TP: Organisation générale de l’appareil végétatif des angiospermes.
OBJECTIFS:
Etude morphologique, anatomique et fonctionnelle des tiges, des feuilles et des racines (relation structure-fonction) et adaptation au milieu
Précision sur les contenus attendus et limites Compétences et critères de réussite Organisation générale de l’axe végétatif (tige,
feuille et racine)
Coupes de limbe de feuille
Coupes de tige (structure primaire) Coupes de racines (structure primaire)
REALISER UNE MANIPULATION
Réaliser des coupes à main levée avec coloration au carmino-vert.
- Respecter un protocole
(penser à bien rincer pour éliminer toute trace d’eau de Javel, sinon, la coloration ne prend pas)
- Réaliser un geste technique: coupes histologiques (Coupes fines -mieux vaut une coupe incomplète et fine qu’une coupe complète et épaisse).
- Réaliser une préparation microscopique (préparation fine, pas de bulles d’air, le liquide ne déborde pas de la lamelle, une zone intéressante est présentée à
l’examinateur)
- Maîtriser un outil d’observation: le microscope (choix judicieux de l’objectif, réglage correct de la lumière, réglage du contraste avec le diaphragme)
EFFECTUER DES REPRESENTATIONS GRAPHIQUES ET PRESENTER LES RESULTATS
Utiliser les représentations conventionnelles pour réaliser des schémas d’interprétations des coupes (les codes restant à disposition des étudiants)
- Organiser correctement le schéma.
Schéma centré sur la page
Schéma montrant la symétrie de l’organe, utilisation correcte des figurés conventionnels
- Mettre un titre complet au schéma
(nature de la coupe, nature de l’organe, nature de la coloration, nature de l’organisme d’origine si il est indiqué, mode d’observation et éventuellement grossissement).
ELABORER UN PROTOCOLE EXPERIMENTAL EXPLOITER UNE OBSERVATION OU UN RESULTAT
-
Identifier une technique microscopique-
Identifier des structures Observation d’ectomycorhizesTissus à reconnaître: parenchyme chlorophyllien, parenchyme de réserve, xylème, phloème,
épiderme, sclérenchyme, collenchyme, endoderme, méristème
L’étude anatomique est réalisée à partir de coupes à main levée ou de lames du commerce. la
détermination de la position systématique et du type d’organe sont hors programme
Les racines: ancrage au sol et absorption hydrominérale.
Le système racinaire peut présenter deux morphologies principales:
Appareil racinaire pivotant: une racine principale bien visible qui présente des ramifications appelées racines latérales. Les photos ci-dessous représentent deux stades de développement de l’appareil racinaire de pois.
Appareil racinaire fasciculé: dans ce cas, il n’est pas possible de distinguer les racines principales des racines latérales (ex: appareil racinaire fasciculé de plantain).
Certaines plantes développent en plus des racines à partir de la tige: ce sont des racines adventives qui jouent essentiellement un rôle d’ancrage
Racine principale ou
pivot Jeunes racines
latérales
Racines latérales développées mais plus fines que la racine pivot 0,7 mm
1,5 cm appareil racinaire
fasciculé de plantain
4 cm
racines adventives sur une tige de lierre
0,5 cm
Les principaux types de tissus végétaux
Classes Exemples Caractéristiques épaisseur de
la paroi Nature de la matrice extra-
cellulaire Parenchymes Parenchyme
cellulosique Cellules isodiamétriques Paroi fine Paroi pecto- cellulosique
Tissus de
revêtement Epiderme Généralement, une seule couche cellulaire
Présence de stomates dans le cas des feuilles et des tiges
Epaississement des cellules sur leur face externe, par une cuticule dans le cas des feuilles et de la tige
Paroi fine Paroi pecto- cellulosique + cutine
Tissus de
soutien Collenchyme Cellules formant des massifs Paroi épaisse Paroi pecto- cellulosique épaisse Sclérenchyme Lorsque la paroi est si
épaisse que la lumière de la cellule n’est plus visible, on parle de fibres
P a r o i t r è s
épaisse Paroi épaisse avec lignine
Tissus
conducteurs Xylème C e l l u l e s d e d i a m è t r e souvent imposant, associées à d e s fi b r e s e t à d u parenchyme
Paroi épaisse Paroi liginifiée
Xylème I On distingue un « sens de différenciation » allant des cellules les plus petites au plus grosses
Xylème II Les cellules conductrices sont alignées et ont toutes la même taille
Phloème M a s s i f s c e l l u l a i r e s compacts, on peut parfois observer les cribles des tubes criblés. Les cellules compagnes associées aux tubes criblés sont de forme triangulaire.
