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Efficacité de produits stimulateurs et état de défense de la vigne : du gène au champ. Quel avenir ?
Marie-France Corio-Costet
To cite this version:
Marie-France Corio-Costet. Efficacité de produits stimulateurs et état de défense de la vigne : du gène au champ. Quel avenir ?. Séance de l’Académie d’Agriculture de France, Feb 2013, Paris, France.
�hal-02802069�
Marie-France CORIO-COSTET
Efficacité de stimulateurs et état de
défense de la vigne: du gène au champ. Quel avenir?
Marie-France CORIO-COSTET
INRA, UMR Santé et Agroécologie du vignoble, SAVE 1065 - INRA-Bordeaux sciences Agro,
33883 VILLENAVE D’ORNON CEDEX. coriocos@bordeaux.inra.fr
•Effet sur l’environnement (i.e. résistance au fongicides)
•Santé humaine
Dans le contexte d’une viticulture durable, qui vise à limiter les intrants pesticides, il est nécessaire d’innover et de combiner différente méthodes de lutte
•
Lutte biologique• Amélioration variétale
• Elicitation des défenses des plantes
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Stimulateur de défense des plantes (SDP)
O S CH3 S N
N
P H O O
O C2H5
Al3+
-
Analogue de l’AS Benzothiadiazole (BTH)
Origine biotique Origine abiotique
O OH
OH CH2
OH O OH
OH OH CH2
OH
O
OH CH2
OH
O OH
OH OH
CH2OH
Laminaria digitata
Laminarine
Produits inorganiques O O 3
Extraits végétaux, champignons, bactéries, chromistes.
Avantages
Large spectre
Intrants d’origine
Inconvénients
Forte Variabilité
d’efficacité au vignoble
Stimulateur de défense des plantes (SDP)
Intrants d’origine
biologique ou non, sans effet biocide direct
Utilisable en agriculture biologique
Méthode complémentaire Effet physiologique
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
L’efficacité des défenses dépend de nombreux facteurs
De l’agent pathogène (sa diversité, son agressivité, son adaptation à des toxiques et aux conditions de stress),
De la plante (génétique, l’organe, l’âge, ses capacités à répondre
coscor
De la plante (génétique, l’organe, l’âge, ses capacités à répondre (intensité et vitesse)
De l’environnement et de la biodisponibilité d’un éliciteur
In vitro In vivo In natura
Outil « BioMolChem »
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 3,0 3,5 4,0 4,5
Conce ntr ation (m M )
growth inhibition (%)
Mechanical Barriers PR Proteins
Phytoalexins SAR
Membrane Lipids LOX 9 Jasmonic Acid (JA)
p-coumaryl CoA leucoanthocyanidin
CHS CHI LDOX,BAN
STS
PAL stilbens
epicatechin
SA PR proteins
- PR1 - PR2 (glucanase) - 2 PR3 (chitinases) - PR 6 (serine protease) - PR10
- PGIP
Mechanical Barriers PR Proteins Phytoalexins Mechanical Barriers
PR Proteins
Phytoalexins SAR
Membrane Lipids LOX 9 Jasmonic Acid (JA)
p-coumaryl CoA leucoanthocyanidin
CHS CHI LDOX,BAN
STS
PAL stilbens
epicatechin
SA SA PR proteins
- PR1 - PR2 (glucanase) - 2 PR3 (chitinases) - PR 6 (serine protease) - PR10
- PGIP
■
BIOLogicalCourbes doses-réponses montrant l’efficacité des défenses sur différentes populations.
■
MOLecularAnalyses de PCR quantitative avec des gènes impliqués dans les défenses qui
Nucleus Defence genes
Methionin S-Adenosyl-L-methionin
A. C. C.
ACC synthase Ethylene
Phenylalanine PAL Phytoalexins
Statut Redox GST EF1γγγγ
17 genes
Nucleus Defence genes Defence genes
Methionin S-Adenosyl-L-methionin
A. C. C.
ACC synthase Ethylene
Methionin S-Adenosyl-L-methionin
A. C. C.
ACC synthase Ethylene
Phenylalanine PAL Phytoalexins
Statut Redox GST EF1γγγγ
17 genes
■
BioCHEMicalIdentifier et quantifier des
polyphénols potentiellement impliqués dans les mécanismes de défense de la vigne.
gènes impliqués dans les défenses qui nous renseigneront sur l’état de défense.
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Les SDP au laboratoire……..
