Caract´erisation fonctionnelle de RhSUC2 en syst`eme h´et´erologue de

Les r´esultats d’expression g´enique montr´es dans la Figure 19 sugg`erent une implication de

RhSUC2dans le processus de d´ebourrement des bourgeons axillaires de rosier sous le contrˆole de la lumi`ere. Afin d’en savoir d’avantage sur son rˆole potentiel dans la physiologie de la plante, nous avons ´etudi´e l’activit´e de co-transport de saccharose/H<sup>+</sup> de RhSUC2 en syst`eme h´et´erologue de levure. Pour ce faire, nous avons exprim´e sa s´equence codante compl`ete dans la souche de levure SUSY7. La souche de levure SUSY7 est mut´ee pour son invertase pari´etale et exprime le g`ene de la saccharose synthase (Riesmeier et al., 1992). Elle est donc incapable de pousser sur milieu en pr´esence de saccharose comme seule source de carbone. Seule l’expsion h´et´erologue d’un transporteur de saccharose fonctionnel dans sa membrane plasmique res-taure cette capacit´e. Les r´esultats de la caract´erisation fonctionnelle de RhSUC2 sont pr´esent´es en Figure 21.

Dans un premier temps, nous avons r´ealis´e un test en goutte afin de suivre le d´eveloppement des levures transform´ees avec le plasmide vide ou contenantRhSUC2(Figure 21 a). Nous avons ´etudi´e le d´eveloppement des souches sur un milieu contenant du glucose (t´emoin positif) ou du saccharose comme seule source de carbone. En pr´esence de glucose, les souches SUSY7 transform´ees avec le vecteur vide ou contenantRhSUC2se d´eveloppent proportionnellement `a la quantit´e de cellules d´epos´ees initialement. Celle transform´ee avec le vecteur vide croˆıt plus

Traitement Inhibiteurs Témoin 100 25 ± 2,5 * 9 ± 2,0 * Sucres compétiteurs Témoin 100 21 ± 6,6 * 140 ± 7,2 * 157 ± 4,4 * 103 ± 3,9 43 ± 2,2 *

Tableau 5. Effet de sucres compétiteurs et d'inhibiteurs sur l'absorption de saccharose par RhSUC2 exprimé en système hétérologue de levure (souche SUSY7). L'absorption est réalisée en présence de 2,5 mM de saccharose radiomarqué à pH 4.5. Les astérisques représentent une différence significative entre le témoin et le traité (Test de Student, p<0,001) Pourcentage d'absorption de saccharose CCCP (50 µM) PCMBS (100 µM) Saccharose (25 mM) Glucose (25 mM) Fructose (25 mM) Raffinose (25 mM) Maltose (25 mM)

rapidement en pr´esence de glucose. Ce r´esultat indique que la souche transform´ee avecRhSUC2

se r´eg´en`ere plus lentement que l’autre. Le d´eveloppement des souches est fortement r´eduit en pr´esence de saccharose, surtout celui de la souche SUSY7-pDR296, qui ne pousse que tr`es dif-ficilement lors d’un ensemencement `a partir de 10⁴ cellules. Pour une dilution plus importante de la souche aucun d´eveloppement n’est observable. En revanche, la souche exprimantRhSUC2

pr´esente un meilleur d´eveloppement, bien que sa capacit´e de r´eg´en´eration soit plus faible. Elle arrive notamment `a pousser pour un d´epˆot initial de 10³cellules.

Les r´esultats du test en goutte indiquent que les souches transform´ees avecRhSUC2sont ca-pables de se d´evelopper sur milieu en pr´esence de saccharose comme seule source de carbone et donc de transporter ce substrat. Les r´esultats indiquent que RhSUC2 est un transporteur de saccharose fonctionnel. Nous avons alors proc´ed´e `a l’analyse de ses caract´eristiques cin´etiques (Figure 21 b `a e).

