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O método foi aplicado para 10 amostras de espinafre cultivadas no estado do Rio Grande do Sul (Brasil) e adquiridas em mercados locais de Santa Maria.

De acordo com a Tabela 10, todas as amostras analisadas apresentaram resíduos de um ou mais analitos na faixa de concentração entre 10,2 a 39,0 μg kg-1. Os compostos teflutrina, clorotalonil, procimidona, iprodiona e boscalida foram encontrados nas amostras em níveis acima do LOQ. Dentre estes, verificou-se que o composto teflutrina foi encontrado em todas as amostras.

Os compostos teflutrina, iprodiona e boscalida estavam presentes nas amostras em concentrações abaixo dos LMRs estabelecidos, de 20 μg kg-1 para iprodiona, 50 μg kg-1 para teflutrina e 50.000 μg kg-1 para boscalida. No entanto, o inseticida teflutrina estava presente em 90% das amostras analisadas. Por outro lado, as concentrações encontradas de clorotalonil e procimidona em algumas amostras analisadas estavam acima do LMR estabelecido de 10 μg kg-1.

Alguns compostos abordados neste estudo tiveram seu uso banido ou estão sob observação devido apresentarem riscos potencialmente graves e/ou cumulativos para a saúde humana e/ou o meio ambiente, sendo em sua maioria compostos organoclorados ou organofluorados (UTZ, 2015). Estes compostos são classificados como persistentes podendo estar presentes no ambiente de produção dos alimentos. Entre estes, os compostos HCH alfa, HCH beta, HCH gama, quintozeno e teflutrina já foram banidos. Por outro lado, os compostos clorotalonil e procimidona estão em avaliação e possuem uso controlado. Mesmo assim, estes compostos foram encontrados nas amostras avaliadas neste estudo.

No Brasil, não existem LMRs estabelecidos pela ANVISA para os compostos avaliados neste trabalho para a cultura de espinafre. Entretanto, a ocorrência de diversos compostos em praticamente todas as amostras avaliadas sugere a necessidade de regulamentação. Não menos importante é a necessidade do monitoramento dos produtos comercializados. Além disso, se faz necessária uma avaliação adicional empregando metodologia analítica complementar para fins de identificação das amostras positivas.

Tabela 10 - Resultados das análises das amostras de espinafre empregando o método desenvolvido e validado neste trabalho. Analitos LOD (µg kg-1) LOQ (µg kg-1) LMRa (µg kg-1)

Concentração nas amostras (µg kg-1)

A1 A2 A3 A4 A5 A6 A7 A8 A9 A10

Teflutrina 3 10 50 13,9 39,0 13,3 <LOQ 36,4 21,7 20,5 15,4 20,2 11,2 Clorotalonil 3 10 10 11,6 36,7 17,8 <LOQ 33,4 n.d. n.d. n.d. n.d. <LOQ

Procimidona 3 10 10 14,3 20,3 13,8 10,5 28,1 n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Iprodiona 3 10 20 10,0 <LOQ 12,7 n.d. n.d. <LOQ n.d. n.d. <LOQ n.d. Boscalida 3 10 50.000 n.d. <LOQ 15,2 <LOQ <LOQ <LOQ <LOQ <LOQ <LOQ <LOQ

aLimites máximos de resíduos definidos para a cultura de espinafre pela União Européia.

5 CONCLUSÕES

O presente trabalho demonstrou o uso de diferentes sorventes na etapa de limpeza do método QuEChERS para a remoção de pigmentos, especialmente a clorofila, presentes em extratos de amostras de espinafre. O sorvente aminopropil e o sorvente à base sílica e C18 revestidos com dióxido de zircônio, conhecido como Z- Sep+, juntamente com o sal sulfato de sódio anidro, apresentaram excelente eficiência na limpeza dos extratos, com redução satisfatória dos teores de pigmentos sem perdas significativas de analitos, tendo em vista que a obtenção de extratos limpos é fundamental para o alcance de resultados confiáveis e para a preservação do sistema cromatográfico.

Para isto, foram realizados diversos testes com diferentes proporções e combinações de sorventes empregando metodologias distintas para o preparo das amostras e avaliação dos extratos através de técnicas auxiliares, como testes gravimétricos, cromatografia em camada delgada e análise qualitativa por HPLC- UV/Vis, para fins de otimização do método desenvolvido e posterior validação do mesmo empregando GC-ECD para a determinação dos agrotóxicos selecionados. As técnicas complementares utilizadas se mostraram adequadas para o monitoramento de testes no desenvolvimento de novas metodologias analíticas.

