La fermentation éthanolique des sucres de la bagasse fraîche est réalisée dans un fermenteur prépilote d’un volume opératoire de 4 litres.
La souche utilisée pour la fermentation est une levure de Saccharomyces cervisiae de l’Institut de Cellulose et Papier de l’Université de Guadalajara, Jalisco, Mexique. L’inoculum est préparé sur le même milieu de culture que précédemment (IV.2), exception faite du glucose et le milieu de la fermentation est le même.
La bagasse est introduite dans le fermenteur avec 0,4 litre d’inoculum et la quantité d’eau correspondant au rapport liquide/solide choisi. Le fermenteur est maintenu à 30°C sous agitation (20 rpm) sans aération : un échantillon est prélevé toutes les 2 heures et le pH, l’oxygène dissous (OD), l’éthanol, la biomasse et les sucres réducteurs totaux sont dosés.
IV.4 Fermentation éthanolique des sucres de la bagasse fraîche en
fermenteur pilote
La fermentation éthanolique des sucres de bagasse fraîche est réalisée dans un fermenteur pilote thermostaté, d’un volume opératoire de 16 litres.
Prélèvement des échantillons
Mesure de température Manomètre Valve de sécurité Fermenteur pilote (20 l) Bagasse d’agave Eau chaude Eau Serpentin (huile) Bain thermostaté
Régulateur vitesse de rotation Prélèvement des échantillons
Mesure de température Manomètre Valve de sécurité Fermenteur pilote (20 l) Bagasse d’agave Eau chaude Eau Serpentin (huile) Bain thermostaté
Régulateur vitesse de rotation Prélèvement des échantillons
Mesure de température Manomètre Valve de sécurité Fermenteur pilote (20 l) Bagasse d’agave Eau chaude Eau Serpentin (huile) Bain thermostaté
Régulateur vitesse de rotation
La souche utilisée pour la fermentation est une levure de Saccharomyces cervisiae de l’Institut de Cellulose et Papier de l’Université de Guadalajara, Jalisco, Mexique. L’inoculum est préparé sur le même milieu de culture que précédemment (IV.2), et le milieu de la fermentation est le même, exception faite du glucose.
La bagasse est introduite dans le fermenteur avec 1,5 litres d’inoculum et la quantité d’eau correspondant au rapport liquide/solide choisi. La concentration initiale de Saccharomyces cervisiae, préparée pendant 24 heures, est de 3,48 g/l. L’ensemble est maintenu à 30°C, sous agitation (340 rpm) sans aération.
Un échantillon du milieu est prélevé toutes les 2 heures et l’éthanol et les sucres réducteurs totaux sont dosés.
V.1 Hydrolyse acide des hémicelluloses de la bagasse d’agave
sèche
L’hydrolyse acide de la bagasse d’agave est effectuée dans un réacteur autoclave Buchi.
L a bagasse broyée est introduite dans le réacteur préchauffé à 100°C, avec l’eau acidulée (H2SO4 4 %) dans le rapport liquide/solide choisi. L’ensemble est
maintenu à 130°C sous agitation (600 rpm) pendant 90 minutes. L’hydrolyse est ensuite filtrée.
V.2 Extraction des sucres de bagasse de canne à sucre par
hydrolyse acide
La bagasse d’agave est introduite avec la solution d’acide à la concentration choisie et maintenue à la température définie sous agitation. Les échantillons du milieu sont prélevés à différents temps et les sucres réducteurs totaux sont dosés.
