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Etude du remodelage vasculaire pathologique : de la caractérisation macroscopique en imagerie TDM à l’analyse en microscopie numérique

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Academic year: 2021

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https://tel.archives-ouvertes.fr/tel-03139889

Submitted on 12 Feb 2021

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Etude du remodelage vasculaire pathologique : de la

caractérisation macroscopique en imagerie TDM à

l’analyse en microscopie numérique

Amele Eyram Florence Kouvahe

To cite this version:

Amele Eyram Florence Kouvahe. Etude du remodelage vasculaire pathologique : de la caractérisation macroscopique en imagerie TDM à l’analyse en microscopie numérique. Imagerie médicale. Institut Polytechnique de Paris, 2020. Français. �NNT : 2020IPPAS019�. �tel-03139889�

(2)

Etude du remodelage vasculaire

pathologique : de la caractérisation

macroscopique en imagerie TDM à

l’analyse en microscopie

numérique

Thèse de doctorat de l’Institut Polytechnique de Paris

préparée à TélécomSud Paris

[ED IP Paris] Ecole Doctorale de l'Institut Polytechnique de Paris n°626 Spécialité de doctorat: Sciences de l’information et de la communication

Thèse présentée et soutenue à Paris, le 04/12/2020, par

Amele Eyram Florence KOUVAHE

Composition du Jury :

Dan Istrate Président

HDR, Enseignant-chercheur Rang A, Université de Compiègne Rapporteur

Maciej Orkisz

Professeur, Université Claude Bernard Lyon 1 (CREATIS) Rapporteur

Caroline Petitjean

Maître de Conférences, HDR, Université de Rouen (LITIS EA 4108) Examinateur

Yasmina Chenoune

Enseignant-chercheur, PhD, ESME Sudria Paris Examinateur

Liliane Ramus,

Ingénieur Sénior Applications Avancées, PhD, GE Healthcare Examinateur

Catalin Fetita

Professeur, Telecom SudParis, IP Paris (ARTEMIS) Directeur de thèse

NNT

:

2

0

2

0

IP

P

A

S

0

1

9

(3)

Institut Polytechnique de Paris

91120 Palaiseau, France

Titre : Etude du remodelage vasculaire pathologique : de la caractérisation macroscopique en imagerie

TDM à l’analyse en microscopie numérique

Mots clés : Imagerie médicale, Diagnostic assisté par ordinateur, Traitement d'image Résumé : Cette recherche s’intéresse à l’étude

du réseau vasculaire en général, dans plusieurs modalités d’imagerie et plusieurs configurations anatomo-pathologiques. Son objectif consiste à discriminer les structures vasculaires dans les données image et détecter et quantifier la présence de modifications morphologiques (remodelage) en lien avec une pathologie. L’originalité de l’approche développée consiste à exploiter un filtrage localement connexe (FLC) multidirectionnel adapté à la dimension de l’espace de données (2D ou 3D). Ce filtrage permet de sélectionner les structures curvilignes en contraste positif dans les images dont la taille en section transverse (calibre) ne dépasse pas la taille de la fenêtre de filtrage. Cette sélection reste efficace même au niveau des régions de subdivisions des vaisseaux. La mise en place d’une technique de filtrage multirésolution permet de s’affranchir de la différence des calibres vasculaires dans le réseau et de segmenter l’ensemble de la structure vasculaire, y compris en présence d’une modification locale de calibre.

Un autre intérêt de l’approche de segmentation proposée est sa généralité. Elle s’adapte facilement à différentes modalités d’imagerie qui préservent un contraste (positif ou négatif) entre les vaisseaux et leur environnement. Nous l’avons pu démontrer dans le cadre de l’imagerie TDM 3D thoracique avec la segmentation du réseau vasculaire intrapulmonaire, mais également en imagerie TDM 3D hépatique avec injection de produit de contraste, en imagerie 2D de fond d’œil et en imagerie microscopique infrarouge (pour la segmentation des fibres dans le cerveau de souris).