O método QuEChERS acetato associado à limpeza do extrato por SPE demonstrou ser eficiente para a extração e determinação de resíduos de 33 agrotóxicos em amostras de espinafre por GC-ECD. Os resultados de recuperação obtidos foram satisfatórios, na faixa entre 70 a 120% para 33 dos 39 agrotóxicos avaliados, com valores de RSD ≤20%. O método apresentou valores de LODm de 3,0 µg kg-1 e LOQ

m de 10,0 µg kg-1 para a maioria dos compostos analisados, exceto para clorpirifós etílico, HCH delta, pendimetalina, heptacloro, mirex e oxifluorfen que apresentaram LODm de 7,5 µg kg-1 e LOQm de 25,0 µg kg-1.

As soluções analíticas, utilizadas para a construção das curvas de calibração e consequente obtenção dos resultados de precisão e exatidão, foram preparadas no extrato da matriz, devido ao método ter evidenciado efeito matriz significativo, com a finalidade de descontar as interferências provenientes da matriz e, assim, evitar falsos resultados.

O método validado foi aplicado para a determinação de resíduos dos 33 agrotóxicos estudados em 10 amostras de espinafre adquiridas no comércio local, dos quais 6 agrotóxicos foram detectados, estando 3 deles acima dos limites estabelecidos pela legislação disponível para a cultura, sendo que 8 amostras apresentaram resíduos acima dos limites máximos permitidos de um ou mais dos compostos estudados.

O método QuEChERS modificado otimizado neste trabalho apresenta como vantagens em relação aos métodos tradicionais de extração, ser um procedimento simples e rápido, com um menor número de etapas analíticas, o que diminui a probabilidade de erros e perdas, além de ser relativamente barato e ambientalmente correto, devido ao baixo consumo de solventes orgânicos.

Portanto, conclui-se que o método desenvolvido é adequado à análise de resíduos de agrotóxicos em espinafre, podendo ser estendido para outras culturas semelhantes de hortaliças e utilizado em análises de rotina de laboratórios, visto que, todos os parâmetros de validação encontraram-se dentro dos limites exigidos para validação de métodos cromatográficos, atendendo satisfatoriamente os objetivos traçados para este trabalho.

DESTINO DOS RESÍDUOS GERADOS

As atividades laboratoriais geram resíduos sólidos e líquidos provenientes dos ensaios, os quais devem ser adequadamente tratados ou descartados, visto que podem representar riscos à saúde pública e ao meio ambiente.

Sendo assim, os resíduos sólidos gerados durante o desenvolvimento deste trabalho foram armazenados em sacos plásticos devidamente identificados e os resíduos líquidos foram recolhidos separadamente em frascos rotulados como resíduos halogenados e resíduos não-halogenados. Após, todos os resíduos foram encaminhados ao almoxarifado do Departamento de Química (DQ) da UFSM, setor responsável em destinar os resíduos gerados para uma empresa terceirizada, especializada na área para posterior tratamento e descarte.

SUGESTÕES PARA TRABALHOS FUTUROS

- Ampliar o escopo de compostos a serem analisados;

- Ampliar o estudo de sorventes pouco explorados para a limpeza de extratos;

- Avaliar o uso de diferentes quantidades de sorventes, objetivando a obtenção de extratos limpos, melhores recuperações de compostos e a minimização dos custos; - Comparar o método proposto com técnicas miniaturizadas de preparo de amostras; - Desenvolver método cromatográfico empregando a técnica de cromatografia gasosa acoplada à espectrometria de massas em série (GC-MS/MS) para fins de confirmação dos compostos avaliados;

- Desenvolver método cromatográfico empregando a técnica de cromatografia líquida (LC) para a determinação de resíduos de agrotóxicos em hortaliças não passíveis de análise por GC;

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ABCSEM, Associação Brasileira do Comércio de Sementes e Mudas. Projeto para o

levantamento dos dados socioeconômicos da cadeia produtiva de hortaliças no Brasil, 2010/2011. Disponível em: http://www.abcsem.com.br/docs/direitos_reser

vados.pdf, acesso em janeiro de 2017.