1. Bain-marie de l’huile 2. Réacteur en verre 3. Réfrigérant
4. Fermeture de l’agitateur Quickfit ST20/4 5. Baguette d’agitation en acier inoxydable 6. Agitateur Heidolph RZR-2000
7. Régulateur de révolutions pour minute. Volume d’opération 1 l 1. Bain-marie de l’huile
2. Réacteur en verre 3. Réfrigérant
4. Fermeture de l’agitateur Quickfit ST20/4 5. Baguette d’agitation en acier inoxydable 6. Agitateur Heidolph RZR-2000
V.3 Fermentation éthanolique par Pachylosem tannophilus
Les hydrolysats de la bagasse d’agave sont ajustés à pH 4,5 avec NaOH 4N et stérilisés par filtration sur filtre millipore de 0,2 m. Les hydrolysats, ainsi préparés, sont utilisés comme milieu de culture par la fermentation éthanol-xylitol, en utilisant la levure Pachysolen tannophilus, avec les nutriments suivants : extrait de levure = 4 g/l ; peptone = 3,6 g/l ; MgSO4 7H2O = 2,5 g/l ; KH2PO4 = 2 g/l ; (NH4)2SO4 =
3 g/l.
L’inoculum de Pachysolen tannophilus est préparé sous 48 heures à 30°C en tubes de 100 ml de capacité avec un milieu solide incliné, composé de : extrait de levure = 3 g/l ; extrait de malte = 3 g/l ; peptone = 5 g/l ; xylose = 10 g/l ; agar-agar = 20 g/l et préparé de la façon suivante : les constituants sont dissous dans l’eau, sauf l’agar-agar qui est ajouté après ajustement du pH à 7. L’ensemble est chauffé jusqu’à ébullition pour dissoudre l’agar. Après le refroidissement de 25 ml dans chaque tube sous vide, les tubes sont bouchés avec un bouchon en coton et sont stérilisés dans une autoclave (20 lb pendant 30 minutes). Les tubes sont placés en position inclinée pour obtenir un milieu solide incliné et sont utilisés pour l’inoculation de Pachysolen tannophilus.
Les hydrolysats préparés, stérilisés et l’inoculum sont introduits dans les fermenteurs (au préalable stérilisés).
La fermentation est menée à 32°C et un prélèvement toutes les 2 heures est réalisé pour analyser la concentration de biomasse, en sucres, en éthanol et en xylitol. La concentration en biomasse est calculée par mesure de l’absorbance à 620 nm. 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0.14 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 Absorbance (620 nm) Bi o m asse g /L 1. Bassins fermenteurs
2. Bain-marie. Selecta mod. Digiterm S-542
3. Equipement d’agitation Heldioph MR2000, avec une baguette de téflon 4. Contrôleur d’agitation Heldioph 2002
5. Tubes en caoutchouc silicone pour extraire les échantillons
6. Bombe Millipore modèle XX80202 30, utilisée pour la stérilisation des milieux de culture
7. Porte-filtres. Contient un filtre de nitrate de cellulose (porosité 0,2 µm), un filtre de laine en verre ; Utilisé pour la filtration des milieux de culture
8. Appareil pour mesurer le pH
9. Electrode combinée pour mesurer le pH. Volume d’opération 2 l 1. Bassins fermenteurs
2. Bain-marie. Selecta mod. Digiterm S-542
3. Equipement d’agitation Heldioph MR2000, avec une baguette de téflon 4. Contrôleur d’agitation Heldioph 2002
5. Tubes en caoutchouc silicone pour extraire les échantillons
6. Bombe Millipore modèle XX80202 30, utilisée pour la stérilisation des milieux de culture
7. Porte-filtres. Contient un filtre de nitrate de cellulose (porosité 0,2 µm), un filtre de laine en verre ; Utilisé pour la filtration des milieux de culture
8. Appareil pour mesurer le pH
Abafour, J., (1969). : Manuel d’alimentation animal du bétail, tom2. Dunod.
Abderrazak, M., (2000). Dictionnaire de botanique des Phanérogames. DUNOD. Paris, Francia. pp 30, 81, 179-217.
Aguirre R., J.; Chascas S., H.; Flores F., J., L., (2001), : El maguey mezcalero potosino. Consejo Potosino de Ciencia y Tecnología. Gobierno del Estado de San Luis Potosí, 87, 59-61.
Albersheim P. McNeil M. and Labavitch J.M. (1977), : The wall of growing cells dans Plant growth regulation, Edited by P.E. Pilet, Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New-York.
Alexopoulos, C.J.; Mims, C.W.; Blackwell.M. (1996),: Introductory Mycology. John Wiley & sons, Inc.