A partir d’une segmentation précise et robuste du réseau vasculaire, il est possible par la suite de détecter et caractériser la présence d’un remodelage en présence d’une pathologie. Cela passe par une analyse de la variation du calibre des vaisseaux le long de l’axe central, permettant à la fois d’obtenir une vue globale de la distribution des calibres vasculaires dans l’organe étudié (et la comparer avec une référence « sujet sain »),

et de détecter localement des modifications de forme (rétrécissement, dilatation). Ce dernier cas de figure a été étudié dans le cadre de la détection et la quantification des malformations artério-veineuses pulmonaires (MAVP).

Prévue initialement dans un cadre d’étude de l’angiogénèse tumorale, la méthode développée n’a pas pu être appliquée en analyse microscopique par imagerie multispectrale infrarouge en raison de l’absence de contraste de vaisseaux dans les bandes spectrales étudiées. Nous nous sommes limités dans ce cas précis à l’extraction des fibres cérébrales comme élément d’appui pour retrouver l’information manquante dans le cas d’un sous-échantillonnage 2D du volume du cerveau. En effet, l’étude de la croissance tumorale nécessitait également de pouvoir recouvrir le volume de la tumeur dans le cerveau de souris à partir de coupes coronales éparses des échantillons biologiques ayant subi des déformations lors de la découpe physique. Pour cela, une interpolation 2D-2D après réalignement des structures a été envisagée avec une deuxième contribution méthodologique de la thèse portant sur une approche de recalage-interpolation géométrique contrôlée par une mise en correspondance préalable des structures similaires dans les images. Les structures ciblées dans notre cas seront notamment la tumeur, les fibres, les ventricules et le contour du cerveau, chacune pouvant être obtenue au moyen des techniques de segmentation appliquées aux différentes bandes spectrales de la même image. La mise en correspondance des images se fait au moyen d’un champ de vecteurs directionnels établi au niveau des contours des structures cible, dans un espace de dimension supérieure (3D ici).

La diffusion du champ de vecteurs éparse ainsi construit sur l’ensemble de l’espace permet d’obtenir un flot directionnel dont les lignes de champ constituent la transformation homéomorphique entre les deux images.

(4)

Institut Polytechnique de Paris

91120 Palaiseau, France

Title : Analysis of pathological remodelling of vascular networks: from a macroscopic

characterisation in CT imaging to digital microscopy analysis

Keywords : medical imaging, computer-aided diagnosis, image processing Abstract : This research focuses on the study

of the vascular network in general, in several imaging modalities and several anatomo-pathological configurations. Its objective is to discriminate vascular structures in image data and to detect and quantify the presence of morphological modifications (remodeling) related to a pathology.

The originality of the approach developed consists in exploiting a multidirectional locally connected filter (LCF) adapted to the dimension of the data space (2D or 3D). This filter allows the selection of curvilinear structures in positive contrast in images whose cross-section size does not exceed the size of the filtering window. This selection remains effective even at the level of vessel subdivision. The implementation of a multi-resolution filtering technique makes it possible to overcome the difference in vascular calibers in the network and to segment the entire vascular structure, even in the presence of a local change in caliber.

Another interest of the proposed segmentation approach is its generality. It can be easily adapted to different imaging modalities that preserve a contrast (positive or negative) between the vessels and their environment. We have been able to demonstrate this in 3D thoracic CT imaging with segmentation of the intrapulmonary vascular network, but also in 3D hepatic CT imaging with injection of contrast agent, in 2D fundus imaging and in infrared microscopic imaging (for fiber segmentation in the mouse brain).

Based on a precise and robust segmentation of the vascular network, it is then possible to detect and characterize the presence of remodeling in the presence of a pathology. This involves an analysis of the variation in the caliber of the vessels along the central axis, allowing both a global view of the distribution of vascular calibers in the organ studied (and comparing it with a "healthy subject" reference), and the local detection of changes in shape (narrowing, dilation).