La Figure 21 b pr´esente les cin´etiques d’absorption de saccharose par les souches pDR296 vide et pDR296 - RhSUC2 au cours du temps. L’incubation est r´ealis´ee en pr´esence de 0,5 mM de saccharose radiomarqu´e `a pH 4.5 sur une dur´ee allant de 1 `a 10 min. La souche transform´ee avec le pDR296 vide n’absorbe presque pas de saccharose (un maximum de 30,66_±3,5 nmol de saccharose.mg^-1de prot´eine `a 10 min) sur la dur´ee totale de l’exp´erience. En revanche, la souche transform´ee avec RhSUC2 absorbe fortement le saccharose (de 91,17<sub>±</sub>10,77 `a 966,41_±69,34 nmol de saccharose.mg-1 de prot´eine entre 1 et 10 min d’incubation). L’absorption est propor-tionnelle `a la dur´ee d’incubation et lin´eaire au cours du temps comme l’indique la droite de corr´elation entre les points. Dans les conditions test´ees, aucun ph´enom`ene de saturation n’est observ´e, mˆeme apr`es 10 min d’incubation en pr´esence du substrat.

Nous avons ensuite d´etermin´e le pH auquel l’absorption de saccharose par RhSUC2 est op-timale (Figure 21 c). L’incubation est effectu´ee en pr´esence de 2,5 mM de saccharose dans du tampon MES, selon une gamme de pH allant de 4 `a 7. Les valeurs d’absorption obtenues pour le pDR296 vide sont retranch´ees `a celles du pDR296-RhSUC2 afin de ne consid´erer que la part active de l’absorption. Elle est importante entre pH 4 et 5 (14,9_±1,81 `a 18,63<sub>±</sub>0,36 nmol de saccharose.mg<sup>-1</sup> de prot´eine.min<sup>-1</sup>) avec un optimum `a pH 4.5. Puis elle chute de fac¸on dras-tique `a pH 6 (3,07<sub>±</sub>1,85 nmol de saccharose.mg-1de prot´eine.min-1) et devient quasiment nulle `a pH 7 (0,25_±1,06 nmol de saccharose.mg-1 de prot´eine.min-1). Ces r´esultats sont consistants avec un co-transport de saccharose/H⁺.

Les levures ont ´et´e incub´ees en pr´esence de diff´erentes concentrations de saccharose radio-marqu´e (0,1 `a 5 mM) `a pH 4.5 pour d´eterminer la concentration optimale et la vitesse maximale d’absorption du saccharose par RhSUC2 (Figure 21 d). Comme d´ecrit pr´ec´edemment, les va-leurs d’absorption repr´esent´ees dans la figure correspondent `a l’absorption active (diff´erence entre le pDR296 vide et le pDR296-RhSUC2). Le K<sub>m</sub> etV<sub>max</sub> de RhSUC2 ont ´et´e d´etermin´es par transformation des donn´ees obtenues selon une repr´esentation de Lineweaver-Burk (Figure 21 e). Son activit´e de transport est proportionnellement corr´el´ee `a la quantit´e de saccharose pr´esent dans le milieu, et ce jusqu’`a ce que la concentration atteigne 2,5 mM (Figure 21 d). L’ab-sorption est alors de 38,76<sub>±</sub>2,09 nmol de saccharose.mg-1 de prot´eine.min-1. Pour une concen-tration en saccharose de 5 mM on observe une diminution de l’absorption (24,48<sub>±</sub>4,77 nmol de saccharose.mg<sup>-1</sup> de prot´eine.min<sup>-1</sup>). Dans cette exp´erience, la quantit´e de saccharose radioactif est fixe alors que celle du saccharose non radioactif est variable. La diminution d’absorption ob-serv´ee `a 5 mM pourrait donc ˆetre due `a un effet comp´etiteur exerc´e par le saccharose non marqu´e en exc`es dans le milieu. La transformation des donn´ees selon la repr´esentation de Lineweaver-Burk a donc ´et´e r´ealis´ee uniquement `a partir des valeurs obtenues entre 0,1 et 2,5 mM (Figure

21 e). Dans la repr´esentation de Lineweaver-Burk o`u 1/vitesse d’absorption=f(1/concentration en substrat), le point d’intersection de la droite obtenue avec l’axe des abscisses correspond `a (-1/K_m) et celui avec l’axe des ordonn´ees correspond `a (1/V_max). L’´equation de la droite de corr´elation obtenue est y = 0,035x + 0,0117 et son coefficient de corr´elation est de 0,9992. Nous avons ainsi pu d´eterminer uneK_m=3 mM et uneV_max =21,41 nmol de saccharose.mg-1

de prot´eine.min-1.