Aspinall, G. O. ; Das Gupta, P.C. (1959), : The structure of de fructosan from Agave veracruz Mill. J. Am. Chem. Soc. 81, 718-722.
Barbosa Maria de F.S, Hung Lee, Henry Schneider and Cecil W. (1990). Forsberg. Temperature mediated changes of -xylose metabolism in the yeast Pachysolen tannophilus. FEMS Microbiology Letters, 72, 1-2, 35-40.
Barr, D.P., Aust, S.D. (1994), : Mechanisms white-rot fungi use to degrade pollutants. Environ. Sci. Technol. 28, 2: 78A-87A.
Bathia, I.S. ; Nandra, K.S. (1979), : Studies on fructosyl transferase from Agave americana. Phytochemistry, 18, 923-927.
Bazus, A. (1990): Raffinage des agroresourses: extraction et caracterisation des glucuroxylanes des coques de tournesol. Thèse de Doctorat INPToulouse, 1990. Beutler,H.O. ; Michal, G. ; Z. (1997), : Anal. Chem. 284, 113.
Bichio, P.A. , J. Douglas Cunningham and Hung Lee (1989). : Differential fructose effect in Pachysolen tannophilus and Pichia stipitis. FEMS Microbiology Letters, 57, 3, 323-327 .
Bichio, P.A., Runnals, P.L., Cunningham, J.D., and Lee, H.(1988) : Induction of xylitol deshydrogenase activities in Pachysolen tannophilus and Pichia stipis on mixed sugars. Appl. Environ. Microbiol., 54, 50-54.
Bicho Paul.A., J. Douglas Cunningham and Hung Lee. (1989), : Differential fructose effect in and Pichia stipitis. FEMS Microbiology Letters, 57, Issue 3, 323- 327.
Bravo V, Fernando Camacho, Sebastián Sánchez and Eulogio Castro. (1995). : Influence of the concentrations of -xylose and yeast extract on ethanol production by Pachysolen tannophilus. Journal of Fermentation and Bioengineering, 79, 6, 566-571.
Bureau au commun des pailles. (1991). : La filiére paille : son organisation et le developpement des marchés.
Cámara Tequilera, (2003), : informe de la camara nacional de la industria tequilera sobre su comportamiento durante el año de 2003. Gudalajara Jalisco, México.
Castro, E. (1989). : Fermentación etanolica discontinua de xilosa con Pacysolen tannophilus. Tesina de licenciatura. Université de Jaen. España.
Castro, E. (1993). : Fermentación de D-xilose y D glucose con levaduras. Tesis Doctoral. Université de Jaen. España.
Conzatti, C., : (1947) Flora taxonomica mexicana., 2 : 93-118, Talleres gráficos de la Nación. México, D.F., México.
Damiot, M. (1998), : Procédé d’extraction blanchiment appliqué au fractionnement de la pulpe de betterave : étude des propiétes rhéologiques et adhésives des polysaccharides pariétaux non cellulosiques . Thèse de Doctorat INPToulouse, France.
Dellweg, H., Rizzi, M., Methner, H., and Debus, D. (1984): Xylose fermentation by yeasts 3. Comparation of Pachysolen tannophilus and Picia stipis. Biotechnol. Lettt., 6, 395-400.
Deysson, Guy., (1982), : Physiologie et Biologie des plantes vasculaires. TomeIII. Première partie. Nutrition et métabolisme. 5éme Edition. Societé d’Edition
d’Enseigement Superiéur. 155 – 179
Díaz T., Ricardo, (1999), : Fermentación láctica en sustrato sólido de las hojas del Agave tequilana Wever. Maestría en Ciencias de Procesos Biotecnológicos, Universidad de Guadalajara. CUEA.
Dorland, L. ; Kamerling, J.P. ; Vliegenthart, J.F.G. ; Satyanarayana, M.N. , (1997), : Oligosacarides isolated from Agave veracruz. Carbohydr. Res. 54, 275- 284.