Variabilité de l’efficacité selon l’éliciteur et l’agent pathogène considéré
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
GROWTH INBITION (%)
10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
growth inhibition (%)
0 50 100
% of mean growth inhibition
BTH
Pv-R (4) Pv-S (2) En-A (9) En-B (10)
Eliciteur A B C
B A A
B
0
0 2 4 6 8 10
Concentration (mM) 0
0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 3,0 3,5 4,0 4,5
Concentration (mM) 0
0 1 2 3 4 5 6 7 8
% of mean growth inhibition
Concentration (mM)
A partir de test foliaires, il est possible d’évaluer l’efficacité d’un éliciteur sur les défenses de la vigne sur différentes populations d’oïdium et de mildiou et de déterminer les doses efficaces et les risques de non efficacité.Pv-R: Souche de Plasmopara viticola resistantes aux fongicides Pv-S : souche de Plasmopara viticola sensibles aux fongicides En-B: souches d’Erysiphe necator de groupe B
En-A: souche d’Erysiphe necator de groupe A
Dufour and Corio-Costet, EJPP, 2013, in press)
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Au niveau moléculaire………
Membrane lipids LOX 9 Jasmonic acid (JA)
Phytoalexines
SA Shikimate
chorismate Tryptophane
Indoles
CHORS CHORM ANTS
p-coumaryl CoA
leucoanthocyanidine F3H, CHI, CHS
STS
stilbenes
épicatechin catéchine
Phenylalanine
LDOX,ANR PAL
PER, CAGT
lignine
q-RT-PCR avec 24 ou 96 gènes selectionnés, qui décrivent l’état de défense des feuilles
Nuclear Defense gene
Methionin
S - Adenosyl - L - methionine A. C. C.
ACC oxidase Ethylen
PR proteins - PR1 - PR2 - PR3 - PR8 - PR 6 - PR10 - PGIP
Redox status
GST EF1 γγγγ
CALS Cell wall
PER CAGT
+ Pv-S + Pv-R + En-A + En-B + Pv-S + Pv-R + En-A + En-B + Pv-S + Pv-R + En-A + En-B
PR1 4.45 -2.38 -14.3 -25.0 3.37 28.53 -1.8 -1.4 -1.60 -1.21 -1.9 -3.8 PR2 1.37 -1.12 -23.8 -29.9 1.46 -2.93 -5.4 -2.0 -1.50 -3.73 -2.1 -2.6 PR3 3.84 3.28 -22.2 -13.0 4.50 -4.0 0 4.2 3.8 -1.11 -1.19 -2.0 -8.0 PR6 2.14 -2.42 1.2 1.7 4.36 -1.46 2.9 1.1 -1.34 -2.50 1.3 1.2 PR8 -1.68 -1.18 -6.0 -16.6 2.77 1.54 4.0 -1.3 -1.96 -5.45 -2.9 3.3 PR10
72 hpi 48 hpi
24 hpi
Profils d’expressions après infection, sans contrôle de la maladie
+ Pv-S + Pv-R + En-A + En-B + Pv-S + Pv-R + En-A + En-B + Pv-S + Pv-R + En-A + En-B
3.46 5.77 1.0 0 7.92 10 9.73 76.44 5.27 1.93 1.0 0 4.14 4.99 -1.34
-1.80 -1.19 1.35 -5.65 6.84 4.57 1.0 0 -1.64 -36.13 -8.88 2.91 1.0 5
2.35 2.86 1.64 -2.30 7.44 10 .50 2.0 0 -1.30 1.20 1.70 1.92 14.50
3.63 1.29 4.14 1.74 18.57 9.19 9.10 3.19 1.61 5.10 1.18 12.25
BTH treated 72 hpi BTH treated
24 hpi
BTH treated 48 hpi
Profils d’expressions après infection et élicitation avec contrôle de la
