerveau  adulte  il  existe   des  territoires  de  prolifération  neuronale  (pour  revue,  (Lindsey  and  Tropepe,  2006)).  A  ce   jour,  deux  aires  de  neurogenèse  télencéphaliques  ont  été  mises  en  évidence,  la  zone  sous-­‐ ventriculaire  qui  borde  les  ventricules  latéraux  et  la  zone  sous-­‐granulaire  du  gyrus  dentelé   de  l’hippocampe.    

Le   cerveau   des   poissons   téléostéens   contraste   considérablement   avec   celui   des   mammifères   puisque   l’activité   de   prolifération   à   l’âge   adulte   ne   se   limite   pas   à   deux   régions  mais  elle  s’étend  à  de  nombreux  territoires  cérébraux  (Figure  19)  (Ekstrom  et  al.,   2001;  Zupanc  et  al.,  2005;  Adolf  et  al.,  2006;  Grandel  et  al.,  2006;  Kuroyanagi  et  al.,  2010).    

 

 

Figure  19:  Représentation  schématique  des  zones  de  prolifération  et  de  neurogenèse  dans   le  cerveau  du  poisson-­‐zèbre  adulte.  D’après  Kaslin  et  al.  (2008)  

   

périventriculaires  du  cerveau  antérieur  au  niveau  des  bulbes  olfactifs,  du  télencéphale,  du   diencéphale,  de  la  région  préoptique  et  de  l’hypothalamus.  Des  territoires  de  prolifération   ont   également   été   mis   en   évidence   dans   le   cervelet,   le   rhombencéphale   et   la   moelle   épinière.   Comme   chez   les   mammifères   (Alvarez-­‐Buylla   and   Garcia-­‐Verdugo,   2002;   Kempermann,  2002;  Taupin  and  Gage,  2002;  Goldman,  2003;  Garcia  et  al.,  2004;  Merkle  et   al.,   2004;   Doetsch   and   Hen,   2005;   Lledo   and   Saghatelyan,   2005),   les   oiseaux   (Goldman,   1998),  et  les  reptiles  (Garcia-­‐Verdugo  et  al.,  2002),  la  plupart  des  cellules  générées  dans   ces   zones   prolifératives   se   différencient   en   neurones   (Zupanc,   2001;   Adolf   et   al.,   2006;   Grandel  et  al.,  2006;  Zupanc  et  al.,  2006).    

L’utilisation   de   marqueurs   neuronaux   associés   à   des   marqueurs   de   prolifération   a   permis  de  définir  la  nature  des  cellules  progénitrices  de  ces  neurones.  Ainsi,  ces  cellules   ont   été   identifiées   comme   étant   des   cellules   gliales   radiaires.   Chez   les   mammifères,   les   cellules  de  la  glie  radiaire  sont  depuis  longtemps  connues  pour  leur  rôle  essentiel  dans  la   neurogenèse  embryonnaire.  En  effet,  en  plus  de  constituer  un  support  de  migration  pour   les   nouveaux   neurones,   il   est   maintenant   admis   qu’elles   peuvent   être   des   cellules   progénitrices  neuronales  (Malatesta  et  al.,  2000;  Noctor  et  al.,  2001;  Gotz  and  Barde,  2005;   Mori   et   al.,   2005).   Alors   que   chez   les   mammifères,   ces   cellules   se   différencient   en   astrocytes  à  la  fin  de  la  période  de  neurogenèse  embryonnaire,  dans  le  cerveau  des  oiseaux   et   des   poissons,   ces   cellules   gliales   radiaires   persistent   à   l’âge   adulte   et   peuvent   donner  

6. LE  PROJET  DE  THESE  

 

 

Comme  exposé  au  cours  de  cette  introduction,  la  fonction  de  reproduction  a,  chez   certains   vertébrés,   en   particulier   chez   de   nombreux     téléostéens,   la   particularité   d’être   placée  sous  un  double  contrôle  cérébral,  stimulateur  par  la  gonadolibérine  (GnRH),  mais   aussi  inhibiteur  par  la  DA.    

Le   but   de   cette   thèse   était   d’approfondir   nos   connaissances   sur   le   système   dopaminergique   impliqué   dans   ce   contrôle   inhibiteur.   Pour   ce   faire,   nous   voulions   tirer   avantage  du  poisson-­‐zèbre,  un  organisme  modèle  de  plus  en  plus  utilisé  en  laboratoire  et   pour   lequel   existent   de   nombreux   outils   moléculaires.   Nos   connaissances   sur   l’endocrinologie   de   la   reproduction   du   poisson-­‐zèbre   ont   considérablement   augmenté   notamment  grace  au  séquençage  de  son  génome  (Howe  et  al.,  2013).  L’étude  comparative   du   génome   du   poisson-­‐zèbre   avec   celui   de   l’être   humain,   de   la   souris   ou   d’autres   organismes,   a   permis   l’identification   de   gènes   orthologues   ou   paralogues   (qui   résultent   d'une  duplication  génique),  et  même  de  nouveaux  gènes.  Ces  travaux  ont  notamment  mis   en   évidence   l’implication   de   nombreux   gènes   dans   l’embryogenèse   ou   dans   l’organogenèse.  De  plus,  de  par  sa  position  dans  l’arbre  phylogénétique,  cet  animal  apporte   des  informations  relatives  au  développement  et  à  l’évolution  qui  ne  peuvent  être  obtenues   en   étudiant   la   drosophile   (Drosophila   melangaster)   ou   le   nématode   (Caenorhabditis   elegans)  (Dooley  and  Zon,  2000).  

Néanmoins,   de   nombreuses   lacunes   concernant   la   physiologie   de   la   reproduction   subsistent  chez  le  poisson-­‐zèbre.  Ainsi,  le  rôle  de  la  DA  dans  le  contrôle  de  la  reproduction   n’a   jamais   été   exploré   dans   cette   espèce.   L’importance   du   contrôle   dopaminergique   inhibiteur  de  la  fonction  gonadotrope,  variant  d’une  espèce  de  téléostéen  à  l’autre,  notre   premier   objectif   a   donc   été   de   rechercher   s’il   existait   bien,   chez   le   poisson-­‐zèbre,   un   contrôle  inhibiteur  de  la  reproduction  par  la  DA.  L’objectif  suivant  fut  d’étudier  les  bases   anatomiques   et   morphologiques   de   ce   contrôle   dopaminergique   de   la   fonction   gonadotrope  dans  cette  espèce,  en  recherchant  les  récepteurs  hypophysaires  de  la  DA  et   les   neurones   DAergiques   impliqués   dans   cette   régulation.   Enfin,   nous   avons   mis   en   évidence   certaines   caractéristiques   développementales   des   neurones   neuroendocrines