Dans le cas du phloème II, les tubes criblés sont de petite taille et sont alignés
Paroi fine Paroi pecto- cellulosique
Tissu contrôlant le transport de la solution du sol
Endoderme Une seule couche cellulaire Paroi localement épaissie:
endoderme à cadre de Caspary ou endoderme à épaississement en U
P a r o i l o c a l e m e n t épaissie
Paroi lignifiée
Méristème Procambium ( m i s e e n p l a c e d e s t i s s u s primaires)
Paroi pecto- cellulosique
Cambium (mise en place des tissus secondaires)
cellules rectangulaires
aplaties Paroi pecto-
cellulosique
Structure des éléments conducteurs.
Eléments conducteurs du xylème :
! Ils conduisent la sève brute (eau + sels minéraux) dans la plante.
! Les éléments conducteurs du xylème sont des tubes formés de cellules mortes à paroi lignifiées mises bout à bout.
! Ces cellules communiquent latéralement par des ponctuations (zone où la paroi est amincie) et verticalement par des ponctuations (on parle alors de trachéides) ou des perforations (on parle alors d’éléments de vaisseau).
! Les premiers éléments conducteurs du xylème qui se mettent en place sont des trachéides de petit diamètre possédant peu d’épaississements de lignine (protoxylème)
! Au cours du temps, les éléments qui se mettent en place ont un plus gros diamètre et des épaississements de lignine plus abondants (métaxylème).
Eléments conducteurs du phloème :
! Ils conduisent la sève élaborée (eau + molécules organiques) dans la plante.
! Les éléments conducteurs du phloème sont des cellules vivantes, à paroi pecto-cellulosique qui communiquent entre elles par des plasmodesmes élargis dont l’ensemble forme un crible (on parle de tube criblé).
! Les tubes criblés communiquent avec des cellules compagnes.
Les éléments conducteurs du xylème et du phloème sont associés à des fibres et à des cellules de parenchyme.
Vaisseau
Diamètre
XYLEME PHLOEME
Trachéide ou vaisseau
cribles
Lignine
Parenchyme
Une plage criblée
Protocole : coupe transversale et coloration d’organes végétaux
Réalisation des coupes.
" Définir un plan de coupe droit
" Les coupes doivent être minces (environ 5-10 µm d’épaisseur) : pour cela on fait les coupes avec
une lame de rasoir.
" Pour les coupes de tige et de racine, la symétrie des coupes étant radiale, ¼ de bonne coupe est
suffisant, Il suffit donc qu’un endroit soit très fin pour pouvoir faire des observations correctes.
" Il est nécessaire de faire de nombreuses coupes (une dizaine) et de choisir les plus fines.
" Pour faire les coupes deux méthodes :
•Prendre l’échantillon verticalement et couper vers soi à l’aide de la lame de rasoir, en faisant avancer la lame progressivement dans l’échantillon.
•Couper un fragment de moelle de sureau en deux
Tailler le fragment de manière à placer l’échantillon dedans
•Couper l’échantillon avec le bâton de moelle
" Ne jamais laisser se dessécher les coupes donc dès qu’elles sont réalisées, les disposer sur un
tamis que l’on met sur un verre de montre contenant de l’eau. Eliminer les coupes épaisses.
Coloration des coupes :
Le principe est d’identifier les tissus grâce à la nature de leur paroi.
1) Elimination du contenu cytoplasmique par traitement à l’eau de Javel.
Mettre les coupes dans l’eau de javel pendant 15 minutes. Rincer ensuite soigneusement à l’eau.
2) La molécule à colorer doit avoir des liaisons chimiques libres pour fixer le colorant : on réalise donc un traitement : le mordançage (hydrolyse ménagée) qui attaque un peu les molécules pour libérer les liaisons. Pour cela, on utilise de l’acide acétique.
Plage criblée
Cellule compagne Elément
conducteur du phloème Elément
conducteur du xylème
Fibre
Coupe transversale dans du phloème I 50 µm
Coupe transversale dans du xylème I
Cavité préparée pour y insérer
l’objet à couper Deux demi- cylindres
de moelle de sureau
rasoir
Le bâton de sureau avec L’organe végétal est tenu entre le pouce et l’index et les coupes sont faites à main levée
Mettre les coupes dans de l’eau acétique (acide acétique 10%) pendant 1 minute. Ne pas rincer ensuite.
3) La dernière étape est l’étape de coloration. La coloration des parois se fait par coloration des composés principaux : cellulose et lignine. On utilise pour cela le carmino-vert de mirande.