croissance des deux pathogènes
PR10 4.60 2.34 7.4 -3.0 1.56 -1.57 2.9 1.4 -1.44 -1.98 2.9 2.7
PGIP -5.10 2.0 4 -21.5 -14.9 5.70 -3.70 -1.1 1.0 -1.37 1.0 5 5.7 5.6
PAL 1.83 1.70 1.1 1.2 2.17 2.54 2.1 -1.7 -1.54 -1.47 -1.2 -1.2
STS 1.0 5 -1.80 -1.2 -1.2 1.19 -1.67 6.8 9.8 -2.76 -2.57 10 8.1 39.0
CHI -10 0 .0 0 1.90 1.4 -1.5 1.0 6 -1.0 8 2.0 10 .2 -9.0 9 -2.17 -2.9 -10 0 .0
CHS -50 .0 0 1.17 2.1 1.8 1.74 -4.76 -1.2 -5.0 -3.61 -4.0 0 1.3 -1.5
LDOX -2.66 -3565.78 -7.3 -6.1 -1.83 7.0 5 -2.2 3.9 -18.18 2.0 1 2.4 3.6
ANR 2.13 1.0 8 1.5 1.5 1.66 2.28 -4.2 -1.6 1.18 1.32 -1.3 1.1
LOX 1.73 -1.37 -23.0 -10 .2 1.87 15.46 4.1 12.4 -12.0 7 -7.55 -3.0 1.5
GST -1.75 -3.86 -5.1 -10 .6 1.23 2.98 1.7 6.4 -7.36 -2.49 -1.3 -1.5
ACC -10 .0 0 -1.54 -13.2 -9.2 2.59 -3.23 5.0 -1.9 -5.20 -2.0 2 -5.5 -2.1
ANTS 1.73 -1.0 2 1.8 -1.4 3.16 1.59 1.7 1.7 -2.11 -1.85 2.7 -1.6
CHORM 9.0 7 6.0 3 12.7 10 .4 3.64 2.80 -2.8 -2.7 -1.53 -1.40 2.7 3.0 CHORS 3.20 2.0 2 2.6 -1.4 4.68 4.64 2.5 2.5 1.0 2 1.20 -1.8 -1.7
- Expression des gènes relative à l’expression dans des feuilles témoins non traitées et non inoculées - Gradient couleur
Dufour et al., 2012 Plant Pathol, in press
<0,3 >3
1
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
-1.35 8.53 -2.0 2 -1.81 16.56 2.83 2.10 -2.53 -1.28 -4.0 0 3.37 -1.31
6.29 6.18 2.87 3.76 6.81 11.56 2.40 1.0 9 1.23 2.78 1.24 3.26
-7.29 -4.33 1.0 1 2.67 1.78 5.50 1.0 7 -6.92 1.0 5 -1.35 -11.20 -2.0 4
-2.0 5 1.84 1.43 1.0 0 1.22 1.88 -1.28 -1.43 1.92 -1.65 -1.41 1.13
-1.15 1.14 -1.11 2.70 2.77 2.95 18.19 1.70 2.0 1 1.0 0 -1.43 1.25
-137.19 -1.33 -1.41 2.45 11.41 1.19 8.0 8 1.60 1.63 1.47 2.0 2 6.99
-2.77 -1.43 -1.42 -2.76 -1.24 3.66 -1.66 -1.11 1.81 2.89 1.0 7 1.38
-33.33 -33.33 -1.67 -5.86 2.83 1.47 2.81 1.50 4.21 2.78 1.39 4.46
-2.92 -1.0 5 -1.0 6 1.38 -1.38 1.0 0 -1.58 -1.60 1.72 1.26 -1.42 -4.45
-2.14 -1.37 -3.13 -1.19 2.21 3.67 1.56 1.0 0 -25.0 0 -5.0 0 -1.97 5.83
1.74 1.0 0 1.15 4.21 -1.25 15.45 7.15 1.29 3.88 4.97 2.0 3 -3.13
-5.10 3.38 -2.34 3.45 2.63 2.48 2.99 -1.10 3.93 2.70 -2.0 8 1.62
-3.96 -28.36 -3.0 9 -36.0 3 5.62 2.98 2.21 -1.19 2.73 4.22 11.78 14.31
-5.56 1.0 1 -1.72 -1.67 2.64 1.47 -1.22 -1.85 1.42 1.64 2.35 2.92
-7.26 -2.0 3 -1.79 -1.79 1.28 7.82 -1.93 -1.61 2.0 7 2.31 2.26 -3.55
BTH Pathogen
6*
1
2
4
Membrane lipids Jasmonic acid (JA)
A. C. C.
ACC oxidase
Ethylen Phytoalexines
PR proteins
- PR1 -PR2
SA Shikimate
chorismate Tryptophane
Indoles p-coumaryl CoA leucoanthocyanidine
stilbenes
épicatechin catéchine
Phenylalanine
Cell wall
lignine
O S CH3 S N
N
Marqueurs de défense ou de protection ?
1
BTH +Pathogen
Nuclear Defense gene
Methionin
S-Adenosyl-L-methionine A. C. C.