The latter was studied in the context of the detection and quantification of pulmonary arteriovenous malformations (PAVM).

Initially planned in a study of tumor angiogenesis, the method developed could not be applied in microscopic analysis by infrared multispectral imaging due to the lack of contrast of vessels in the spectral bands studied. In this specific case, we limited ourselves to the extraction of brain fibers as a supporting element to find the missing information in the case of 2D subsampling of brain volume. Indeed, the study of tumor growth also required to be able to cover the tumor volume in mouse brains from scattered coronal slices of the biological samples that were deformed during the cutting. For this purpose, a 2D-2D interpolation after realignment of the structures was envisaged with a second methodological contribution of the thesis dealing with a controlled geometrical interpolation approach by a preliminary matching of similar structures in the images. The structures targeted in our case will include the tumor, fibers, ventricles and brain contour, each of which can be obtained using segmentation techniques applied to the different spectral bands of the same image. Image matching is done using a field of directional vectors established at the contours of the target structures, in a higher dimensional space (3D here).

The diffusion of the scattered vector field thus constructed over the whole space allows to obtain a directional flow whose field lines constitute the homeomorphic transformation between the two images.

(5)
(6)
(7)
(8)
(9)
(10)
(11)
(12)
(13)

log𝐼0

𝐼 = 𝜇𝑑𝑣,

(14)

𝜇

𝜇

1

𝑑𝑣

1

𝜇

2

𝑑𝑣

2

𝜇

𝑛

𝑑𝑣

𝑛 𝝁

𝐼 = 𝐼

0

exp (− ∫ 𝑓(𝑥, 𝑦)𝑑𝑣),

𝐷 Équation 2

𝜇

𝑝

𝜃

(𝑢)

(15)

𝒑𝜽(𝒖) 𝒖

𝑅(𝑢, 𝜃)

= 𝑝

𝜃

(𝑢)

= ∫ 𝑓(𝑢 cos 𝜃 − 𝑣 sin 𝜃

𝐷𝜃

, 𝑢 𝑠𝑖𝑛 𝜃 + 𝑣 𝑐𝑜𝑠 𝜃)𝑑𝑣

Équation 3

𝑝

𝜃

(𝑢)

(16)

(17)

ℬ(𝑔)

= ∫ 𝑔(𝑢𝑐𝑜𝑠𝜃 + 𝑣𝑠𝑖𝑛𝜃, 𝜃)𝑑𝜃0𝜋 𝐺 = ℱ(𝑔)

𝑔 =

𝑅 𝐺(𝜉, 𝜃) = ∫ 𝑅(𝑠, 𝜃)𝑒−𝑗2𝜋𝑠𝜉𝑑𝑠 ∞ −∞

𝜉 θ

|𝜉| 𝑓̂(x, y) = ℬℱ−1{𝑊(𝜉)𝐺(𝜉, 𝜃)} Équation 5

𝑊(𝜉)

(18)
(19)

(20)
(21)
(22)
(23)
(24)
(25)
(26)
(27)
(28)
(29)

o

o

(30)

∑ ∑ ∑ ∑ ∑ ∑ ∑ ∑ ∑ ∑

(31)
(32)
(33)
(34)
(35)
(36)

-

(37)

-

(38)

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

 ℤ

2

3

(39)

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

ϵ

𝑒 = 𝑥, 𝑦 ϵ

𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) G

ϵ

{𝑒

𝑖𝑗

= 𝑧

̅̅̅̅̅̅} 𝜖 𝐸

𝑖

, 𝑧

𝑗

𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) =

{{𝑧

𝑖

}

𝑖

𝜖 𝑉 ∪ {𝑒

𝑖𝑗

= 𝑧

̅̅̅̅̅̅}

𝑖

, 𝑧

𝑗

𝜖 𝐸|𝑥 = 𝑧

1

, 𝑧

1

≈ 𝑧

2

, … , 𝑧

𝑖

≈ 𝑧

𝑖+1

, … , 𝑧

𝑛

= 𝑦 }

Équation 6

2 𝜞𝒇𝑮  ℤ𝟐

𝛤

𝑓𝐺

:

𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

(x, y) = 𝑠𝑢𝑝{𝑓(𝑧)| ∀𝑧  𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) } ,

Équation 7

𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) = 𝑖𝑛𝑓{𝑓(𝑧)| ∀𝑧  𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) } ,

Équation 8

(40)

𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

𝑉 ℤ

2

→ ℤ

𝛤

𝑓𝐺

.

ϵ

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) = 𝑠𝑢𝑝{𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦),

 𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)},

Équation 9

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦) = 𝑖𝑛𝑓{𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦),

 𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)}

ϵ

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

ϵ

𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌) = {

{𝛤

𝑓 𝐺

(𝑥, 𝑦)}

𝑦 𝜖 𝑌

, 𝑠𝑖 𝑥 ∉ 𝑌

𝑥, 𝑠𝑖𝑛𝑜𝑛 .

Équation 10 𝑆𝑢𝑝𝛤𝑓𝐺 𝐼𝑛𝑓𝛤𝑓𝐺 𝛤𝑓𝐺

(41)

 

ϵ

𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌) = {𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)}

𝑦 𝜖 𝑌

Équation 11

𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌) = {𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)}

𝑦 𝜖 𝑌

.

ϵ

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌) = 𝑠𝑢𝑝{𝐼𝑛𝑓𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)}

Équation 12

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌) = 𝑖𝑛𝑓{𝑆𝑢𝑝𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)}

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)

(42)

𝐶𝑇𝑓𝐺(𝑥, 𝑌) 𝐶𝑇 𝑓𝐺(𝑥, 𝑌)

𝑛

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)

𝐶𝑇

(43)

𝐶𝑇

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑦)

𝐶𝑇

𝐶𝑇

𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑌)

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

ϵ

𝑪𝑻

𝒇 𝑮

(𝒙, 𝑵

𝒌

(𝒙)),

Équation 13

𝑵

𝒌

(𝒙) = {𝒚 𝝐 𝑽|𝒅(𝒙, 𝒚) > 𝒌 },

Équation 14

(44)

. , . )

𝑁

𝑘

(𝑥)

𝑥, . ) > 𝑘

𝛤

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑁

𝑘

(𝑥))

𝑁

𝑘 Équation 14

𝑑

8

(𝑎, 𝑏) = max(|𝑎

1

− 𝑏

1

|, |𝑎

2

− 𝑏

2

|),

Équation 15

𝑎

𝑖

𝑏

𝑖 𝑵𝒌(𝒙) 

𝑁

𝑘

(𝑥)

𝑁

𝑘

(𝑥)

(45)

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

𝑥 𝑉, 𝐹𝐿𝐶𝑉

(𝑥, 𝑘) = 𝑖𝑛𝑓

𝒅 𝒅𝒊

{ 𝐶𝑇

𝑓𝐺

(𝑥, 𝑁

𝑘,𝑑

(𝑥))}

Équation 16

𝑁

𝑘,𝑑

(𝑥)

(46)

𝑵𝒌,𝒅

Équation 16

𝑁

𝑘,𝑑

(𝑥)

(47)
(48)

𝐝𝐢∈ 𝑪𝟏𝟖 𝑵𝒌,𝒅(𝒙) 𝒅 = 𝒅𝟒

(49)

ϵ

𝒔 ∈

𝑉(𝑠

𝑓

) 𝑠

𝑓

∈ 𝑌 𝑠 ∉ 𝑌 ,

𝑉

𝑦

(𝑠)