Du Preez, J.C. ; Prior, B.A. & Monteiro, A.M.T. (1984), : The effect of aeration on xylose fermentation by Candida shehatae and Pachysolen tannophilus. Appl. Microbiol. Biotechnol., 19. 261-6.
Dubois, M.F., (1982), : Valorisation chimique du fructose : synthése d’acides levulimiques, arabonique et lactique, Thèse de Doctorat INPToulouse, France. Eguiarte Luis.E. (1995), : Hutchinson (Agavales) vs. Hubert y Dahlgren (Asparagales) : Análisis moleculares sobre la filogenia y evolución de la familia Agavaceae sensu Hutchinson dentro de las monocotiledóneas. Bol. Soc. Bot. México. 56 : 45-56.
Eguiarte , L.E. , Duval M.R, Learn, Jr G.H, Clegg M.T., (1994), : The systematic status of the Agavaceae and Nolinaceae and related Asparagales in the Monocotyledons: An analices based on the rbcLgene séquense. Boletín de la Sociedad Botánica de México 54 : 35-56.
El-Diwany. Ahméd I., Mohamed A. Farid and Hossam M. Shaker (1985). : A note on the bioconversion of pretreated wheat straw and sunflower stalks to ethanol by Pachysolen tannophilus. Agricultural Wastes, 13, 1, 23-29.
Encyclopaedia Universalis, (1992). Volume 13, pp 794-796. Paris, France.
Furlan, S.A. ; P. Bouilloud and H. F. de Castro (1994). : Influence of oxygen on ethanol and xylitol production by xylose fermenting yeasts. Process Biochemistry,
29, 8, 657-662
Garcia Mendoza Abisaí y Galván V. Raquel. (1995), : Riquezas de las familias Agavaceae y Nolinaceae en México. Bol. Soc. Bot. México. 56 : 7-24
Gentry, Howard S. (1982), Agaves of Continental North America. The University of Arizona Press, Tucson, 61, 382-586 pp.
Gentry H.S., (1978), : The Agaves of Baja California, San Francisco, Occasional Papers of the California Academy of Sciences 130.
Glaser, J.A. (1988), : The development of watermand soil treatment technology based on the utilization of a white-rot, wood rotting fungus. Hazardous Waste Engineering Research Laboratory, Office of Research and Development. U:S. Enviromental Protection Agency. [EPA/600/D-88/143].
Glaser, J.A; Sferra, P.R. (1987), : Biological detoxification research, potential uses for fungal species. Hazardous Waste Engineering Research Laboratory, Office of Research and Development. U:S. Enviromental Protection Agency. [EPA/600/D-87/301].
Glenn, J.K., Meredith, A.M., Mayfield, M.B., Kuwahara M. and Gold, H.M. (1993), : An extracellular H2O2 – requering enzime preparation involved in lignin
biodegradation by the white basidiomycete Phanerochaete crysosporium. Bioch. Biophys. Research Com. 114, 1077-1083.
González-Quintero, l., (1969), : Morfología Polínica: La flora del Valle del Mezquital, Hidalgo. Paleoecología 3. Instituto Nacional de Antropología e Historia, México, D.F., México.
Grand Dictionnaire Encyclopédique Larousse. (1984), Tome 7, Librairie Larousse. Paris, france. pp. 7255, 7569.
Guignard, J., ( 2000), Biochimie végétale. DUNOD. Paris, France. pp. 25-154. Guzmán-Dávalos, L., Martínez-Carranza, D.,(1987), : Morales P., Soto, C. El cultivo de hongos comestibles (Pleurotus) sobre bagazo del maguey de la industria tequilera. Rev. Mex. Mic. 3 : 47-49.
Hahn-Hägerdal, B., Geppsson, H., and Proir, B.A. (1994). : Biochemistry and physiology of xylose fermentation by yeasts. Enzime. Microbiol. Technol., 16, 933- 943.
Harmann, C., Millet J. B., Joseph., (1998), Biologie et Physiologie. Ed. NATHAN. Paris, France. pp. 89, 60, 67.
Heller R., Esnault R., lances C. (1998), Physiologie végétal. 1. Nutrition. Ed. DUNOD. Paris, France. pp. 10, 234.