ABHILASH, P. C.; SINGH, V.; SINGH, N. Simplified determination of combined residues of lindane and other HCH isomers in vegetables, fruits, wheat, pulses and medicinal plants by matrix solid-phase dispersion (MSPD) followed by GC-ECD. Food

Chemistry, v. 113, p. 267-271, 2009.

ABNT NBR ISO/IEC 17025:2005. Requisitos gerais para a competência de

laboratórios de ensaio e calibração. 2 ed., 2005.

ALBERO, B.; SÁNCHEZ-BRUNETE, C.; MIGUEL, E.; TADEO, J. L. Application of matrix solid-phase dispersion followed by GC-MS/MS to the analysis of emerging contaminants in vegetables. Food Chemistry, v. 217, p. 660-667, 2017.

AN, E-M.; SHIN, H-S. Gas chromatographic determination of pesticide residues using electron-capture detector and mass spectrometry. Food Science and Biotechnology, v. 20, n.5, p. 1299-1306, 2011.

ANASTASSIADES, M.; LEHOTAY, S. J.; ŠTAJNBAHER, D.; SCHENCK, F. J. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and “dispersive solid-phase extraction” for the determination of pesticide residues in produce. Journal of AOAC International, v. 86, n. 2, p. 412-431, 2003.

ANASTASSIADES, M.; SCHERBAUM, E.; TASDELEN, B.; STAJNBAHER, D. Em: Ohkawa H, Miyagawa H, Lee PW (Eds.), Crop Protection, Public Health,

Environmental Safety, Wiley-VCH, Weinheim, Germany, 2007.

ANASTASSIADES, M., CRL-SRM 1st Joint CRL Workshop, Stuttgart, 2006. Disponível em: http://www.eurl-pesticides.eu/library/docs/srm/1stws2006_lecture_an astassiades_quechers.pdf, acesso em fevereiro de 2017.

ANDRADE-EIROA, A.; CANLE, M.; LEROY-CANCELLIERI, V.; CERDÀ, V. Solid- phase extraction of organic compounds: A critical review (Part I). Trends in Analytical

Chemistry, p. 1-42, 2016. (doi:10.1016/j.trac.2015.08.015).

ANVISA, Resolução - CNNPA nº 12, de 1978. Disponível em: http://www.anvisa.gov. br/anvisalegis/resol/12_78_hortalicas.htm, acesso em janeiro de 2017.

ANVISA, Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Guia para validação de métodos

analíticos e bioanalíticos, RE nº 899, de 29/05/2003.

ANVISA, Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Classificação e rotulagem de

agrotóxicos, 2005. Disponível em: http://www.desenvolvimento.gov.br/arquivo/sece

ANVISA, Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Monografias autorizadas, 2010. Disponível em: http://www.anvisa.gov.br/toxicologia/monografias/index.html, acesso em janeiro de 2017.

ANVISA, Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Programa de análise de resíduos

de agrotóxicos em alimentos PARA – Relatório das análises de amostras monitoradas no período de 2013 a 2015, 25/11/2016.

Anuário Brasileiro de Hortaliças: Brazilian Vegetable Yearbook. Santa Cruz do Sul: Gazeta, 2013, 92 p. Disponível em: http://www.icna.org.br/sites/default/files/artigo/ Anuario_hortalicas_2013_0.pdf, acesso em janeiro de 2017.

ARIAS, J. L. de O.; ROMBALDI, C.; CALDAS, S. S.; PRIMEL, E. G. Alternative sorbents for the dispersive solid-phase extraction step in quick, easy, cheap, effective, rugged and safe method for extraction of pesticides from rice paddy soils with determination by liquid chromatography tandem mass spectrometry. Journal of Chromatography A, v. 1360, p. 66-75, 2014.

BAIRD, C. Química Ambiental. 2 ed. Porto Alegre: Bookman, 2002, 622 p.

BARBOSA, L. C. A. Os pesticidas, o homem e o meio ambiente. Viçosa: UFV, 2004, 215 p.

BARKER, S. A.; LONG, A. R.; SHORT, C. R. Isolation of drug residues from tissues by solid phase dispersion. Journal of Chromatography A, v. 475, n. 2, p. 353-361, 1989.