𝑠

𝑉

𝑦̅

𝑓(𝑠

𝑓

) − 𝑓(𝑠) ≤ 𝑓(𝑠) −

∑𝑠𝑏 ∈𝑉𝑦̅𝑓(𝑠𝑓) ∑𝑠𝑏 ∈𝑉𝑦̅1 Équation 17

𝑉

𝑦

(𝑠) = 𝑌 ∩ 𝑉(𝑠)

𝑉

𝑦̅

= {𝑠

𝑏

∈ 𝑉(𝑠)\𝑌

𝑓(𝑠

𝑏

) < 𝑓(𝑠)

Équation 18

(50)

Y

𝑠

𝑓

s

𝑠

𝑏

𝑉

𝑌

(𝑠)

𝑉(𝑠)

𝑉

𝑌̅

(𝑠)

(51)

𝑉 ℤ

𝑛

→ ℤ

FD(𝑓)(𝑥) = 𝑅

𝑓

(𝑥, 𝑠𝑢𝑝

𝑖

{𝑓 ⊝ 𝐿

𝒅𝑖

}), 𝒅

𝒊

∈ C

18 Équation 19

𝑅

𝑓

(. Y)

𝐿

𝒅𝑖

𝒅

𝒊

𝒅

𝒊

C

18

(52)
(53)

FD

(.

(54)

𝑆𝐸𝑁𝑆 =

[𝑇𝑃]

[𝑇𝑃] + [𝐹𝑁]

,

𝑆𝑃𝐸𝐶 =

[𝑇𝑁]

[𝑇𝑁] + [𝐹𝑃]

,

Équation 20

(55)
(56)
(57)
(58)
(59)
(60)
(61)
(62)
(63)
(64)
(65)
(66)

min

(67)
(68)
(69)
(70)
(71)

𝜇∇

2

𝐮 + (𝜇 + 𝜆)∇(∇. 𝐮) + F = 0

Équation 21

𝜇

𝜆

𝑣(𝑥; 𝑡) = ∂

𝑡

𝑢(𝑥; 𝑡) + ∇𝑢(𝑥; 𝑡)𝑣(𝑥; 𝑡)

Équation 22

(72)

∆𝑢 + F = 0

Équation 23

(73)
(74)
(75)
(76)

𝑓(𝑣

𝑘

) =

‖𝑣

𝑘+1

− 𝑣

𝑘

‖𝑣

𝑘+1

− 𝑣

𝑘−1

𝑓(𝑣

𝑘−1

) +

‖𝑣

𝑘−1

− 𝑣

𝑘

‖𝑣

𝑘+1

− 𝑣

𝑘−1

𝑓(𝑣

𝑘+1

)

Équation 24

‖. ‖

𝑓(𝑣

𝑘

) = 0,5𝑓(𝑣

𝑘−1

) + 0,5𝑓(𝑣

𝑘+1

)

Équation 25

(77)
(78)

  ℝ

2

𝑓: Ω x [0, 𝑇] → ℝ

(𝑥, 𝑦) , 𝑡 ↦ 𝑓(𝑥, 𝑦, 𝑡).

Équation 26

𝑡 ↦ (𝑥(𝑡), 𝑦(𝑡), 𝑡)

Équation 27

(𝑥(𝑡

0

), 𝑦(𝑡

0

), 𝑡

0

) = (𝑥

0

, 𝑦

0

, 𝑡

0

)

Équation 28

𝑓(𝑥(𝑡), 𝑦(𝑡), 𝑡) = 𝑓(𝑥

0

, 𝑦

0

, 𝑡

0

)

Équation 29

𝑡 = 𝑡

0

𝜕𝑓

𝜕𝑡

(𝑥

0

, 𝑦

0

, 𝑡

0

) +

𝜕𝑓

𝜕𝑥

(𝑥

0

, 𝑦

0

, 𝑡

0

)

𝜕𝑥

𝜕𝑡

(𝑡

0

) +

𝜕𝑓

𝜕𝑦

(𝑥

0

, 𝑦

0

, 𝑡

0

)

𝜕𝑦

𝜕𝑡

(𝑡

0

) = 0.