Hollo, J., (1987) : Revue française des corps gras, 5, 25-266.
Hopkins W. G., (2003), Physiologie Végétale. De Boeck & Laicier. Espagne. pp.190-235.
Horton,G.M.J.; Pate, F.M.; Pitman, W.D. (1991),: The effects of stream- pressure treatment, pelleting and ammoniation on the feeding value of sugarcane bagasse for cattle. Canadian Journal of Animal Science, 71, 1, 79-86. Hourna, N., Garconov Ringar. (1994), : La pulpe sèche de betterave: l’énergie cellulose. Thèse de Doctorat CEDIP (Centre d’Étude et d’Information sur la Pulpe de betterave française) Dijon, France.
Hung Lee. (1992). : Reversible inactivation of -xylose utilization by -glucose in the pentose - fermenting yeast Pachysolen tannophilus. FEMS Microbiology Letters, 92, 1-4.
Hung LeeAudrey L. Atkin, Maria F. S. Barbosa, Delbert R. Dorscheid and Henry Schneider. (1988) : Effect of biotin limitation on the conversion of xylose to ethanol and xylitol by Pachysolen tannophilus.and Candida guilliermondii. Enzyme and Microbial Technology, 10, 2, 81-84.
IAWA. (1989), : Mineral inclusions. Bulletin n.s. Vol.10(3), 110-117.
Jeffries, T.W. and C. P. (1994). : Kurtzman. Strain selection, taxonomy, and genetics of xylose fermenting yeasts Enzyme and Microbial Technology, 16, 11, 922-932.
Jeffries, T.W.; Choi, S.; Kirk, K. (1981), : Nutritional regulation of lignin degradation by Phanerochaete chysosporium. Appl. Environ. Microbiol. 42, 290- 296.
Jeffries, Thomas W. (1984). : Mutants of Pachysolen tannophilus. Pachysolen tannophilus showing enhanced rates of growth and ethanol formation from - xylose. Enzyme and Microbial Technology, 6, 6, 254-258.
Keith Roebuck, Anders Brundin and Mike Johns. (1995). : Response surface optimization of temperature and pH for the growth of Pachysolen tannophilus Enzyme and Microbial Technology, 17, 1, 75-78.
Kirk, T.K.; Farrel, R.L. (1987), : Enzymatic “combustion”: The microbial degradation of lignin. Ann. Rev. Microbiol. 41, 465-505.
Köhler, A.; Jäger, A.; Willershausen, H.; Grak, H. (1988), : Extracellular ligninase of Phanerochaete chysosporium bursall has not role in the degradation of DDT. Appl. Microbiol Biotechnol. 29, 618-620.
Kruse, B., & k. Schügerl. (1996), : Investigation of Ethanol Formation by Pachysole tannophilusPachysolen tannophilus from Xylose and Glucose/Xylose Co-substrates. Process Biochemystry. 31, 389 – 407.
Kurita, T.; Mitsuhashi, S., (1982),: Utilization of Mexican Agave tequilana fibers. 1. For paper. Natl. Res. Inst. Polym. Text. Yokohama, Japan. Sen'i Kobunshi Zairyo Kenkyusho. Kenkyu Happyokai Shiryo, 128, 47-53.
Kurita, T.; Mitsuhashi, S.; Kanetsuna, H.; Iguchi, M.; Kato, M.; Shirota, T.; Herrera, T.E., (1986) Preparation of actived carbon from fibrous residue of tequila manufacturing process. (II). Res. Inst. Polym. Text., Tsukaba 305, Japan. Kenkyu Hokoku - Sen'i Kobunshi Zairyo Kenkyusho 150, 39-43 Kuwahara, M.; Gleen, J.K., Morgan, M.A.; Gold, M.H. (1984), : Separation and characterization of two extracellular H2O2-dependent oxidases from ligninolytic
Laberche J., (1999), : Biologie végétale. DUNOD. Paris, France.
