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Myostatin deficiency in skeletal muscle alters the lipids composition of mitochondrial membranes

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Academic year: 2021

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Texte intégral

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HAL Id: hal-01837644

https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-01837644

Submitted on 5 Jun 2020

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Myostatin deficiency in skeletal muscle alters the lipids composition of mitochondrial membranes

Narjes Baati, Christine Feillet Coudray, Gilles Fouret, Barbara Vernus, Benedicte Goustard, Charles Coudray, Jérôme Lecomte, Anne Bonnieu,

Christelle Ramonatxo

To cite this version:

Narjes Baati, Christine Feillet Coudray, Gilles Fouret, Barbara Vernus, Benedicte Goustard, et al.. Myostatin deficiency in skeletal muscle alters the lipids composition of mitochondrial membranes. JED Marseille, May 2016, Marseille, France. 1 p. �hal-01837644�

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Myostatin deficiency in skeletal muscle alters

the lipids composition of mitochondrial membranes

Narjes Baati1, Christine Feillet­Coudray1, Gilles Fouret1, Barbara Vernus1, Bénédicte Goustard1, Charles Coudray1,

 Jérome Lecomte2, Anne Bonnieu 1& Christelle Ramonatxo1

1 INRA, UMR866 Dynamique Musculaire Et Métabolisme, UFR STAPS, Université Montpellier 1,  34000 Montpellier, France. 2 Centre de recherche agronomique pour le développement (CIRAD)/SupAgro,UMR IATE,F­34398 Montpellier, France

Background

Myostatin (Mstn) is a negative regulator of skeletal muscle growth

Natural mutation or targeted inhibition in mstn gene

results in twofold increase in skeletal muscle mass (hypertrophic phenotype) in some species   is considered as a promising treatment for various muscle­wasting disorders.

Aim of the study

In this study, we demonstrated a decrease in mitochondrial cardiolipin content, in relation with a decrease in PGPS and cardiolipin  synthase gene expressions. Overall, our results demonstrate that mstn deficiency reduced lipogenesis and lipid oxidation and alters the  lipid composition of muscle and mitochondrial membranes, with a decrease in cardiolipin mitochondrial content.This  can be the cause of the mitochondrial function alteration observed in KO mstn muscle. In this regard, many research suggest the  possibility to modulate the membrane phospholipids composition in mitochondria and muscle using physical training. Next study will  be  devoted  to  modulate the phospholipids composition in KO mstn mitochondria using endurance

training, and evaluate its consequences on mitochondrial function.

To

Characterize the lipid composition and the lipid metabolism

in muscle and mitochondrial membranes in KO mstn mice

.

1 Grobet et al., 1997, Nat Gene ,17(1):71­4. 2 Mosher et al., 2007, PLoS Genet. 2007;3(5):79  3Mcpherron et al.,1997, Nature, 387, 83­90.  4Shuelke et al., 2004, N Engl J Med. ;350(26):2682­8  .  5 Amthor et al.,2007, PNAS, 104(6) 1835–1840.  6 Ploquin et al.,2012, American physiological society, 302(8), 1000­1008. 7 Zhang C et al., 2012, Diabetologia, 55(1):183­93. 8  Paradies et al, 2014, Biochim Biophys Acta; 1837(2014):408­17

Lack of Mstn led to decline in Fat membrane transporter in KO mstn muscle

No change in the concentrations of major phospholipids PC (phosphatidylcholine)  

and PE (phosphatidylethanolamine).

We showed a significant reduction (13%)

of Cardiolipin in mstn KO mitochondria.

This  result  could  be  associated  with  the  alteration  of  mitochondrial  function 

observed in KO mstn mice.. Indeed, cardiolipin plays a fundamental role in the 

stabilization of the respiratory chain and thus in mitochondria function. (8)

ACKNOWLEDGEMENTS

The present study was supported by Scientific structuring platform LipPolGreen, Supagro, Montpellier, FRANCE 

“Does exist an alteration of the lipid composition of muscle and mitochondrial

membranes in KO mstn mice that could participate in the metabolic and

contractile alterations observed in this model ?”