Équation 30

𝐮(𝑥

0

, 𝑦

0

) = (𝑢

1

(𝑥

0

, 𝑦

0

), 𝑢

2

(𝑥

0

, 𝑦

0

))

Équation 31

𝑢

1

(𝑥

0

, 𝑦

0

) =

𝜕𝑥 𝜕𝑡

(𝑡

0

)

𝑢

2

(𝑥

0

, 𝑦

0

) =

𝜕𝑦 𝜕𝑡

(𝑡

0

)

𝑓

=

𝜕𝑓 𝜕∎

𝑓

𝑥

𝑢

1

+ 𝑓

𝑦

𝑢

2

+ 𝑓

𝑡

= 0.

Équation 32

(79)

(𝑓

𝑥′

𝑢

1

+ 𝑓

𝑦′

𝑢

2

+ 𝑓

𝑡

)

2 𝑉(𝑥,𝑦)

𝑑𝑥′𝑑𝑦′

Équation 33

𝑉(𝑥, 𝑦

(𝑥’, 𝑦’) ∈ 𝑉(𝑥, 𝑦).

𝐺𝑙𝑜𝑏(𝐮) = ∫ (𝑓

𝑥

𝑢

1

+ 𝑓

𝑦

𝑢

2

+ 𝑓

𝑡

)

2 Ω

+ 𝛼(|∇𝑢

1

|

2

+ |∇𝑢

2

|

2

𝑑𝑥𝑑𝑦

Équation 34

𝛼

𝒖 =

(𝑢

1

, 𝑢

2

)

𝐷 𝑅

(80)
(81)
(82)
(83)
(84)
(85)
(86)

𝒗

𝑻

= 𝒄

𝒋

− 𝒄

𝒊 Équation 35

𝑣

𝑝𝑖,1

𝑣

𝑝𝑖,2

𝑣

𝑝𝑗,1

𝑣

𝑝𝑗,2

 ≥

 ≥

(87)

θ

𝒗

𝒑𝒊,𝟏

𝒗

𝒑𝒋,𝟏 θ θ

𝛼

 

 

θ

𝒗

𝒑𝒊,𝟏

θ

θ

Équation 36

T

𝑅

(𝜃) = [

cos 𝜃

−sin 𝜃

0

sin 𝜃

cos 𝜃

0

0

0

1

]

T

𝑆

= [

𝑆

𝑥

0

0

0

𝑆

𝑦

0

0

0

1

]

𝑟

= 𝑠 ∗ cos

−1

( 𝒗

𝟏

. 𝒗

𝟐

)

Équation 37

(88)

𝑝

𝑖

∈ ∇

𝒒

𝒊

(

𝑞

𝑖𝑥

𝑞

𝑖𝑦

1

) = 𝑇

𝑅

(𝛼

𝑅

). 𝑇

𝑠𝑖

. (

𝑝

𝑖𝑥

− 𝑐

𝑖𝑥

𝑝

𝑖𝑦

− 𝑐

𝑖𝑦

1

) + (

𝑐

𝑖𝑥

𝑐

𝑖𝑦

1

)

Équation 38

𝒗

𝑻

𝒓

(𝑝

𝑖

) = 𝒒

𝒊

− 𝒑

𝒊 Équation 39 𝒑𝒊 𝒒𝒊

𝒑

𝒊

→ 𝒒

𝒊

+ 𝒗

𝒓

= 𝒓

𝒊

∈ ∇𝑅

𝑙 𝑖,𝑟𝑜𝑡

∀ 𝒓

𝒊

∈ ∇

𝒅

𝒙𝒚𝒊

𝒔

𝒊

∈ ∇

∀ 𝒓

𝒊

∈ ∇𝑅

𝑖,𝑟𝑜𝑡𝑙

, 𝒅

𝒙𝒚𝒊

= 𝒔

𝒊

− 𝒓

𝒊

𝒔

𝒊

∈ ∇

𝒓

𝒊

∈ ∇𝑅

𝑖,𝑟𝑜𝑡𝑙

,

r

i

r

i

∇𝑅

𝑖,𝑟𝑜𝑡𝑙

,

r

i

(89)