-PR2 - PR-3 -PR8 -PR 6 - PR10 -
Redox status
GST
6* gènes seraient des marqueurs de défense
5 gènes sont des marqueurs potentiels de protection et du BTH
STS
50 100 150 200 250 300 350 400 450
polyphenol totals (µg Eq resveratrol . g-1DW)
Polyphenols
* *
* *
Les pathogènes seuls induisent une accumulation de polyphénols qui sont sans efficacité anti-fongique,
Au niveau biochimique…..
Agent pathogène
Pas d’effet d’accumulation de resvératrol et de picéid, sauf effet de l’agent pathogèneSeule la présence de ptérostilbène est corrélée
0
polyphenol totals (µg Eq resveratrol . g
Seule la présence de ptérostilbène est corrélée au traitement BTH et à l’efficacité fongicide.
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Dufour et al., (2013) Plant Pathol. In press, DOI:
10.1111/j.1365.3059.2012.02628.x
Après une infection par un agent pathogène, la vigne surexprime des gènes de défenses (e.g. PR1, PR3, PR10…), mais à un niveau insuffisant pour obtenir une protection des
feuilles,
Approche « BioMolChem »
Les agents pathogènes
reprogramment le génome de la vigne
Dufour et al., (2013) Plant Pathol. In press, DOI:
reprogramment le génome de la vigne et conduisent à la répression de
nombreux gènes de défense (de 37.5 to 100% des gènes étudiés),
Les agents Pathogènes stimulent la production de polyphénols dans les tissus de la vigne mais sans efficacité sur leur croissance.
Les SDPs au Vignoble……..
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Sd 81-85 Sd 77-79
Sd 71 Sd 61-69
Sd 55 Sd 13 Sd 16
Sd 11
? ?
?
Stades phénologiques de la vigne et sensibilité
Véraison Fermeture de
la grappe Nouaison
Floraison Boutons
floraux séparés
Période maximum de sensibilité des grappes 1 à 3 Feuilles
étalées
5-7 feuilles
Période de grande sensibilité du feuillage
Quand ? Quelle dose ? Quel éliciteur ? Dans quelles conditions?
Sévérité du mildiou
(
moyenne du pourcentage d’attaque)Feuilles Grappes
Efficacité au vignoble sous forte pression épidémique
50 60 70 80 90 100
severity (mean % of attack)
50 60 70 80 90 100
Severity (mean % of attack)
a
b
■ Control, ■ Eliciteur A, ■ Eliciteur B, ■ Référence fongicide
L’efficacité d’un SDP dépend de l’éliciteur considéré et aussi de l’organe de la plante
0 10 20 30 40
4-Jun 11-Jun 18-Jun 25-Jun 2-Jul 9-Jul 16-Jul 23-Jul 30-Jul 6-Aug 13-Aug 20-Aug 27-Aug
severity (mean % of attack)
Date
0 10 20 30 40 50
Jul-09
Severity (mean % of attack)
Date
c
d
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Approche MOLéculaire au vignoble ….
■ Avant l’inoculation, nous obtenons une bonne corrélation avec l’expression des gènes of STS and PAL et la sévérité de la maladie
nous avons trouvés des Marqueurs potentiels de protection avant inoculation
des Marqueurs de protection feuilles
des Marqueurs de défense, mais non de protection des Marqueurs de défense, mais non de protection
■ Des profils variés…..
Approche BioCHIMique au vignoble ….
Après 4 traitements et avant inoculation du mildiou
les quantités de Resveratrol and de Picéide sont inversement proportionnel à la quantité de ptérostilbène et au niveau de
protection.
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
Après 4 traitements et après l’inoculation
ε-viniférine semble corrélée négativement et un composé A est corrélé positivement avec l’efficacité de protection des grappes.
il est possible d’obtention de raisin de qualité et maîtrise des épidémies en divisant par deux les doses de fongicides
. G. Froidefond
Perspectives intéressantes
Besoin d’explorer leurs capacités et leurs limites
Conditions Environnementales
Stratégie ?
Positionnement,
synergie, antagonisme
Méthode
complémentaire avec des SDP
Vigne Pathogènes
Association ou alternance avec des fongicides à dose plus faible, soutien à l’agriculture biologique,
soutien à la durabilité des résistances variétales,
réponse à des impasses techniques (maladie du bois, virus)
Académie d’Agriculture – février 2013- MF Corio-Costet
UMR SAVE (Santé et Agroécologie du VignoblE)
Ingénieur MC Dufour
Technicien A. Lebreton B. G. Taris PCT Terrain L. Druelle P. Sauris P. Sauris
GESVAB, ISVV Prof. JM Mérillon S. Cluzet
C. Lambert
Soutien financier : CIVB and INRA