Le carmino-vert de mirande est un mélange de deux colorants : la carmin aluné et le vert d’iode.
Le carmin aluné colore en rose les parois pecto-cellulosiques ; le vert d’iode y surajoute une teinte verte lorsque les parois sont lignifiées et une teinte jaune-verdâtre lorsqu’elles sont cutinisées ou subérifiées.
Mettre les coupes dans le carmin-vert d’iode pendant 20 minutes.
Rincer les coupes et les conserver dans l’eau. Montrer entre lame et lamelle dans l’eau.
- Réaliser des coupes colorées au Carmin-vert d’iode des échantillons de racine à votre disposition.
- A l’aide de votre préparation ou d’une lame du commerce réaliser un schéma avec figurés conventionnels de la coupe de racine.
Conventions pour les schémas d’interprétation d’ensemble.
Le schéma d’ensemble doit traduire la forme de l’organe étudié, l’emplacement et les proportions des différents tissus délimités par des traits.
Il doit représenter l’organe tout entier ou une proportion significative de l’organe (1/2 ou ¼)
Aucune cellule ne doit figurer sur ce schéma : Les schémas sont réalisés au moyen des signes conventionnels ci-après.
TITRE:
- Légender la coupe transversale de racine et mettre des légendes
fonctionnelles.
1
2
3
2 4
5
6
7 8
Légende Fonction (si possible)
1 2 3 4 5 6 7 8
200 µm
Les mycrorhizes.
90 % des angiospermes présentent des racines qui établissent des association symbiotiques avec les champignons. Les mycorhizes sont les résultats de cette association. On distingue deux grands types de mycorhizes:
les ectomycorhizes (E) dans lesquelles les filaments mycéliens du champignon restent à l’extérieur des cellules végétales.
les endomycorhizes (B) dans lesquels les filaments mycéliens fracturent la paroi des cellules corticales de la racine et repoussent la membrane plasmique en formant des structures de types arbuscules.
On peut observer le partenaire « champignon » de la mycorhize à l’aide d’une coloration au bleu coton lactique qui colore en bleu la paroi des champignons (constituées essentiellement de callose et de chitine).
Une coupe de racine de pin parasol associé au champignon mycorhizien Pisolithus arhizus, colorée au bleu coton lactique
Les feuilles: surfaces d’échanges gazeux et principaux lieux de photosynthèse.
-Observer la coupe de limbe de feuille de houx: reconnaître les différents tissus
-Faire un schéma avec figurés conventionnels et légendes fonctionnelles.
jeunes feuilles entourant le bourgeon terminal
bourgeon axillaire au niveau du noeud (forme les ramifications de la tige)
noeud (zone d’insertion de la feuille sur la tige)
tige limbe pétiole entrenoeud
extrémité de l’axe feuillé d’un Forsythia (à l’échelle)
TITRE:
Les tiges: lieu de circulation des sèves et axe aérien dressé.
-Observer la photographie de CT de tige de Renoncule et légender cette photographie en plaçant des légendes fonctionnelles
1 2
3
5
6 7
8
5
9
Légende Fonction (si possible)
1 2 3 4 5 6 7 8 9
4
- Observer la coupe transversale de tige de maïs et reconnaître les tissus.
BILAN: Les organes végétatifs des angiospermes: relation structure- fonction
Racine
Appareil ramifié AncragePoils absorbants
Nombreuses ramifications Formation de mycorhizes
Vaste surface d’échanges: absorption hydrominérale
Elèments conducteurs de sève Transfert de sève brute vers les organes aériens
Poussée racinaire
Apport de matière organique en provenance des organes aériens (sève élaborée)
Tige
Elements conducteurs de sève distribution de la solution hydrominérale et des assimilats organiques dans la plantePrésence de tissus de soutien formation d’un axe aérien dressé permettant d’exposer les feuilles à la lumière
Feuilles
Stomates Transpiration foliaire permettant la montée de la sève bruteEchanges gazeux photosynthétiques
-
Forme aplatie qui augmente le rapport surface/volume.-
Tissus de soutien permettant de maintenir la feuille à platFavorise les échanges de gaz et la captation de l’énergie lumineuse
- Parenchyme chlorophyllien Captation de l’énergie lumineuse et photosynthèse
- Eventuellement, parenchyme lacuneux
Facilite la circulation des gaz au sein de la feuille
Tissus conducteurs sous forme de faisceaux criblo-vasculaires (= cribro-vasculaires)
Apport d’eau et de sels minéraux, exportation de la matière organique