𝒔

𝒊

∈ ∇

∇𝑅

𝑖,𝑟𝑜𝑡𝑙

r

i

𝒔

𝒊

𝒔

𝒊

r

i

𝒅

𝒙𝒚𝒊

||

𝒑

𝒊

𝑝

𝑖

∈ ∇

𝒖(𝑝

𝑖

) = 𝒅

𝒙𝒚𝒊

+ ∆

𝒓

(𝑝

𝑖

) + 𝒗

𝑻

.

(90)
(91)
(92)

∇𝑅

𝑖,𝑟𝑜𝑡𝑙

∃ 𝒑

𝒊

∈ ∇

𝒓

𝒊

= 𝒑

𝒊

+ ∆

𝒓

(𝒑

𝒊

) + 𝒗

𝑻

,

𝑟

𝑖

(93)
(94)

𝑑𝑽

𝑑𝑡

= 𝑔(|𝒖|). ∇

2

𝑽 − ℎ(|𝒖|). (𝑽 − 𝒖)

É

𝑽

𝒖

𝑔(|𝒖|)

ℎ(|𝒖|)

𝑔(|𝒖|) = 𝑒

−( 𝒖 𝐾)

ℎ(|𝒖|) = 1 − 𝑔(|𝒖|)

𝑽

𝑽

𝒕+𝟏

= 𝑽

𝒕

+ ∆𝒕 𝑔(|𝒖|)∇

2

𝑽 − ℎ(|𝒖|)𝑽

𝒕

+ ℎ(|𝒖|)𝒖

(95)

𝑽

𝒕+𝟏

=

𝑽

𝒕

+ ∆𝒕 𝑔(|𝒖|)∇

2

𝑽 + ℎ(|𝒖|)𝒖

𝟏 + (𝟔𝑔(|𝒖|) + ℎ(|𝒖|)) ∆𝒕

2

𝑽 = 𝑽

𝒙,𝒚,𝒛−𝟏 𝒕+𝟏

+ 𝑽

𝒙,𝒚−𝟏,𝒛 𝒕+𝟏

+ 𝑽

𝒙−𝟏,𝒚,𝒛 𝒕+𝟏

+ 𝑽

𝒙,𝒚,𝒛−𝟏𝒕+𝟏

+ 𝑽

𝒙,𝒚+𝟏,𝒛𝒕

+ 𝑽

𝒙+𝟏,𝒚,𝒛𝒕

− 𝟔 𝑽

𝒙,𝒚,𝒛𝒕

𝒖

(96)
(97)
(98)
(99)
(100)
(101)
(102)
(103)
(104)
(105)
(106)

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑆

𝑖𝑙∅

𝑆

𝑗𝑙∅

(107)

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑆

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑆

𝑗𝑙∅

𝑅

𝑖𝑙∅

𝑆

𝑖𝑙∅

𝑅

𝑗𝑙∅

𝑆

𝑗𝑙∅

(108)
(109)
(110)
(111)
(112)
(113)
(114)
(115)
(116)
(117)
(118)
(119)
(120)

𝑑Équation 48

h

dmax

(f , h) = Rec

( h

d

(f, h), h

max

(f, h)).

