A descoloração de efluente sintético constituído por vermelho congo através da biomassa inativada de R. arrhizus após 24h de contato estão listados na tabela 4 e ilustrados na Figura 5, das quais se destaca a condição 4 que apresentou uma eficiência de descoloração de 80,85% em relação a remoção de cor inicial medida em 2,612nm.
Tabela 4. Descoloração de vermelho congo 0,02% a 28ºC por biomassa inativada de
R. arrhizus após 24h de contato.
Utilizando biomassa fúngica de Acremonium, Silva et al [22] realizaram ensaios para adsorção dos corantes índigo e azul brilhante de remazol a uma temperatura de 29ºC e 150rpm durante 7 dias de incubação, dos quais obtiveram uma descoloração de 74% e 22%, respectivamente.
Seguindo essa mesma perspectiva Henriques et al [23] realizaram ensaios com biomassa microbiana do Rhizopus arrhizus no processo de descoloração de amarelo de remazol (0,05mM) a uma temperatura de 28ºC e 150rpm. Os resultados obtidos indicaram uma eficiência de 80% na remoção do corante em estudo.
Pereira et al. [24], testando o fungo Lentinula edoddes verificaram que esse degradou o corante Remazol Brilliant Blue (RBBR) com eficiência de 70%, em 15 dias. No entanto, Almeida et al [25] descreveram na literatura que Penicillium ochrochloron
Ensaios Biomassa (g/L) Agitação (rpm) Absorbância (nm) Eficiência na descoloração (%) 1 8 75 0,556 77,20 2 12 75 0,556 78,71 3 8 150 0,668 73,66 4 12 150 0,500 80,85 5 4 0 2,428 7,74 6 4 0 2,360 9,64 7 4 0 2,470 8,70 8 4 0 2,423 7,98
51
MTCC 517 degradou 93% do corante trifenilmetano, em condição estática, com temperatura a 25°C e pH 6,5, num período de 2,5h de cultivo.
Estudos realizados por Silva et al [26] utilizando Aspergillus aculeatus para descoloração do corante têxtil preto intenso N®, demonstraram resultados satisfatórios no processo de degradação do corante indicando 90% de eficiência.
Araújo et al [27] avaliando a capacidade de descoloração do corante têxtil índigo carmine por Aspergillus terreus e Aspergilllus sclerotiorum, incubou amostras em meio líquido sob condição estática, no escuro, a 28ºC durante 10 dias. Aspergillus terreus degradou 100% do corante têxtil em 5 dias de experimento, em 10 dias ambas espécies degradaram 100% do corante.
Recentes estudos realizados por Lopes et al [28] sobre a descoloração do corante FD&C azul nº2 indigotina pelo processo combinado de filtração lenta com o fungo Trametes
versicolor, avaliados em um comprimento de onda de 610nm, apresentaram um
percentual de remoção do corante de 44,74% após 24 horas. Resultados esses inferiores aos estudos apresentados.
4.CONCLUSÕES
R. arrhizus é capaz de produzir através de processos fermentativos biomassa em
condição otimizada, com auxílio da ferramenta computacional metodologia de superfície de respostas, nos substratos glicerina associada a milhocina, possibilitando a formulação de um meio alternativo. Some-se a isto a capacidade adsortiva da biomassa inativada de R. arrhizus proveniente de processo fermentativo, de modo pela qual pode ser percebida através dos testes realizados na descoloração de efluente têxtil. Sob esta visão a biomassa inativada de R. arrhizus possui potencial biotecnológico promissor para aplicação na descoloração de efluentes de corantes bem como é possível otimizar o processo produtivo da fermentação de R. arrhizus através da metodologia de superfície de respostas .
Agradecimentos: Os autores agradecem a CAPES,CNPq, FACEPE, e a Universidade Católica de Pernambuco.
52
5. Referências
1. Arcidiacono, S.; Kaplan, D.L. Molecular weight distribution of chitosan isolated from Mucor rouxii under different culture and processing conditions. Biotechnol
Bioeng. 1992,39, 281-286.
2. Chatterjje, S.; Guha, A.K.; Um estudo sobre alterações bioquímicas durante o cultivo de Rhizopus oryzae em meio de soro desproteinizado em relação à produção de quitosana. Apllied microbiology. 2014, 59, 155-160.
3. Santos, E.R..; Silva, M.C.F;. Souza, P.M.; Silva, A.C.; Paiva, S.C.; Albuquerque. C.D.C;. Nascimento, A.E.; Okada, K.; Campos-Takaki, G.M. Enhancement of
Cunninghamella elegans UCP/WFCC 0542 Biomass and Chitosan with Amino
Acid Supply. Molecules. 2013, 18, 10095-10107.
4. Melo, V.F.B.; Gama, J.; Ferreira, J.M.; Barauna. O.S.; Jucá, J.F.T.; Motta Sobrinho, M.A. Estudos e caracterização de propriedades da argila esmectita na remoção de corantes têxtis. Revista material. 2013, 1467-1482.
5. Tharanathan, R. N.; Kittur, F. S. Chitin – The undisputed biomolecule of great potential. Critical review in food science nutrition. 2003, 2, 61-87.