Muscles Membranes

(Maintain architecture of the muscle fiber)

Mitochondrial Membranes (Contain respiratory chain)

and

Consisted mainly lipids and phospholipids

In skeletal mucles

Beyond muscle hypertrophy, mstn knock-out mice (KO) showed

Increased muscle

Fatigability [5] and mitochondrial respiratory function [6]Decreased in number of mitochondria A loss of fat mass [7]

Lack of Mstn led to decreased oxidative pathway of lipids in KO mstn

muscle

[1] [2] [3] [4] Tub Figure1: Reduce of  FAT/CD36, FABP3, FATP1 and FATP4 evaluated by Western blots in  KO mstn Gastrocnemius  referenced to Tubulin (n=8 for each protein) compared to Wild type mice (n=7 for each protein). Values are shown as  means ± SEM.  P­Values were calculated using the parametric test T­student (*p< 0.05).  * * *

Lack of Mstn induced a decreased of lipogenesis in KO mstn muscle

Modification of lipids composition of muscle and mitochondrial membrane in KO

mstn muscle

Fatty acids composition of muscle:

Phospholipids composition of mitochondrial membrane :

Discussion/Conclusio

n

Synthetic Pathways of cardiolipin

CLS/CS

*

A U A/ B/ C/ Figure2: Decline of oxidative pathway of lipids in KO mstn Gastrocnemius 

A/ Reduce  of  Citrate  synthase  and  beta­HAD  activities  evaluated  by  spectrophotometry  in  KO  mstn  muscle  (n=7) 

compared to wild type muscle (n=7) B/ Citrate synthase quantity evaluated by Western blot declined in KO mstn muscle  compared to Wild type muscle. C/ CPT1m and PPAR­delta gene expression evaluated by RT­PCR in KO mstn muscle  and wild type muscle. Values are shown as means ± SEM. P­Values were calculated using the parametric test T­student  (*p< 0.05).  Figure 3: Decrease on lipogenesis pathway in KO mstn muscle. A) Fatty acid synthase (FAS) quantity evaluated with western blot  declined in KO mstn (n=8) gastrocnemius compared with Wild type (n=8). B) Triglyceride (TG) and free fatty acids (FFA) quantity   evaluated with  thin layer chromatography  decreased in KO mstn muscle (n=7) compared with Wild type (n=7). Values are shown as  means ± SEM. P­Values were calculated using the parametric test T­student (*p< 0.05).  A/ B/ Figure 4: Fatty acids distribution in Wild type and KO mstn muscle evaluated by gas chromatography. Increase of SFA,( Saturated  Fatty Acids) decrease of MUFA (Mono unsaturated Fatty acids) associated with a decrease of  SCD1 (Delta9 desaturase) index and a  increase of PUFA in KO mstn muscle (n=7) compared with wild type (n=8). Values are shown as means  ± SEM. P­Values were  calculated using the parametric test T (*p< 0.05).  A/ B/ Figure 6: Enzyme of cardiolipin synthetic route. A/Decline of gene expression of PGPS enzym in KO mstn and wild Type muscle.  B/Decrease of Cardiolipin synthase quantity evaluated by Western Blot in KO mstn muscle and wild type standardised with Tubulin  and citrate sythase in mitochondria. Values are shown as means ± SEM. P­Values were calculated using the parametric test T­student  (*p< 0.05). PPAR α/δ Cardiolipin Mitochondrial alteration

???

[TG] µg/g of muscle

[FFA] µg/g of muscle

FAS Tub

Figure 5: Decrease of Cardiolipin content  in mitochondrial membrane of Gastrocnemius muscle of WT muscle (n=8 for all 

phospholipids) and KO mstn muscle (n=8 for all phospholipids). Values are shown as means ± SEM. P­Values were calculated using  the parametric test T­student (*p< 0.05).

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