Équation 49

(121)
(122)
(123)
(124)
(125)
(126)
(127)
(128)

-

𝑔(𝑥, 𝑦) = {

0,

𝑓(𝑥, 𝑦) < 𝑇

1,

𝑓(𝑥, 𝑦) ≥ 𝑇

-

𝑔(𝑥, 𝑦) = {

0,

𝑓(𝑥, 𝑦) > 𝑇

1,

𝑓(𝑥, 𝑦) ≤ 𝑇

-

𝑔(𝑥, 𝑦) = {

0, 𝑓(𝑥, 𝑦) < 𝑇

1

1, 𝑇

1

≤ 𝑓(𝑥, 𝑦) ≤ 𝑇

2

0, 𝑓(𝑥, 𝑦) > 𝑇

2

(129)

𝜔 = ∑ 𝑃(𝑖) 𝑎𝑣𝑒𝑐 𝑃(𝑖) =

𝑛

𝑖

𝑁

𝑇 𝑖=0

,

Équation 52

𝑁

𝑛

𝑖

𝑇

𝜇 = ∑ 𝑖

𝑃(𝑖)

𝜔

𝑇 𝑖=0

.

Équation 53

𝛿

𝑡2

= ∑(𝑖 − 𝜇)

2 𝑇 𝑖=0

𝑃(𝑖).

Équation 54

𝛿

𝑏2

𝜔

0

𝜔

1

𝜇

0

𝜇

1

𝛿

𝑏2

= 𝜔

0

(𝜇

0

− 𝜇

𝑡

)

2

+ 𝜔

1

(𝜇

1

− 𝜇

𝑡

)

2 Équation 55

𝜇

𝑡

= 𝜔

0

𝜇

0

𝜔

1

𝜇

1 Équation 56

𝛿

𝑏2

= 𝜔

0

𝜔

1

(𝜇

1

− 𝜇

0

)

2 Équation 57

𝜂 =

𝛿𝑏2 𝛿𝑡2 Équation 58

𝜂

(130)
(131)
(132)
(133)
(134)
(135)

(136)
(137)
(138)
(139)
(140)
(141)
(142)
(143)
(144)
(145)
(146)
(147)
(148)
(149)
(150)
(151)
(152)
(153)
(154)
(155)
(156)

... 2 ... 5 𝜇 ... 6 𝑝𝜃(𝑢) 𝑢 ... 7 ... 8 ... 10 ... 11 ... 12 ... 13 ... 14 ... 15 ... 16 ... 17

(157)

... 19 ... 20 ... 21 ... 23 ... 24 ... 27 ... 28 ≉ ... 31 𝛤𝑓𝐺 ℤ2 ... 31 𝑆𝑢𝑝𝛤𝑓𝐺 𝐼𝑛𝑓𝛤𝑓𝐺 𝛤𝑓𝐺 ... 32   ... 33 𝐶𝑇𝑓𝐺𝑥, 𝑌 𝐶𝑇𝑓𝐺𝑥, 𝑌 ... 34 𝑁𝑘𝑥 ... 36 ... 37 𝑁𝑘, 𝑑 ... 38

(158)

 ... 39  Équation 16  ... 40 di ∈ 𝐶18 𝑁𝑘, 𝑑(𝑥) 𝑑 = 𝑑4 ... 40  ... 41 ... 42 . 42 ... 44 ... 45 ... 46 ... 47 ... 49 ... 50

(159)

... 52 ... 60 ... 73 . 75 ... 75 ... 76 ... 76 ... 77 ... 78 θ θ ... 79 𝑝𝑖 𝑞𝑖 ... 80 ... 82 Figure 53 ... 83 ... 83 ... 85 ... 86 ... 87 ... 87

(160)

... 88 - ... 89 ... 89 ... 90 ... 91 ... 92 ... 94 ... 95 ... 95 ... 96 ... 97

(161)

... 99 .. 101 ... 103 ... 104 ... 105 ... 106 ... 109 ... 111 ... 112 ... 113 ... 114 ... 116 ... 116 ... 118

(162)

... 122 ... 123 ... 123 ... 124 ... 124 ... 125 ... 126 ... 127 ... 128 ... 128 .. 129 ... 130 ... 131 ... 132 ... 133 ... 134 ... 135 ... 136 ... 22 ... 48 .. 51 ... 52

(163)

... 117

-

-

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