BECEIRO-GONZÁLEZ, E.; GONZÁLEZ-CASTRO, M. J. MUNIATEGUI-LORENZO, S., LÓPEZ-MAHÍA, P, PRADA-RODRÍGUEZ, D. Analytical methodology for the determination of organochlorine pesticides in vegetation. Journal of AOAC International, v. 95, n. 5, p. 1291-1308, 2012.

BHAT, R. S.; AL-DAIHAN, S. Phytochemical constituents and antibacterial activity of some green leafy vegetables. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, v. 4, n. 3, p. 189-193, 2014.

BORGES, K. B; FIGUEIREDO, E. C; QUEIROZ, M. E. C. Preparo de amostras para

análise de compostos orgânicos. 1a ed. Rio de Janeiro: LTC, 2015. 263 p.

BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA), decreto n° 4.074 de 04 de janeiro de 2002. Regulamenta a Lei n° 7.802, de 11/07/1989. Diário Oficial da União. Brasília 08/01/2002, seção 1, página 1, 2002.

CABRERA, L. da C.; MARTINS, M. L.; PRIMEL, E. G.; PRESTES, O. D.; ADAIME, M. B.; ZANELLA, R. Extração em fase sólida dispersiva na determinação de resíduos e contaminantes em alimentos. Scientia Chromatographica, v. 4, n. 3, p. 227-240, 2012.

CABRERA, L. da C.; CALDAS, S. S.; PRESTES, O. D.; PRIMEL, E. G.; ZANELLA, R. Evaluation of alternative sorbents for dispersive solid-phase extraction clean-up in the

QuEChERS method for the determination of pesticide residues in rice by liquid chromatography with tandem mass spectrometry. Journal Separation Science, v. 39, p. 1945-1954, 2016.

CAJKA, T.; MASTOVSKÁ, K., LEHOTAY, S. J.; HAJSLOVÁ, J. Use of automated direct sample introduction with analyte protectants in the GC-MS analysis of pesticide residues. Journal Separation Science, v. 28, p. 1048-1060, 2005.

CAJKA, T.; SANDY, C.; BACHANOVA, V.; DRABOVA, L.; KALACHOVA, K.; PULKRABOVA, J.; HAJSLOVA, J. Streamlining sample preparation and gas chromatography-tandem mass spectrometry analysis of multiple pesticide residues in tea. Analytica Chimica Acta, v. 743, p. 51-60, 2012.

CALDAS, S. S.; ROMBALDI , C.; CERQUEIRA, M. B. R.; SOARES, B. M.; PRIMEL, E. G. Avanços recentes da MSPD para extração de resíduos de agrotóxicos, PPCPs, compostos inorgânicos e organometálicos. Scientia Chromatographica, v. 5, n. 3, p. 190-213, 2013a.

CALDAS, S. S.; BOLZAN, C. M.; MENEZES, E. J. de; ESCARRONE, A. L. V.; MARTINS, C. de M. G.; BIANCHINI, A.; PRIMEL, E. G. A vortex-assisted MSPD method for the extraction of pesticide residues from fish liver and crab hepatopancreas with determination by GC-MS. Talanta, v. 112, p. 63-8, 2013b.

CAPRIOTTI, A. L.; CAVALIERE, C.; FOGLIA, P.; SAMPERI, R.;

STAMPACHIACCHIERE, S.; VENTURA, S.; LAGANÀ, A. Advances and developments in matrix solid-phase dispersion. Trends in Analytical Chemistry, v. 71, p. 186-193, 2015.

CASSAL, V. B.; AZEVEDO, L. F. de; FERREIRA, R. P.; SILVA, D. G. da; SIMÃO, R. S. Agrotóxicos: uma revisão de suas consequências para a saúde pública. Revista

Eletrônica em Gestão, Educação e Tecnologia Ambiental REGET/UFSM, v. 18, n.

1, p.437-445, 2014.

CHEN, F.; CHEN, L.; WANG, Q.; ZHOU, J.; XUE, X.; ZHAO, J. Determination of organochlorine pesticides in propolis by gas chromatography-electron capture detection using double column series solid-phase extraction. Analytical Bioanalytical

Chemistry, v. 393, p. 1073-1079, 2009.

CHIARADIA, M. C.; COLLINS, C. H.; JARDIM, I. C. S. F. O estado da arte da cromatografia associada à espectrometria de massas acoplada à escpetrometria de massas na análise de compostos tóxicos em alimentos. Química Nova, v. 31, n. 3, p. 623-636, 2008.