López, M.G. ; Mancilla, N.A. ; Mendoza-Díaz, G. (2003). : Molecular structures of fructans from Agave tequilana Weber var. azul. J. Agric. Chem. 51, 7835-7840. Larpent J. P., : (1990), : Biotechnologie des levures, MASSON, 3-373.
Luna Zamora R., (1991), : La historia del tequila, de sus regiones y sus hombres, Consejo Nacional para la Cultura y las Artes, 303 pp.
M .N.M. Ibrahaim, G.R. Pearce, (1983), : Agricultural Wastes, 5, 135-136.
MacCaskey, T.A. ; Rice, M.D, et Smith, R .C. (1986) : Improved fermentation of wood hydrolizate to ethanol by removal of compounds inhibitory to Pachysolen tannophilus. Biomass Energy Development. Smith, W.H., pp. 573-85. Plenum, Nueva York, USA.
Magro, C. (1995): Valorisation des pailles de blé par fractionnement thermo mecano chimique en un réacteur bi vis. Thèse de Doctorat INPToulouse.
Maier, M.M., Pepper, I.L., Gerba,Ch. P. (2000). : Enviromental Microbiology. Academic Press.
Maleszka, R., P. Y. Wang and Henry Schneider. (1982). : Ethanol production from D -galactose and glycerol by Pachysolen tannophilus. Enzyme and Microbial Technology, 4, 5, 349-352.
Méndez-Robles, M.D. (1999), : Acumulación de fructanas en agave tequilana Weber var. azul cultivado en campo. Teis de Maestría en Ciencias en Alimentos, INP, ENCB, 98p. México.
Miller, G., L., (1959), : Anal. Chem. 31, 3, 426.
Mitsuhashi, S.; Kurita, T. (1982),: Utilization of Mexican Agave tequilana fibers. 2. For activated carbon.Natl. Res. Inst. Polym. Text. Yokohama, Japan. Sen'i Kobunshi Zairyo Kenkyusho Kenkyu Happyokai Shiryo, 128, 54-61.
Mitsuhashi, S.;Kurita, T.; Herrera, T.E.,(1982) : Preparation of actived carbons from the fibrous residues of Tequila brewery process. Res. Inst. Polym. Text. Yatabe, Japan. Kenkyu Hokoku - Sen'i Kobunshi Zairyo Kenkyusho 133, 63-7. Monties B., (1982), : Les polyméres vegetaux. Ed. Gautuier-Villars.
Moya, A.J. (1997). : Hidrolisis y fermentation de residuo de poda de olivo. Tesis Doctoral. Université de Jaen. España.
Muría, J. M. ,(1990),:El Tequila, boceto histórico de una industria, Cuadernos de difusión Científica, Universidad de Guadalajara, núm. 18, 85 p.
Nava, A. (1978),: Aprovechamiento del bagazo desperdicio de la industria Tequilera en la fabricación de tableros aglomerados. Tesis de licenciatura de Ingeniería Química, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad de Guadalajara, Guadalajara Jalisco, México.
Neirinck, l ; Malseka, R. et Shneider, H. (1984) : The requirement of oxygen for incorporation of carbon from D-xylose and D-glucose by Pachysolen tannophilus . Arch.Biochem. Biophys, 228, 13-21.
Nobel, Park S., y Valenzuela, Z. Ana G., (1987) : Environmental responces and productivity of the CAM plant, Agave tequilana, W, Agricultural forest meteorology, Elsevier Sciences Publishiers B.V. Amsterdam, 39, 319-334.
Nobel P. S.; Pimienta BarriosE.; Zañido Hernández, J.; Ramírez hernández B.; (2002),: Historical aspects and net CO2 uptake for cultivated Crassulacean Acid
Metabolism plants in México, Ann. Appl. Biol. 140, 1-10 .
Ogundipe A. and J. Y. Lu. (1989). : Ethanol production from dilute acid hydrolyzate of sawdust treated with hydrogen peroxide. Biomass, 20, 3-4, 291-299. Ojeda Díaz M.A.(2002),: Las diosas en los códices Borgia: Arquetipos de las mujeres del postclásico. http:/www.arts-history.mx/diosas/hoe.html.