Les transporteurs de saccharose pr´ec´edemment caract´eris´es sont des co-transporteurs saccha-rose/H⁺. Leur activit´e est fortement inhib´ee par des protonophores (CCCP et DNP), des inhibi-teurs de production d’ATP (antimycine et arsenate) et par des inhibiinhibi-teurs des groupements thiol (PCMBS et NEM) (Lemoine, 2000; Sauer, 2007). La sp´ecificit´e des transporteurs de saccharose pour leur substrat est assez forte bien qu’ils puissent ´egalement transporter d’autresα- ouβ- glu-cosides comme le maltose (Sauer, 2007). Afin de d´eterminer les caract´eristiques de RhSUC2, nous avons test´e l’effet du CCCP et du PCMBS sur son activit´e. Nous avons ´egalement test´e l’effet de diff´erents sucres comp´etiteurs (saccharose, glucose, fructose, raffinose et maltose) afin d’´etudier sa sp´ecificit´e de transport vis `a vis du saccharose. Les r´esultats sont pr´esent´es dans le Tableau 5.

En pr´esence de CCCP (50 µM), l’absorption de saccharose par RhSUC2 est fortement r´eduite (d’environ 75%) par rapport `a celle du t´emoin. Elle est ´egalement fortement r´eduite (91%) par le PCMBS (100µM).

Dans les exp´eriences de comp´etition, le saccharose et le maltose non radioactifs fournis en exc`es ont un effet inhibiteur sur l’activit´e de transport de saccharose de RhSUC2 (79 et 57 % d’inhibition respectivement). L’activit´e de RhSUC2 est en revanche stimul´ee par un apport en exc`es de glucose ou de fructose non radioactifs (140 et 157 % d’activit´e respectivement). L’ajout de raffinose non radioactif en exc`es n’a quant `a lui aucun effet significatif sur l’activit´e de RhSUC2.

4.2.6 Conclusions

Une recherche dans les bases de donn´ees nous a permis d’identifier une s´equence ADNc partielle codant potentiellement pour un transporteur de saccharose chez le rosier : RhSUC3. Nous avons isol´e 3 nouvelles s´equences de transporteurs de saccharose : 2 partielles (RhSUC1

etRhSUC4) et une compl`ete (RhSUC2).

Parmi les 4 transporteurs de saccharose potentiels disponibles, les ARNm de trois d’entre eux sont pr´esents dans le bourgeon : RhSUC2, RhSUC3et RhSUC4. Et l’un d’entre eux, Rh-SUC2, est plus fortement exprim´e dans les bourgeons en cours de d´ebourrement que dans les bourgeons dormants.

L’analyse du taux de transcrit de ces 3 transporteurs dans les bourgeons expos´es `a la lumi`ere ou `a l’obscurit´e, entre 24 et 96 h apr`es la d´ecapitation, r´ev`ele que seul RhSUC2 pr´esente un profil d’expression corr´el´e au d´ebourrement des bourgeons. En effet son expression est induite `a la lumi`ere alors qu’elle reste stable `a l’obscurit´e entre 48 et 96 h. Le traitement n’a aucun effet sur l’expression deRhSUC3etRhSUC4.

L’apport exog`ene de 10µM d’auxine (concentration inhibitrice du d´ebourrement) inhibe to-talement l’accumulation des ARNm deRhSUC2dans le bourgeon au bout de 72 h d’exposition `a la lumi`ere.

La caract´erisation fonctionnelle de RhSUC2 en syst`eme h´et´erologue de levure r´ev`ele qu’il s’agit d’un co-transporteur de saccharose/H⁺ `a forte affinit´e (K_m = 3 mM). Une analyse de comp´etition indique que le maltose inhibe l’activit´e d’absorption du saccharose de RhSUC2, alors que le glucose et le fructose la stimulent.