CHRISTIA, C.; BIZANI, E.; CHRISTOPHORIDIS, C.; FYTIANOS K. Pesticide residues in fruit samples: comparison of different QuEChERS methods using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Environmental Science and Pollution

Research, v. 22, p. 13167-13178, 2015.

CODEX ALIMENTARIUS. Pesticides residues in food and feed – glossary of

s/reference/glossary.html, acesso em janeiro de 2017.

COLLINS, C. H.; BRAGA, G. L.; BONATO, P. S. Fundamentos de Cromatografia, Campinas, SP: Editora da Unicamp, 2006, 456 p.

CORREIA-SÁ, L.; FERNANDES, V.; CARVALHO, M.; CALHAU, C.; DOMINGUES V.; DELERUE-MATOS, C. Optimization of QuEChERS method for the analysis of organochlorine pesticides in soils with diverse organic matter. Journal of Separation

Science, v. 35, p. 1521-1530, 2012.

DENOBILE, M., NASCIMENTO, E. S. Validação de método para determinação de resíduos de antibióticos oxitetraciclina e doxitetraciclina em leite por cromatografia líquida de alta eficiência. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v. 40, p. 209, 2004.

DERRIEN, M.; BADR, A.; GOSSELIN, A.; DESJARDINS, Y.; ANGERS, P. Optimization of a green process for the extraction of lutein and chlorophyll from spinach by-products using response surface methodology (RSM). LWT - Food Science and

Technology, v. 79, p. 170-177, 2017.

DUARTE, F. A.; SOARES, B. M.; VIEIRA, A. A.; PEREIRA, E. R.; MACIEL, J. V.; CALDAS, S. S.; PRIMEL, E. G. Assessment of modified matrix solid-phase dispersion as sample preparation for the determination of CH3Hg+ and Hg2+ in fish. Analytical

Chemistry, v. 85, n. 10, p. 5015-22, 2013.

ENDO, S., PFENNIGSDORFF, A., GOSS, K.-U. Salting-out effect in aqueous NaCl solutions: trends with size and polarity of solute molecules. Environmental Science

and Technology, v. 46, p. 1496−1503, 2012.

EU, Europeian Union Pesticides Database. Disponível em: https://ec.europa.eu/food/ safety/chemical_safety/contaminants_en, acesso em fevereiro de 2017a.

EU, Europeian Union Pesticides Database. Disponível em: http://ec.europa.eu/food/ plant/pesticides/eu-pesticides-database/public/?event=pesticide.residue.selection& language=EN, acesso em janeiro de 2017b.

FAN, S.; ZHAO, P.; YUA, C.; PAN, C.; LI, X. Simultaneous determination of 36 pesticide residues in spinach and cauliflower by LC-MS/MS using multi-walled carbon nanotubes-based dispersive solid-phase clean-up. Food Additives & Contaminants:

Part A, v. 31, p. 73-82, 2014.

FAO, Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2005. FAOStat –

Glossary search. Disponível em: http://www.faostat.fao.org/site/379/DesktopDefault.

aspx?PageID=379, acesso em janeiro de 2017.

FENOLL, J.; HELLIN, P.; LOPEZ, J.; GONZALEZ, A.; FLORES, P. Determination of pesticides residues in lettuce by gas chromatography with electron-capture detection.

FERNANDES, V.; DOMINGUES, V.; MATEUS, N.; DELERUE-MATOS, C. Multiresidue pesticides analysis in soils using modified QuEChERS with disposable pipette extraction and dispersive solid-phase extraction. Journal of Separation

Science, v. 36, p. 376-382, 2013.

FU, W.; MAGNÚSDÓTTIR, M.; BRYNJÓLFSON, S.; PALSSON, B. Ø; PAGLIA, G. UPLC-UV-MS analysis for quantification and identification of major carotenoid and chlorophyll species in algae. Analytical and Bioanalytical Chemistry, v. 404, p. 3145-3154, 2012.

GARRIDO, J. RODRÍGUEZ, F.; CAMPAÑA, E.; ZAPATA, M. Rapid separation of chlorophylls a and b and their demetallated and dephytylated derivatives using a monolithic silica C column 18 and a pyridine-containing mobile phase. Journal of

Chromatography A, v. 994, p. 85-92, 2003.