Ojeda Revah L. Y Beatriz Ludlow W.,(1995) , : Palonilogía de Agavaceae, una contribución biosistemática.,Bol. Soc. Bot. México, 56: 25-43.
Ozenda P., (2000), Les végétaux. Organisation et diversité biologique. Dunod. Paris, France. Pag. 315-352.
Palacios, H. (1996), : Comunicación personal. Instituto de Madera, Celulosa y Papel. Guadalajara, Jalisco. México.
Pérez, Lázaro, (1987). Estudio sobre el Agave llamado mexcal. Boletín de la Sociedad Agrícola Mexicana. México, 11,132-136.
Quiabi A. (1994) : Valorisation de la rafle de mäis: hydrolyse acide et extraction alkaline des hemicelluloses. Thèse de Doctorat de l’Institut National Polytechnique de Toulouse.
Rivera, J.J., (1990), : El uso del maguey (Agave sp.) en la conservación del suelo. Tesis Maestría en Ciencias. Colegio de Posgraduados. Chapingo, México.
Rowell, R.M., Young, R.A., Rowel, J.K., (1997), : Papier and composite from Agro Based Ressources, CR Lewis Publisers. pag. 85.
Ruiz, E., (1998), : Aprovechamiento de tallos de girasol. Fermentación de hydrolizados con Pachysolen tannophilus. Memoria de iniciación a la investigación. Universidad de Jaen, Espain.
Sanchez P. (1990). : Thése: "Procede de Production de Sirop de Xilose par Hydrolyse de Sorgho", IPNT, Toulouse, France.
Sánchez, S , Bravo V, Moya, A.J, Castro, E. and Camacho F. (2004) : Influence of temperature on the fermentation of -xylose by Pachysolen tannophilus to produce ethanol and xylitol.Process Biochemistry, 39, 6, 673-679.
Sánchez-Marroqui, A. ; Hope, P.H. (1953), : Agave juice : fermentation and chemical composition studies of some especies. J. Agric. Food Chem. 1, 246-249. Sandoval G., L. (1983), : Tequila Historia y Tradición. Ed. Francisco J. Sauza, 197 154 pp.
Satyanarayana, M.N. (1976), : Biosynthesis of oligosacarides and fructans in Agave veracruz : Part. III – Biozynthesis of fructanes. Indian J. Biochm. Biophys. 13, 408-412.
Schneider, H. ; Wang, P.Y. et Maleszca R. (1981) : Conversion of d-xylose into ethanol by the yeast Pachysolen tannophilus. Biotechnol. Lett. 3, 89-92
Scriban, R. (1999). : Biotechnologie. Pag. 45-310. Editions TEC & DOC. Paris. France. pag. 45-310.
SECOFI (Secretaría de Comercio y Fomento Industrial), (1997), Norma Oficial Mexicana- 006-SFI-1994. México. D.F., México.
Slinger, P.J., Bolen, P.L., and Kurtzman, C.P. (1997) : Pachysolen tannophilus : propiertes and process consideration for éthanol production from D-xylose. Enzime Microb. Technol., 9, 5-15 .
Slininger, P. J., P. L. Bolen and C. P. Kurtzman. (1987). :: Pachysolen tannophilus : Properties and process considerations for ethanol production from - xylose.Enzyme and Microbial Technology, 9, 1, 5-15.
Slininger, P.J. ; Bothast, R.J. ; Van Cauwenberge, J.E. et Kurtzman, C.P. (1982). Conversion de D-xylose to ethanol by the yeast Pachysolen tannophilus. Biotechnol. Bioeng. 24, 371-384
Soto Velasco, C.; Guzmán Dávalos L.; Rodríguez O. (1989),: Cultivo del hongo comestible pleurotus ostreatus, sobre bagazo de maguey fermentado y mezclado con paja de trigo. Rev. Mex. Mic. 5, 97-101.
Tien, M., Kirk, T.K. (1983), : Lignin-degrading enzime from the hymenomycete Phanerochaete chrysosporium, Burds. Science. 221 : 660-663.