6. Peixoto, F.; Marinho, G.; Rodrigues. K. Corantes Têxteis: uma revisão. Holos. 2013.
7. Srinivasan, A.; Viraraghavan, T.; J. Environ. Manage. 2010, 91, 1915.
8. Chatterjee, S.; Chatterjee, S.; Chatterjee, B. P.; Guha, A. K.; Colloids Surf.,
A 2007, 299, 146.
9. Debrassi, A.; Largura, M. C. T.; Rodrigues, C. A. Adsorção do corante vermelho congo por derivados da o-carboximetilquitosana hidrofobicamente modificados. Quím. Nov. 2011 , 34, 5, 764-770.
10 Xue, X.; Li, L.; He, J.; Carbohydr. Polym. 2009, 75, 203.
11 Roberts, G.A.F. Chitin chemistry. London: MacMillan Press. 1992.
12 Green berg, Arnold E. Standard methods for examination of water and waterwater, 20ª ed. Washington: American public health association. 1998.
13 Stamford, T.C.M.; Stamford, T.L.; Stamford, N.P.; Neto, B.B.; Campos-Takaki, G.M. Growth of Cunningamella elegans UCP 542 and production of chitin and chitosan using yam bean médium. J. Biotechnol. 2007, 10, 65.
14. Lins, C.I.M.; Cardoso A.; Silva, M.C.F.; Batista, A.C L.; Jara, A.M. A.T.; Berger, L.R.R.; Santos, E.R.; Marques da Silva, A.; Campos-Takaki, G.M. evaluation of
53
chitin and chitosan by different extraction methods from mucoralean fungi biomass. Asian Chitin Journal. 2010, 2.
15. Berger, L. R. R.; Cardoso, A.; Stamford, T. C. M.; Cavalcante, H. M. M.; Macedo, R.O.; Campos-Takaki,G. M. Asian Chitin Journal. 2011, 2.
16. Cardoso, A.; Lins, C.IM.; Santos, E.R.; Silva, M.C.F; Campos-Takaki, G.M. Molecules. 2012, 17 .
17. Andrade, V. S.; Neto, B.B.; Souza, W.; Campos-Takaki, G.M. A . Can. J. Microbiol. 2000, 46.
18. Dias, K. B.; Scheidt, G. N. Produção e caracterização da quitosana extraída da
Cunninghamella elegans. 9º Seminário de iniciação científica. Novembro. 2013.
19. Omogbai, B.A.; Ikenebomeh, M. Solid-state fermentative production and bioactivity of fungal chitosan. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences. 2013, 3, 172-175.
20. Berger, L. R.R.; Stamford, T.C. M.; Stamford-Arnauld, T.M.; Franco, L.O.; Nascimento, A. E. ; Cavalcante, H. M. M.; Macedo, R. O.; Campos-Takaki, G.M. Effect of Corn Steep Liquor (CSL) and Cassava Wastewater (CW) on Chitin and Chitosan Production by Cunninghamella elegans and Their Physicochemical Characteristics and Cytotoxicity. Molecules. 2014, 19, 2771-2792.
21. Silva, M.C.F; Berger, L.R.R.; Stamford, T.C.M.; Antunes, A.A.; Souza, P.M.; Campos-Takaki, G.M. Estudo comparativo do crescimento de Rhizopus arrhizus e
Absidia sp. e produção de quitosana em meio de baixo custo. 26º Congresso
Brasileiro de Micologia. 2011.
22. Silva, J.H.; Monteiro, R.T.R. Degradação de xenobióticos por fungos filamentosos isolados de areia fenólica. Revista brasileira Ciência do Solo. 2000, 24, 669-674. 23. Henriques, M.L.O.M.F.; Medeiros, M.C.A; Luna, M.A.C.; Vasconcelos, E.C.;
Júnior, J.C.V.; Silva, C.A.A. XXI Congresso latino americano de microbiologia. 2012.
24. Pereira, A. R. B.; Bueno, F. L.; Santos, S. C.; Lima, C. A. A.; Dias, A. L. T. Biodegradation of dyes and textile effuelts by fungi. Holos Environment. 2010, 2. 25. Almeida, D.G.; Silva, M.G.C.; Miranda, R.C.M.; Maciel, C.C.S.; Gusmão, N.B.
Descoloração do corante Índigo Carmim e produção de Lacase por fungos filamentosos . Scientia plena. 2012, 5.
26. Silva, K. C.; Silva, T. M.;Silva, J.R.,Cerri; M. O., SILVA; S. L.; Carvalho, B. M. A. Otimização das variáveis, pH, força iônica e meio nutricional na descoloração de
54
corante industrial têxtil pelo fungo Aspergillus aculeatus. BBR – Biochemistry and Biotechnology Reports. Edição especial. 2013, 1-4.
27. Araújo, G.R.;Bezerra, J.D.P.; Freire, K.T.L.; Paiva, L.M.; Souza Mota, C.M.; Maloso, E.; Silva, D.C.V. Descoloração do corante têxtil índigo carmine por espécies de Aspergillus. Biodiversidade e água: desafios e cooperação. 2013, 2. 28. Lopes, M.M.G.; Sales, P.T.F.; Campos, L.C.; Schimidt, F.; Santiago, M.F. Estudo
da descoloração do corante FD&C azul no 2 Indigotina pelo tratamento combinado do fungo Trametes versicolor e processo de filtração lenta. Engenharia Sanitária e Ambiental. 2014, 19, 2.
55
56