GONZÁLEZ-CURBELO, M. Á.; HERNÁNDEZ-BORGES, J.; RAVELO-PÉREZ, L. M.; RODRÍGUEZ-DELGADO, M. A. Insecticides extraction from banana leaves using a modified QuEChERS method. Food Chemistry, v. 125, p. 1083-1090, 2011.

GONZÁLEZ-CURBELO, M. Á.; SOCAS-RODRÍGUEZ, B.; HERRERA-HERRERA, A. V.; GONZÁLEZ-SÁLAMO, J.; HERNÁNDEZ-BORGES, J.;RODRÍGUEZ-DELGADO, M. Á. Evolution and applications of the QuEChERS method. Trends in Analytical

Chemistry, v. 71, 169-185, 2015.

GUNATHILAKE, K. D. P. P.; RANAWEERA, K. K. D. S. Antioxidative properties of 34 green leafy vegetables. Journal of Functional Foods, v. 26, p. 176-186, 2016. HAJSLOVA, J., ZROSTLÍKOVÁ, J. Matrix effects in (ultra)trace analysis of pesticide residues in food and biotic matrices. Journal of Chromatography A, v. 1000, p. 181- 97, 2003.

HAN, L.; MATARRITA, J.; SAPOZHNIKOVA, Y.; LEHOTAY, S. J. Evaluation of a recent product to remove lipids and other matrix co-extractives in the analysis of pesticide residues and environmental contaminants in foods. Journal of

Chromatography A, v. 1449, p. 17-29, 2016.

HENNION, M. C. J. Graphitized carbons for solid-phase extraction. Journal of

Chromatography A, v. 885, p. 73-95, 2000.

HONG, J. A. K.; OKAMOTO, M.; KANETSUKI, K.; MAKINO, T.; HAMADA, N. Fundamental study of a novel membrane filtration cleanup method for pesticide analysis in agricultural products. Food Control, n. 64, p. 1-9, 2016.

HOU, X.; LEI, S.; GUO, L.; QIU, S. Optimization of a multi-residue method for 101 pesticides in green tea leaves using gas chromatography-tandem mass spectrometry.

Brazilian Journal of Pharmacognosy, v. 26, p. 401-407, 2016.

HUO, F.; TANG, H.; WUC, X., CHENC, D.; ZHAO, T.; LIUA, P.; LIA, L. Utilizing a novel sorbent in the solid phase extraction for simultaneous determination of 15 pesticide

residues in green tea by GC/MS. Journal of Chromatography B, v. 1023-1024, p. 44-54, 2016.

INMETRO, Instituto Nacional de Metrologia, Qualidade e Tecnologia, DOQ-CGCRE-

008 – Orientação sobre validação de métodos analíticos, revisão 5, 2016, 31 p.

IUPAC, International Union of Pure and Applied Chemistry. Disponível em: http://sitem.herts.ac.uk/aeru/iupac/, acesso em janeiro de 2017.

JARDIM, I. C. S. F.; ANDRADE, J. A. Resíduos de agrotóxicos em alimentos: uma preocupação ambiental global – um enfoque às maçãs. Química Nova, v. 32, n. 4, p. 996-1012, 2009.

JARDIM, I. C. F. S.; Extração em fase sólida: fundamentos teóricos e novas estratégias para preparação de fases sólidas. Scientia Chromatographica, v. 2, p. 13-25, 2010.

JUBERT, C.; BAILEY, G. Isolation of chlorophylls a and b from spinach by counter- current chromatography. Journal of Chromatography A, v. 1140, p. 95-100, 2007. KREYCI, P.F.; MENTEN, J.O.M. Limitadoras de produtividade, Revista Cultivar -

Caderno Técnico, p. 3-10, 2013.

KONATU, F. R. B.; BREITKREIITZ, M. C.; JARDIM, I. C. S. Revisiting quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe parameters for sample preparation in pesticide residue analysis of lettuce by liquid chromatography-tandem mass spectrometry.

Journal of Chromatography A, v. 1482, p. 11-22, 2017.

KIM, S-J.; CHO, A. R.; HAN, J. Antioxidant and antimicrobial activities of leafy green vegetable extracts and their applications to meat product preservation. Food Control, v. 29, p. 112-120, 2013.