Thorn, G. (1997). Modern Soil Microbiology. Marcel Dekker. New York.
Torbjörn Lindén and Bärbel Hahn-Hägerdal. (1989), : Fermentation of lignocellulose hydrolysates with yeasts and xylose isomerase. Enzyme and Microbial Technology, 11, 9, 583-589.
Tour, F., Aust, S.D.; Bumpus, J.A. (1988), : Enzime of white-rot fungi involved in lignin degradation and ecological determinants for wood decay. Journal of Biotechnology. 41, 1-17.
Valenzuela Z. A.,G., (1985),: The tequila industry in Jalisco, México. Desert plants, núm. 7, 2, 65-70.
Valenzuela Zapata, A.G (2003), : El agave tequilero, cultivo e industria de México. Ediciones Mundi-Prensa. México, D.F, México.
Wang, N. ; Nobel P.(1998). : Pholem transport of fructans in the crassulacean acid metabolisme species Agave deserti. Plant Physiol. 116, 709-714.
Watson, N.E., Prior, B.A, Latenga, P.M. (1984). : Factors in acid treated bagasse inhibiting ethanol production from D-Xylose by Pachysolen tannophilus. Enzime Microbial Technology. 6, 10, 451-456.
Yokoé Y., Talkabe K, Nisikava S. et Morita Q. (1993). Effect of gaseous ammonia on chemical and structural features of cell walls in spring barley straw, Anun. Feed Sci. Techol. 40 : 207-224.
Whistler, R.L. (1963),: Methods in Carbohydrate Chemistry, Vol. I: Analysis and preparation of sugars, 157-158. Academic Press. New York, U.S.A.
Yokoé, Y., Talkabe, K., Nisikava, S. et Morita Q. (1993), : Effect of gaseous ammonia on chemical and structural features of cell walls in spring barley straw, Anun. Feed Sci. Techol., 40, 202-224.
Yukoo I. (1992), :Needle Crystal of Calcium Oxalate Monohydrate Found in Plant. J. Electron Microsc. 41 : 51-56.
Zocbelein, H., Zobelein, B., Schierbaum, E., Hirssinger, F., Cruh, R., Böllert, V., (1997) : Fructanes Topinambur, Dictionary of Renewable Resources. 4 Zoehlein Editeurs, VCH Weinheim, 111-2, et 302-3.
Zuñiga-Partida V; Grellmann K. A., (1982), : Estudio sobre cuatro especies de agave para la producción de tableros agllomerados. Promotora del Maguey y del Nopal. México. 20 pp.
CHAPITRE I : L’AGAVE, UNE PLANTE TYPIQUEMENT MEXICAINE I-4 I.1. Description et production de l’agave ... I-5 I.1.1. Taxonomie de l’agave ... I-6
I.1.1.1 La nomenclature Otomí ... I-7 I.1.1.2 La classification botanique traditionnelle... I-8 I.1.1.3 Antécédents de la taxonomie de l’agave ... I-10 I.1.1.4 Toxonomie actuelle... I-12
I.1.2. Répartition géographique de l’agave ... I-13 I.1.3. Caractéristiques morphologiques et physiologiques
de l’agave... I-15
I.1.3.1 Description morphologique générale de l’agave.... I-15 I.1.3.2. Physiologie générale de l’agave ... I-20 I.1.3.3. L’inuline de l’agave ... I-21
I.1.4 Culture, maturité et récolte de l’agave ... I-26
I.2 La transformation des agaves... I-29 I.2.1 Le pulque... I-29 I.2.2 Le mezcal... I-31 I.2.3 La tequila ... I-33 I.2.4 La production industrielle de la tequila ... I-37
I.2.4.1 Sélection et analyses de la matière première
(agave tequilana W. cv azul)... I-37 I.2.4.2 Cuisson, broyage et découpage des têtes
d’agave... I-37 I.2.4.3. Extraction du miel et séparation de la bagasse
d’agave... I-39 I.2.4.4. Fermentation des jus sucrés... I-41 I.2.4.5. Distillation et rectification ... I-42