LANÇAS, F. M.; Validação de métodos cromatográficos de análise. São Carlos: Editora RiMa, 2004, 62 p.

LARINI, L. Toxicologia dos Praguicidas. 1 ed. São Paulo: Manole, 1999, 230 p. LEHOTAY, S. J.; MASTOVSKA, K.; LIGHTFIELD, A. R. Use of buffering and other means to improve results of problematic pesticides in a fast and easy method for residue analysis of fruits and vegetables. Journal of Association of Official

Analytical Chemists International, v. 88, p. 615-629, 2005.

LEHOTAY, S. J.; SON, K. A.; KWON, H.; KOESUKWIWAT, U.; FU, W.; MASTOVSKA, K., HOH, E.; LEEPIPATPIBOON, N. Comparison of QuEChERS sample preparation methods for the analysis of pesticide residues in fruits and vegetables. Journal of

Chromatography A, v. 1217, p. 2548-2560, 2010.

LEHOTAY, S. J. QuEChERS Sample Preparation Approach for Mass Spectrometric Analysis of Pesticide Residues in Foods, In Mass Spectrometry in Food Safety, v. 747 of the series Methods in Molecular Biology, p. 65-91, 2011.

LEHOTAY, S. J.; MASTOVSKA, K. Methods of Analysis for Food Components and Additives, Chapter Determination of Pesticide Residues. Edit by Semih Otles, 2011, 534 pgs.

LIGOR, M.; BUSZEWSKI B. Study of xanthophyll concentration in spinach leaves by means of HPLC coupled with UV-VIS and Corona CAD detectors. Food Analytical

Methods, v. 5, p. 388-395, 2012.

LI, W., MORGAN, M. K.; GRAHAN, S. E.; STARR, J. M. Measurement of pyrethroids and their environmental degradation products in fresh fruits and vegetables using a modification of the quick easy cheap effective rugged safe (QuEChERS) method.

Talanta, v. 151, p. 42-50, 2016.

LIMANTARA, L.; DETTLINGA, M.; INDRAWATIA, R.; INDRIATMOKOA;

BROTOSUDARMO, T. H. P. Analysis on the chlorophyll content of commercial green leafy vegetables. Procedia Chemistry, v. 14, p. 225-231, 2015.

LOZANO, A.; RAJSKI, Ł.; UCLÉS, S.; BELMONTE-VALLES, N.; MEZCUA, M., FERNÁNDEZ-ALBA, A. R. Evaluation of zirconium dioxide-based sorbents to decrease the matrix effect in avocado and almond multiresidue pesticide analysis followed by gas chromatography tandem mass spectrometry. Talanta, v. 118, p. 68- 83, 2014.

MAPA; ANVISA; IBAMA, Manual de Procedimentos, Instrução Normativa Conjunta de 2014, Registro de agrotóxicos para fitossanitário insuficiente – CSFI, versão 1, fevereiro de 2015.

MAPA, Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento, 2011. Programa

Nacional de Controle de Resíduos e Contaminantes – Resíduos e Contaminantes. Disponível em: http://www.agricultura.gov.br/vegetal/qualidade-

segurança-alimentos-bebidas/alimentos/resíduos-e-contaminantes, acesso em janeiro de 2017.

MARTINS, M. L.; PRIMEL, E. G.; CALDAS, S. S.; PRESTES, O. D.; ADAIME, M. B.; ZANELLA, R. Microextração líquido-líquido dispersiva (DLLME): fundamentos e aplicações. Scientia Chromatographica, v. 4, p. 35-51, 2012.

MAY, M. M.; FERRONATO, G.; BANDEIRA, N. M. G.; PRESTES, O. D.; ZANELLA, R.; ADAIME, M. B. Determination of pesticide residues in soy-based beverages using a QuEChERS method (with clean-up optimized by central composite design) and ultra- high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Food

Analytical Methods, v. 10, p. 369-378, 2017.

MITRA, S. Sample preparation techniques in analytical chemistry, v. 162, New York: John Wiley & Sons, 2003, 472 p.

MMA, Ministério do Meio Ambiente. Disponível em: http://www.mma.gov.br/seguranç a-quimica/agrotoxicos. Acesso em janeiro de 2017.

MOL, H. G. J.; ROOSEBOOM, A.; VAN DAM, R.; RODING, M.; ARONDEUS, K.;

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